Вход в личный кабинет | Регистрация
Избранное (0) Список сравнения (0)
Ваши покупки:
0 товаров на 0 Р
Итого: 0 Р Купить

Белок мышечных волокон 6 букв: Белок мышечных волокон, 6 (шесть) букв

Содержание

Белок мышечных волокон, 6 (шесть) букв

Энциклопедический словарь, 1998 г. Значение слова в словаре Энциклопедический словарь, 1998 г.
белок мышечных волокон; образует с актином основной сократительный элемент мышц — актомиозин. Обладает каталитической активностью: расщепляет аденозинтрифосфорную кислоту (АТФ) с освобождением энергии, которая используется при мышечном сокращении.

Большая Советская Энциклопедия Значение слова в словаре Большая Советская Энциклопедия
фибриллярпый белок, один из главных компонентов сократительных волокон мышц ≈ миофибрилл ; составляет 40≈60 % общего количества мышечных белков. При соединении М. с другим белком миофибрилл ≈ актином ≈ образуется актомиозин ≈ основной структурный элемент…

Википедия Значение слова в словаре Википедия
Миозин — фибриллярный белок , один из главных компонентов сократительных волокон мышц — миофибрилл . Составляет 40—60 % общего количества мышечных белков. При соединении миозина с другим белком миофибрилл ( актином ) образуется актомиозин — основной структурный…

Новый толково-словообразовательный словарь русского языка, Т. Ф. Ефремова. Значение слова в словаре Новый толково-словообразовательный словарь русского языка, Т. Ф. Ефремова.

м. Растворимый белок, входящий в состав мышечной ткани.

Словарь медицинских терминов Значение слова в словаре Словарь медицинских терминов
белок, входящий в состав миофибрилл; обладает аденозинтрифосфатазной активностью и принимает участие в мышечном сокращении.

Ботулинотерапия в Самаре — цены на платные услуги

Botox® – лекарственное средство, производимое компанией Allergan (США).

Он применяется с 1989 года в США, а с 1994 года он допущен Министерством Здравоохранения к применению в Российской Федерации.

Действующим веществом Ботокса является очищенный и ослабленный ботулотоксин.

Область применения

В косметологии Ботокс и его аналог – Диспорт используются для устранения мимических морщин. Именно мимических, возникновение которых обусловлено двигательной активностью мимической мускулатуры.

При напряжении этих мышц кожа собирается в складки. Со временем они перестают полностью расправляться и формируются мимические морщины. Наиболее характерно их появление в верхней части лица: на лбу, между бровей, в уголках глаз.

Так же ботулинотерапия применяется для лечения гипергидроза – повышенного потоотделения.

Как действует Ботокс?

Традиционно Ботокс вводится внутримышечно — в мимические мышцы, где он временно блокирует их восприимчивость к нервным импульсам. За счет этой блокады мышца или её часть расслабляется, перестает сокращаться и формируемые ей морщины разглаживаются.

Искусство врача состоит в том, чтобы не полностью обездвижить Ботоксом мышцы, ответственные за появление морщин, а лишь снять их повышенный тонус, не нарушив естественной мимики.

Под воздействием ботулотоксина временно блокируются нервно-мышечные связи. Ни мышечные, ни нервные волокна при этом не страдают.

Действие Ботокса обратимо – через 4-6 месяцев блокированные нервно-мышечные связи восстанавливаются.

Как подготовиться?

В день процедуры не следует заниматься спортом, тяжелым физическим трудом.

За неделю до введения ботулотоксина следует прекратить прием антибиотиков, препаратов, содержащих аскорбиновую кислоту, алкогольных напитков.

За 24 часа до процедуры лечения не надо посещать спортзал, сауну, загорать или заниматься тяжелым физическим трудом, а также наносить препараты против пота.

Удаление волос на подмышках нужно провести за 2-3 дня до уколов или непосредственно перед манипуляцией бритвенным станком.

На момент инъекций кожа в обрабатываемой области не должна быть поражена грибковой и бактериальной микрофлорой.

Выполнение этих рекомендаций позволит минимизировать возможные побочные эффекты и повысит продуктивность лечения.

Как это делают?

На консультации врач оценивает степень выраженности и характер морщин, роль мимической мускулатуры в их формировании, состояние тканей, определяет точки введения Ботокса, и его количество.

Как и перед обычным уколом, кожа обрабатывается дезинфицирующим средством. Затем при помощи шприца с короткой и очень тонкой (диаметром 0,3 мм) иглой раствор Ботокса вводится в те мышцы, активность которых необходимо снизить. Это занимает 3-5 минут.

По окончании сеанса производится антисептическая обработка кожи, её охлаждение. Данные о номере партии препарата, его сроке годности заносятся в амбулаторную карту.

Болезненность инъекций Ботокса невысока. Их проведение возможно и без обезболивания. Большинство пациентов сравнивают ощущения от них с комариными укусами.

Сколько нужно единиц?

Количество Ботокса во флаконе измеряется не в граммах, а в ЕД (единицах действия). Цена услуги определяется исходя из объёма использованного препарата. Поскольку цена – немаловажный фактор, вы можете заранее приблизительно оценить сколько единиц Ботокса, потребуется вам для коррекции морщин:

  • горизонтальные складки лба: 4-15 ед.
  • межбровная складка: 8-25 ед.
  • «гусиные лапки»: 8-16 ед.
  • ботокс-лифтинг углов рта: 4-6 ед.
  • морщины верхней губы: 2-4 ед.
  • подмышечная область: до 100 ед.

Более точную информацию вы узнаете на консультации врача.

Когда будет виден результат?

В среднем мимические мышцы расслабляются за 5-7 суток. Максимальный эффект, как правило, достигается через две недели.

Но существуют варианты, обусловленные индивидуальными особенностями организма, когда ботулотоксин начинает действовать уже на вторые сутки, а в некоторых случаях на это уходит месяц.

Существуют люди нечувствительные к ботулотоксину. Такая невосприимчивость встречается редко, менее чем у 3% людей (у мужчин немного чаще). Она может возникать у людей, ранее перенесших ботулизм или лечившихся большими дозами Ботокса по медицинским показаниям.

Продолжительность эффекта

После первой процедуры мимические морщины разглаживаются в среднем на 4-6 месяцев. Затем нервно-мышечные связи, блокированные Ботоксом, восстанавливаются, мышечные волокна снова начинают сокращаться, возвращаются и морщины. Поэтому для поддержания постоянного отсутствия морщин необходимо повторное его введение примерно спустя полгода.

Как правило, после 3-5 сеансов продолжительность отсутствия морщин увеличивается до 10-12 месяцев.

После прекращения действия Ботокса двигательная активность мимической мускулатуры восстанавливается. Но за время, когда мышцы были искусственно расслаблены, человек отвыкает от привычки постоянно хмурить лоб или прищуривать глаза. Поэтому морщины, возникновение которых обусловлено этими привычками, могут и не вернуться. Даже если не повторять введение Ботокса.

Эффект от введения ботулотоксина при гипергидрозе в область подмышек сохраняется от 6 месяцев до полутора лет. Стоит понимать, что данная процедура только устраняет симптомы, но не оказывает влияние на причины заболевания.

Ограничения

К «обычной» жизни вы сможете вернуться непосредственно после процедуры (поэтому уколы Ботокса нередко относят к «процедурам обеденного перерыва»). Но после введения ботулотоксина в течение нескольких часов происходит его распределение в тканях. Более суток требуется для полного заживления после инъекций. Для того чтобы эти процессы прошли в оптимальном режиме следует соблюдать некоторые ограничения:

  • не ложиться спать или лежать – 3-4 часа после инъекций;
  • стоит воздержаться от приема лекарств, влияющих на свертываемость крови, употребления алкоголя — 1 сутки;
  • нельзя трогать руками участки кожи, где проводились инъекции – 2 дня;
  • не наклонять голову вниз на длительное время: например, мыть полы – 2 суток;
  • не заниматься спортом, фитнесом – 2 суток;
  • исключите перегревание: не ходите в баню, сауну, не загорайте, не направляйте горячий воздух из фена на лицо в течение 10 дней.

После проведения лечения гипергидроза в течение семи суток стоит воздержаться от посещения солярия, бани, сауны и спортзала. Также надо отказаться от антиперспирантов, дезодорантов и кремов против пота.

В каком возрасте применение Ботокса наиболее эффективно?

Выраженность достигаемого результата после применения Ботокса зависит не только от индивидуальных особенностей, но и от возраста:

  • до 25 лет – у большинства людей для применения Ботокса ещё нет показаний: кожа достаточно эластична и мимические морщины не представляют серьёзной проблемы;
  • 30–40 лет – у большинства людей мимические морщины уже достаточно заметны и от применения Ботокса можно ожидать максимального эффекта;
  • 50–60 лет – тонус мышечных волокон уже ослабевает, результат от применения Ботокса менее выражен, чем в более молодом возрасте;
  • после 60 лет – мимическая мускулатура в значительной степени утрачивают свой тонус, её роль в формировании морщин невелика, соответственно и область применения Ботокса весьма ограничена.

Ботокс и Диспорт – противопоказания

Как и к назначению любого лекарственного средства, к применению Ботокса и Диспорта есть противопоказания:

Воспалительный процесс в месте предполагаемого введения. Проведение любых инъекций возможно только на здоровой коже. Если в области предполагаемых инъекций присутствуют гнойничковые элементы, угри или другие воспалительные элементы, инъекции могут способствовать распространению инфекции, усилению воспалительных явлений.

Пластическая или иная хирургическая операция на лице. После операции ткани лица обретают свою окончательную форму постепенно. Их коррекция Ботоксом целесообразна не ранее, чем через 3 месяца после операции.

Выраженный гравитационный птоз тканей лица и выраженные грыжи в области верхних и нижних век. Эти явления в первую очередь обусловлены слабостью мышц лица. Введение Ботокса в такие ослабленные мышцы может усугубить имеющиеся проблемы.

Острая фаза инфекционных заболеваний, повышенная температура тела. В этот период проведение любых косметологических процедур не рекомендуется.

Высокая степень миопии (более 6 диоптрий). Если миопия вызвана ослаблением глазных мышц, теоретически, введение ботулотоксина в близлежащие области может ещё больше их ослабить.

Миастенические, миастеноподобные синдромы, синдром Ламберта-Итона. Если возникнет эффект сложения релаксации мимической мышцы, вызванной введением Ботокса и её ослабления, вызванного заболеванием – косметический результат будет неудовлетворительным.

Гиперчувствительность (аллергия) к компонентам  препарата. Помимо ботулотоксина в состав Ботокса входит белок – альбумин. Если у вас ранее отмечались аллергические реакции на альбумин, сообщите об этом врачу перед проведением процедуры.

Беременность и кормление грудью. Поскольку проведение клинических испытаний на беременных и кормящих женщинах запрещено во всех странах, данные о безопасности Ботокса подтверждены только в отношении женщин вне периода беременности и кормления. Беременность – такое состояние организма женщины, при котором любые вмешательства в его функционирование должны проводиться только в случае необходимости. Коррекция морщин такой необходимостью не является.

Прием антибиотиков менее чем за 2 недели до процедуры. Имеет значение прием антибиотиков следующих групп: аминогликозидов (например, гентамицин), макролидов (например, эритромицин), тетрациклинов (например, доксициклин), полимиксинов. Эти антибиотики усиливают действие ботулотоксина, что затрудняет правильную дозировку и делает результат трудно предсказуемым.

Перед проведением процедуры обязательно сообщите врачу обо всех лекарствах, которые вы принимаете. Может иметь значение прием препаратов, повышающих внутриклеточную концентрацию кальция, бензодиазепинов, антикоагулянтов, антиагрегантов.

Возможные осложнения

После процедуры в местах уколов может быть небольшая отечность и в течение нескольких дней могут сохраняться точечные кровоизлияния. Они проходят самостоятельно и лечения не требуют.

Кроссворд «Коктейль» Классические кроссворды онлайн разгадывать бесплатно средней сложности

Играть в бесплатные Классические онлайн кроссворды


Нажмите / коснитесь начального квадрата пространства слов в сетке 17×15 кроссвордов. Выбранное вами пространство слов подсвечивается зеленым цветом, как и соответствующая подсказка / определение справа. Используйте вашу клавиатуру ПК или клавиатуру мобильного устройства, чтобы ввести ответ.

Нажмите / коснитесь квадрата в сетке кроссвордов, чтобы переключить направление слова с поперечного на нижнее (или наоборот).

Нажмите / коснитесь любой подсказки на панели подсказок, чтобы выделить соответствующее пространство слов в сетке.

Подсказки по решению кроссворда


Подсказки кроссвордов находятся на панели «Подсказка» рядом с решеткой кроссвордов или будут отображаться в загадке, если вы играете на смартфоне. Прокрутите панель подсказок, чтобы просмотреть полный список.

Макет кроссворда меняется в альбомной и портретной ориентациях вашего устройства.

Смотрите ниже загадку для дальнейших инструкций.

Кроссворд «Коктейль» — дальнейшие инструкции

Удалить / изменить букву


Нажмите на букву, которую вы хотите удалить и нажать клавишу Delete;
Как только квадрат выделен, можно также использовать клавишу Backspace, чтобы удалить букву;
или нажмите на квадрат, который вы хотите изменить, и просто введите новую букву.

Таймер


Таймер, обозначенный значком часов, начинает отсчет, как только вы начинаете кроссворд. Если вам не нравится работать против часов, выберите Меню, а затем Скрыть в верхней части головоломки.

Пауза


Чтобы сделать паузу во время воспроизведения, нажмите (коснитесь) таймера (или значка паузы на смартфоне). Нажмите / коснитесь сетки кроссворда, если вы хотите возобновить разгадывание.

Сброс


Коснитесь кнопки »Вернуть», обозначенной стрелкой с кружком, чтобы очистить сетку и перезапустить данный кроссворд.

Советы


Нажмите на кнопку «Буква» или »Слово», чтобы отобразить подсказку в виде буквы либо слова в сетке.

Решение


Обеспечивает просмотр всего решения сетки данного кроссворда.

Проверить


Проверяет на ошибки. Нажмите / коснитесь кнопки «Показать», обозначенной значком галочки, чтобы отображать неправильные буквы красным цветом в течение 5 секунд ИЛИ выберите красную кнопку «Очистить», чтобы удалить все неверные буквы из сетки.

Буква


Заполняет правильную букву для квадрата, который вы выделили.

Слово


Заполняет правильное слово для пробела или подсказку, которую вы выделили.

Сохранить


Если вы не успели разгадать весь кроссворд, его можно сохранить и позже зайдя продолжить с того же места.

Карандаш


Используется для смены шрифта вводимых в сетку букв.

Понравился материал? Будем благодарны за репосты.

Будьте первыми, кто прокомментирует кроссворд!

Muscle Protein — Ответы на кроссворд

Кроссворд Muscle protein из 6 букв в последний раз видели 01 января 2011 года . Мы думаем, что вероятным ответом на эту подсказку будет MYOSIN . Ниже приведены все возможные ответы на эту подсказку, отсортированные по ее рангу. Вы можете легко улучшить свой поиск, указав количество букв в ответе.
Рейтинг Слово Подсказка
95% МИОСИН Мышечный белок
95% ACTIN Мышечный белок
3% CRAMP Мышечное горе
3% AMINO ___ кислота (белковая часть)
3% СОИ Белок тофурки
3% PEC Грудная мышца
3% ACHE Мышечное горе
3% СПАЗМЫ Мышечные судороги
3% КОРИЧНЕВЫЙ Мышцы; сила
3% УКАЗАТЕЛЬ Белок? (анаг)
3% СПАЗМ Подергивание мышц
3% ОГНЕННАЯ СИЛА Военная мускулатура
3% РНК Молекула, строящая белок
3% ГЛЮТЕН Зерновой протеин
3% ЭЛАСТИН Белок кожи
3% ТОН Качество мышц
3% ТИЦ Мышечные спазмы
3% МЯСО Поставщик протеина
3% LAT Мышца спины
3% СЫВОРОТКА Источник белка

Уточните результаты поиска, указав количество букв.Если определенные буквы уже известны, вы можете указать их в виде шаблона: «CA ????».

Каковы лучшие решения для

Muscle Protein ?

Мы нашли 2 решения для Muscle Protein . Лучшие решения определяются по популярности, рейтингам и частоте запросов. Наиболее вероятный ответ на разгадку — MYOSIN .

Сколько растворов у Muscle Protein?

С crossword-solver.io вы найдете 2 решения. Мы используем исторические головоломки, чтобы найти наиболее подходящие ответы на ваш вопрос. Мы добавляем много новых подсказок ежедневно.

Как я могу найти решение для мышечного протеина?

С нашей поисковой системой для решения кроссвордов у вас есть доступ к более чем 7 миллионам подсказок.Вы можете сузить круг возможных ответов, указав количество содержащихся в нем букв. Мы нашли более 2 ответов для мышечного протеина.


Поделитесь своими мыслями
У вас есть предложения или вы хотите сообщить о пропущенном слове?

Обратная связь

© 2020 Авторские права: кроссворд-решатель.io

10.2 Скелетные мышцы — анатомия и физиология

Цели обучения

Опишите структуру и функцию волокон скелетных мышц

К концу этого раздела вы сможете:

  • Опишите слои соединительной ткани, окружающие скелетную мышцу
  • Определите мышечное волокно, миофибриллы и саркомер
  • Перечислите основные саркомерные белки, участвующие в сокращении
  • Определите области саркомера и измените ли они во время сжатия
  • Объясните процесс сокращения мышц скользящей нити

Каждая скелетная мышца — это орган, состоящий из различных интегрированных тканей.Эти ткани включают волокна скелетных мышц, кровеносные сосуды, нервные волокна и соединительную ткань. Каждая скелетная мышца имеет три слоя соединительной ткани, которые окружают ее, обеспечивают структуру мышцы и разделяют мышечные волокна внутри мышцы (рис. 10.2.1). Каждая мышца обернута оболочкой из плотной соединительной ткани неправильной формы, называемой эпимизием , которая позволяет мышце сокращаться и мощно двигаться, сохраняя при этом ее структурную целостность. Эпимизий также отделяет мышцу от других тканей и органов в этой области, позволяя мышце двигаться независимо.

Рисунок 10.2.1 — Три слоя соединительной ткани: Связки мышечных волокон, называемые пучками, покрыты перимизием. Мышечные волокна покрыты эндомизием.

Внутри каждой скелетной мышцы мышечные волокна организованы в пучки, называемые пучками , окруженные средним слоем соединительной ткани, называемым перимизием . Эта фасцикулярная организация часто встречается в мышцах конечностей; он позволяет нервной системе запускать определенное движение мышцы, активируя подмножество мышечных волокон в пучке мышцы.Внутри каждого пучка каждое мышечное волокно заключено в тонкий слой соединительной ткани из коллагена и ретикулярных волокон, называемый эндомизием . Эндомизий окружает внеклеточный матрикс клеток и играет роль в передаче силы, производимой мышечными волокнами, на сухожилия.

В скелетных мышцах, которые работают с сухожилиями, натягивая кости, коллаген в трех слоях соединительной ткани переплетается с коллагеном сухожилия. На другом конце сухожилия оно срастается с надкостницей, покрывающей кость.Напряжение, создаваемое сокращением мышечных волокон, затем передается через слои соединительной ткани на сухожилие, а затем на надкостницу, чтобы тянуть кость для движения скелета. В других местах мезия может сливаться с широким, похожим на сухожилие листом, называемым апоневрозом , или с фасцией, соединительной тканью между кожей и костями. Широкий слой соединительной ткани в нижней части спины, в который сливаются широчайшие мышцы спины («широчайшие»), является примером апоневроза.

Каждая скелетная мышца также богато снабжена кровеносными сосудами для питания, доставки кислорода и удаления шлаков. Кроме того, каждое мышечное волокно в скелетной мышце снабжается аксонной ветвью соматического двигательного нейрона, которая сигнализирует волокну о сокращении. В отличие от сердечных и гладких мышц, единственный способ функционального сокращения скелетных мышц — это передача сигналов от нервной системы.

Поскольку клетки скелетных мышц длинные и цилиндрические, их обычно называют мышечными волокнами (или миофибриллами).Волокна скелетных мышц могут быть довольно большими по сравнению с другими клетками, с диаметром до 100 мкм м и длиной до 30 см (11,8 дюйма) в портняжной мышце верхней части ноги. Наличие большого количества ядер позволяет производить большое количество белков и ферментов, необходимых для поддержания нормальной функции этих крупных белковых клеток. Помимо ядер, волокна скелетных мышц также содержат клеточные органеллы, обнаруженные в других клетках, таких как митохондрии и эндоплазматический ретикулум. Однако некоторые из этих структур специализируются на мышечных волокнах.Специализированная гладкая эндоплазматическая сеть, называемая саркоплазматической сетью (SR) , хранит, высвобождает и извлекает ионы кальция (Ca ++ ).

Плазматическая мембрана мышечных волокон называется сарколемма (от греческого sarco , что означает «плоть»), а цитоплазма обозначается как саркоплазма (рис. 10.2.2). В мышечном волокне белки организованы в структуры, называемые миофибриллами , , которые проходят по всей длине клетки и содержат саркомеры, соединенные последовательно.Поскольку миофибриллы имеют диаметр всего около 1,2 мкм, внутри одного мышечного волокна можно найти от сотен до тысяч (каждая с тысячами саркомеров). Саркомер представляет собой наименьшую функциональную единицу волокна скелетных мышц и представляет собой высокоорганизованную систему сократительных, регуляторных и структурных белков. Укорачивание этих отдельных саркомеров приводит к сокращению отдельных волокон скелетных мышц (и, в конечном итоге, всей мышцы).

Рисунок 10.2.2 — Мышечное волокно: Скелетное мышечное волокно окружено плазматической мембраной, называемой сарколеммой, которая содержит саркоплазму, цитоплазму мышечных клеток. Мышечное волокно состоит из множества миофибрилл, которые содержат саркомеры со светлыми и темными участками, которые придают клетке ее полосатый вид.

Саркомер определяется как область миофибриллы, заключенная между двумя структурами цитоскелета, называемыми Z-дисками (также называемыми Z-линиями), а поперечно-полосатый вид волокон скелетных мышц обусловлен расположением толстых и тонких миофиламентов внутри каждого саркомера. (Рисунок 10.2.2). Темно-полосатая полоса A состоит из толстых нитей, содержащих миозин, которые охватывают центр саркомера и простираются в направлении Z-образной формы. Толстые нити закреплены в середине саркомера (линия М) белком, называемым миомезином. Более светлая полоса I области содержит тонкие актиновые филаменты, закрепленные на Z-дисках белком, называемым α-актинином. Тонкие нити переходят в полосу А по направлению к М-линии и перекрываются с участками толстой нити.Полоса A темная из-за более толстых нитей мизоина, а также перекрывается с нитями актина. Зона H в середине полосы A немного светлее, потому что тонкие волокна не заходят в эту область.

Поскольку саркомер определяется Z-дисками, один саркомер содержит одну темную полосу A с половиной более светлой полосы I на каждом конце (рисунок 10.2.2). Во время сокращения сами миофиламенты не изменяют длину, а фактически скользят друг по другу, поэтому расстояние между Z-дисками сокращается.Длина полосы A не изменяется (толстая миозиновая нить остается постоянной длины), но области H-зоны и I-полосы сокращаются. Эти области представляют собой области, где волокна не перекрываются, и поскольку перекрытие волокон увеличивается во время сжатия, эти области без перекрытия уменьшаются.

Компоненты миофиламента

Тонкие филаменты состоят из двух нитевидных актиновых цепей (F-актин), состоящих из отдельных белков актина (рис. 10.2.3). Эти тонкие нити закреплены на Z-диске и простираются к центру саркомера.Внутри филамента каждый глобулярный мономер актина (G-актин) содержит сайт связывания мизоина, а также связан с регуляторными белками, тропонином и тропомиозином. Белковый комплекс тропонина состоит из трех полипептидов. Тропонин I (TnI) связывается с актином, тропонин T (TnT) связывается с тропомиозином, а тропонин C (TnC) связывается с ионами кальция. Тропонин и тропомиозин проходят вдоль актиновых филаментов и контролируют, когда сайты связывания актина будут открыты для связывания с миозином.

Толстые миофиламенты состоят из комплексов миозиновых белков, которые состоят из шести белков: двух тяжелых цепей миозина и четырех молекул легких цепей.Тяжелые цепи состоят из хвостовой области, гибкой шарнирной области и глобулярной головки, которая содержит сайт связывания актина и сайт связывания высокоэнергетической молекулы АТФ. Легкие цепи играют регулирующую роль в шарнирной области, но головная область тяжелой цепи взаимодействует с актином и является наиболее важным фактором для создания силы. Сотни белков миозина расположены в каждой толстой нити с хвостами к М-линии и головками к Z-дискам.

Другие структурные белки связаны с саркомером, но не играют прямой роли в производстве активной силы.Титин, который является крупнейшим из известных белков, помогает выравнивать толстую нить и добавляет эластичный элемент в саркомер. Титин закреплен на M-линии, проходит по длине миозина и простирается до Z диска. Тонкие нити также содержат стабилизирующий белок, называемый небулином, который охватывает длину толстых нитей.

Рисунок 10.2.3 — Саркомер: Саркомер, область от одной Z-линии до следующей Z-линии, является функциональной единицей волокна скелетных мышц.

Внешний веб-сайт

Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о макро- и микроструктуре скелетных мышц.а) Как называются «точки соединения» между саркомерами? (б) Как называются «субъединицы» в миофибриллах, которые проходят по длине волокон скелетных мышц? в) Что такое «двойная нить жемчуга», описанная в видео? (d) Что придает скелетным мышечным волокнам поперечно-полосатый вид?

Расположение и взаимодействие между тонкими и толстыми нитями позволяет укорачивать саркомеры, что создает силу. По сигналу двигательного нейрона волокно скелетных мышц сокращается, когда тонкие нити вытягиваются и скользят мимо толстых нитей внутри саркомеров волокна.Важно отметить, что в то время как саркомер укорачивается, отдельные белки и волокна не меняют длину, а просто скользят рядом друг с другом. Этот процесс известен как модель мышечного сокращения скользящей нити (рис. 10.2.4).

Рисунок 10.2.4 — Модель сокращения мышц со скользящей нитью: Когда саркомер сокращается, линии Z сдвигаются ближе друг к другу, а полоса I становится меньше. Полоса А остается той же ширины. При полном сокращении тонкие и толстые нити перекрываются.

Процесс сокращения скольжения филаментов может происходить только тогда, когда миозинсвязывающие сайты на актиновых филаментах подвергаются ряду этапов, которые начинаются с проникновения Са ++ в саркоплазму. Тропомиозин обвивает цепи актинового филамента и покрывает миозин-связывающие участки, предотвращая связывание актина с миозином. Комплекс тропонин-тропомиозин использует связывание ионов кальция с TnC, чтобы регулировать, когда головки миозина образуют поперечные мостики с актиновыми филаментами. При наличии кальция происходит образование поперечных мостиков и скольжение филаментов, а процесс передачи сигналов, приводящий к высвобождению кальция и сокращению мышц, известен как сцепление возбуждения-сокращения.

Обзор главы

Скелетные мышцы содержат соединительную ткань, кровеносные сосуды и нервы. Существует три слоя соединительной ткани: эпимизий, перимизий и эндомизий. Волокна скелетных мышц организованы в группы, называемые пучками. Кровеносные сосуды и нервы входят в соединительную ткань и разветвляются в клетке. Мышцы прикрепляются к костям напрямую или через сухожилия или апоневрозы. Скелетные мышцы поддерживают осанку, стабилизируют кости и суставы, контролируют внутренние движения и выделяют тепло.

Волокна скелетных мышц представляют собой длинные многоядерные клетки. Мембрана клетки — это сарколемма; цитоплазма клетки — саркоплазма. Саркоплазматический ретикулум (SR) — это форма эндоплазматического ретикулума. Мышечные волокна состоят из миофибрилл, которые состоят из последовательно соединенных саркомеров. Полосы скелетных мышц создаются организацией актиновых и миозиновых филаментов, в результате чего образуются полосы миофибрилл. Эти актиновые и миозиновые филаменты скользят друг по другу, вызывая укорачивание саркомеров, а клетки создают силу.

Вопросы по интерактивной ссылке

Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о макро- и микроструктуре скелетных мышц. а) Как называются «точки соединения» между саркомерами? (б) Как называются «субъединицы» в миофибриллах, которые проходят по длине волокон скелетных мышц? в) Что такое «двойная нить жемчуга», описанная в видео? (d) Что придает скелетным мышечным волокнам поперечно-полосатый вид?

(а) Z-линии. (б) Саркомеры.(c) Это расположение актиновых и миозиновых нитей в саркомере. (d) Чередующиеся нити актиновых и миозиновых филаментов.

Каждое волокно скелетных мышц снабжается двигательным нейроном в СНС. Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о том, что происходит в нервно-мышечном соединении. а) Что означает моторная единица? б) Каковы структурные и функциональные различия между большой моторной единицей и малой моторной единицей? Вы можете привести пример каждого из них? (c) Почему нейромедиатор ацетилхолин разлагается после связывания с его рецептором?

(a) Это количество волокон скелетных мышц, снабжаемых одним двигательным нейроном.(б) У большой двигательной единицы есть один нейрон, снабжающий множество волокон скелетных мышц для грубых движений, как, например, мышца височной мышцы, где 1000 волокон обеспечивается одним нейроном. У маленького мотора есть один нейрон, снабжающий несколько волокон скелетных мышц для очень тонких движений, например, экстраокулярные мышцы глаза, где шесть волокон снабжены одним нейроном. (c) Чтобы избежать продления мышечного сокращения.

Контрольные вопросы

Вопросы о критическом мышлении

1.Что случилось бы со скелетными мышцами, если бы эпимизий был разрушен?

2. Опишите, как сухожилия способствуют движению тела.

3. Что вызывает полосатость скелетных мышц?

Глоссарий

ацетилхолин (АЧ)
Нейромедиатор, который связывается с концевой пластинкой двигателя и запускает деполяризацию
актин
Белок
, который составляет большинство тонких миофиламентов в мышечном волокне саркомера
потенциал действия
изменение напряжения клеточной мембраны в ответ на стимул, который приводит к передаче электрического сигнала; уникально для нейронов и мышечных волокон
апоневроз
широкий, подобный сухожилию лист соединительной ткани, который прикрепляет скелетную мышцу к другой скелетной мышце или к кости
деполяризация
для уменьшения разницы в напряжении между внутренней и внешней частью плазматической мембраны клетки (сарколемма мышечного волокна), делая внутреннюю часть менее отрицательной, чем в состоянии покоя
эндомизий
рыхлая и хорошо гидратированная соединительная ткань, покрывающая каждое мышечное волокно скелетной мышцы
эпимизий
Внешний слой соединительной ткани вокруг скелетной мышцы
муфта возбуждения-сжатия
Последовательность событий от передачи сигналов двигательного нейрона к волокну скелетных мышц до сокращения саркомеров волокна
пучок
Пучок мышечных волокон в скелетной мышце
Концевая пластина двигателя
сарколемма мышечного волокна в нервно-мышечном соединении с рецепторами нейромедиатора ацетилхолина
миофибрилла
длинная цилиндрическая органелла, которая проходит параллельно внутри мышечного волокна и содержит саркомеры
миозин
Белок
, составляющий большую часть толстой цилиндрической миофиламента в мышечном волокне саркомера
нервно-мышечное соединение (НМС)
синапс между концом аксона моторного нейрона и участком мембраны мышечного волокна с рецепторами ацетилхолина, высвобождаемого концом
нейромедиатор
сигнальное химическое вещество, высвобождаемое нервными окончаниями, которые связываются с рецепторами на клетках-мишенях и активируют их
перимизий
Соединительная ткань, связывающая волокна скелетных мышц в пучки внутри скелетных мышц
саркомер
продольно, повторяющаяся функциональная единица скелетной мышцы, со всеми сократительными и связанными белками, участвующими в сокращении
сарколемма
плазматическая мембрана волокна скелетной мышцы
саркоплазма
цитоплазма мышечной клетки
саркоплазматический ретикулум (SR)
специализированный гладкий эндоплазматический ретикулум, который хранит, высвобождает и извлекает Ca ++
синаптическая щель
Пространство между нервным окончанием (аксоном) и концевой пластиной мотора
Т-трубочка
Проекция сарколеммы внутрь камеры
толстая нить
толстые тяжи миозина и их многочисленные головки, выступающие из центра саркомера к Z-дискам, но не полностью к ним.
тонкая нить
тонких нитей актина и его комплекса тропонин-тропомиозин, выступающих от Z-дисков к центру саркомера
триада
группа из одного Т-канальца и двух терминальных цистерн
тропонин
Регуляторный белок
, связывающийся с актином, тропомиозином и кальцием
тропомиозин
Регуляторный белок
, который покрывает участки связывания миозина, чтобы предотвратить связывание актина с миозином
натриевые каналы с регулируемым напряжением
мембранных белков, которые открывают натриевые каналы в ответ на достаточное изменение напряжения и инициируют и передают потенциал действия, когда Na + входит через канал

Решения

Ответы на вопросы о критическом мышлении

  1. Мышцы теряют целостность при сильных движениях, что приводит к их повреждению.
  2. Когда мышца сокращается, сила движения передается через сухожилие, которое тянет кость, вызывая движение скелета.
  3. Темные полосы A и светлые полосы I повторяются вдоль миофибрилл, и выравнивание миофибрилл в клетке приводит к тому, что вся клетка выглядит полосатой.

Произошла ошибка при настройке пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.


Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:

  • В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки вашего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
  • Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, используйте кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
  • Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
  • Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
  • Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.


Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в cookie-файлах может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

Изменение характеристик мышечных волокон и оси AMPK-SIRT1-PGC-1α в скелетных мышцах растущих свиней, получавших низкопротеиновый рацион с различным соотношением аминокислот с разветвленной цепью

Oncotarget.2017 Dec 5; 8 (63): 107011–107021.

Yehui Duan

1 Лаборатория физиологии питания животных и метаболических процессов, Институт субтропического сельского хозяйства Китайской академии наук, Ключевая лаборатория агроэкологических процессов в субтропическом регионе, Хунаньский провинциальный инженерный исследовательский центр здорового животноводства и птицеводства, Научно-наблюдательная и экспериментальная станция питания животных и науки о кормах в Южно-Центральном районе, Министерство сельского хозяйства, Чанша, Китай

2 Университет Китайской академии наук, Пекин, Китай

Fengna Li

1 Лаборатория животных Физиология питания и метаболический процесс, Институт субтропического сельского хозяйства Китайской академии наук, Ключевая лаборатория агроэкологических процессов в субтропическом регионе, Провинциальный инженерно-исследовательский центр здорового животноводства и птицеводства провинции Хунань, Научно-экспериментальная станция питания животных и кормов i n Южно-центральный, Министерство сельского хозяйства, Чанша, Китай

4 Хунаньский центр совместных инноваций по безопасности животноводства, CICAPS, Хунаньский совместный инновационный центр по использованию ботанических функциональных ингредиентов, Чанша, Хунань, Китай

Wenlong Wang

3 Лаборатория питания животных и здоровья человека, Школа биологии, Хунаньский педагогический университет, Чанша, провинция Хунань, Китай

Qiuping Guo

1 Лаборатория физиологии питания животных и метаболических процессов, Институт субтропического сельского хозяйства Китайской академии Наук, ключевая лаборатория агроэкологических процессов в субтропическом регионе, Провинциальный инженерно-исследовательский центр здорового животноводства и птицеводства провинции Хунань, Научно-наблюдательная и экспериментальная станция питания животных и кормоведение в Южно-Центральном регионе, Министерство сельского хозяйства, Чанша, Китай

2 Университет Китайской академии наук, Бейджи нг, Китай

Чаоюй Вэнь

3 Лаборатория питания животных и здоровья человека, Школа биологии, Хунаньский педагогический университет, Чанша, Хунань, Китай

Юлун Инь

1 Лаборатория физиологии питания животных и метаболического процесса , Институт субтропического сельского хозяйства Китайской академии наук, Ключевая лаборатория агроэкологических процессов в субтропическом регионе, Провинциальный инженерно-исследовательский центр здорового животноводства и птицеводства провинции Хунань, Научно-наблюдательная и экспериментальная станция питания животных и науки о кормах в Южно-Центральном регионе, Министерство of Agriculture, Чанша, Китай

3 Лаборатория питания животных и здоровья человека, Школа биологии, Хунаньский педагогический университет, Чанша, Хунань, Китай

1 Лаборатория физиологии питания животных и метаболических процессов, Институт субтропического сельского хозяйства Китайская академия наук, ключевая лаборатория Agro-Ecol Технологические процессы в субтропическом регионе, Провинциальный инженерно-исследовательский центр здорового животноводства и птицеводства провинции Хунань, Научно-исследовательская и экспериментальная станция питания животных и кормоведение в Южно-Центральном регионе, Министерство сельского хозяйства, Чанша, Китай

2 Университет Китайской академии наук, Пекин, Китай

3 Лаборатория питания животных и здоровья человека, Школа биологии, Хунаньский педагогический университет, Чанша, Хунань, Китай

4 Хунаньский центр совместных инноваций по безопасности животноводства, CICAPS, Хунань Центр совместных инноваций по использованию растительных функциональных ингредиентов, Чанша, провинция Хунань, Китай

Поступила в редакцию 4 мая 2017 г .; Принята в печать 5 сентября 2017 г.

Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License 3.0 (CC BY 3.0), которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника. были процитированы другими статьями в PMC.

Abstract

У растущих свиней в основном существуют четыре основные тяжелые цепи миозина (MyHC) (т. Е. I, IIa, IIx и IIb). Настоящее исследование направлено на изучение влияния диет с низким содержанием белка, дополненных различными аминокислотами с разветвленной цепью (BCAA), на характеристики мышечных волокон и ось AMPK-SIRT1-PGC-1α в скелетных мышцах.Сорок растущих свиней (9,85 ± 0,35 кг) были разделены на 5 групп и скармливались рационами с различными соотношениями лейцин: изолейцин: валин: 1: 0,51: 0,63 (20% сырого протеина, CP), 1: 1: 1 (17%). CP), 1: 0,75: 0,75 (17% CP), 1: 0,51: 0,63 (17% CP) и 1: 0,25: 0,25 (17% CP) соответственно. Скелетные мышцы с различным составом мышечных волокон, то есть longissimus dorsi, мышца (LM, быстро сокращающаяся гликолитическая мышца), , двуглавая мышца бедра, (BM, смешанная медленная и быстро сокращающаяся оксидогликолитическая мышца), и поясничной мышцы, большой мышцы (PM, медленно сокращающаяся окислительная мышца) были собраны и проанализированы.Результаты показали, что по сравнению с контрольной группой (1: 0,51: 0,63, 20% CP) низкобелковые диеты с соотношением лейцин: изолейцин: валин в диапазоне от 1: 0,75: 0,75 до 1: 0,25: 0,25 особенно увеличивали мРНК. и изобилие белка в волокнах MyHC I в BM и снизило количество мРНК MyHC IIb, особенно в LM ( P <0,05), с одновременным увеличением активации AMPK и количества мРНК SIRT и PGC-1α в BM ( P <0,05). Результаты показывают, что диеты с низким содержанием белка, дополненные оптимальным соотношением BCAA, т.е.е. 1: 0,75: 0,75-1: 0,25: 0,25, индуцируют более окислительную активность мышц, особенно в оксидогликолитических скелетных мышцах растущих свиней. Эти эффекты, вероятно, связаны с активацией оси AMPK-SIRT1-PGC-1α.

Ключевые слова: аминокислот с разветвленной цепью, энергетическая ось, растущие свиньи, тип мышечных волокон

ВВЕДЕНИЕ

Мышечные волокна составляют 75 ~ 90% мышц и являются основными факторами, влияющими на характеристики мышц [1 ]. Основные мышечные волокна у млекопитающих можно условно разделить на медленные и быстро сокращающиеся волокна, а затем разделить на тип I, тип IIa, тип IIx и тип IIb в мышцах конечностей и туловища.Примечательно, что другие мышцы, такие как мышцы глаз и челюсти, содержат специализированные мышечные волокна, отличные от этих четырех волокон [2]. Трудно четко различить мышечные волокна (I, IIa, IIx и IIb). Однако иммуногистохимические исследования показали, что четыре мышечных волокна (тип I, IIa, IIx и IIb) в основном содержат тяжелую цепь миозина (MyHC) I, IIa, IIx и IIb соответственно. MyHC1, IIa, IIx и IIb кодируются генами Myh7, Myh3, Myh2 и Myh5 соответственно [3].Волокна типа I (медленные, окислительные) содержат более крупные митохондрии и преимущественно окислительные ферменты, а также метаболизируют липиды в качестве источника энергии. Волокна типа IIb (быстро сокращающиеся, гликолитические) являются преимущественно гликолитическими и используют гликоген и глюкозу в качестве топлива, а волокна типа IIa (быстро сокращающиеся, окислительные) и типа IIx (быстро сокращающиеся, оксидогликолитические) являются промежуточными по сравнению с типами I и IIb. волокна [4, 5]. У животных профиль типа мышечных волокон является одним из основных факторов, влияющих на многие пери- и посмертные биохимические процессы и, следовательно, на качество мяса [1].У людей тип мышечных волокон тесно связан со здоровьем мышц и общим самочувствием [6]. По причинам, указанным выше, регуляция типа мышечных волокон представляет первостепенный интерес не только для преобразования мышц животных в мясо, но и для молекулярной медицины с точки зрения потенциальных терапевтических перспектив.

Скелетные мышцы взрослых проявляют пластичность и могут подвергаться преобразованию между различными типами волокон в ответ на множество внешних стимулов [4, 7, 8]. Питание вызвало значительный интерес в качестве внешнего стимула [9–12].Существует большое количество литературы, поддерживающей контроль питания типа мышечных волокон. Например, диета с высоким содержанием белка (30%) сохраняет распределение типов волокон, предотвращая переключение с медленных на быстро сокращающиеся волокна в камбаловидной мышце крысы [9]. Соответственно, другой эксперимент с использованием крыс также показал, что 4 недели высокобелковой диеты (35%) индуцировали изменение мышечных волокон с типа II на тип I в икроножных мышцах, что сопровождалось усилением окислительных свойств [12]. Некоторые важные регуляторы, такие как коактиватор рецептора-g, активируемого пролифератором пероксисом,-1α (PGC-1α), составляют механизм, который может быть ответственным за эффекты высокопротеиновых диет, о которых говорилось выше [12].PGC-1α посредством своего взаимодействия с транскриптом регулятора молчащей информации 1 (SIRT1) способствует регуляции преобразования волокон в тип I [13]. Более того, было продемонстрировано, что хроническая активация AMP-активируемой протеинкиназы (AMPK) вызывает мышечную пластичность и преобразование в медленную окислительную миогенную программу, потенциально связанную с усиленной экспрессией PGC-1α [14]. Эти наблюдения показывают, что ось AMPK-SIRT1-PGC-1α может способствовать медленному окислительному фенотипу.

В последние годы растет понимание того, что в свиноводстве снижение уровня сырого протеина (CP) в рационе и добавление к нему первых четырех ограничивающих кристаллических аминокислот (лизина, метионина, треонина и триптофана) могут для уменьшения выведения азота и улучшения работы желудочно-кишечного тракта после отлучения от груди.Однако параллельно будет происходить нарушение роста поросят [15–17]. Таким образом, необходимо срочно определить следующие ограничивающие аминокислоты, которые могут поддерживать рост поросят, получающих рацион с низким содержанием белка.

Лейцин (Leu) представляет собой аминокислоту с разветвленной цепью (BCAA), которая также включает изолейцин (Ile) и валин (Val). Химическая структура Leu подобна таковой Ile и Val, и Leu конкурирует с Ile и Val за те же ферменты, которые катализируют первые две катаболические стадии [18]. Избыточное количество лей в рационе может усилить катаболизм всех BCAA и, следовательно, повысить потребности в питании Ile и Val [19].Следовательно, необходимо тщательно контролировать диетическое соотношение отдельных BCAA. Ранее мы сообщали, что поддержание диетического соотношения BCAA (Leu: Ile: Val) в пределах от 1: 0,25: 0,25 до 1: 0,75: 0,75 в рационах с низким содержанием белка (17% CP) способствовало улучшению показателей роста растущих свиней, облегчая абсорбция и использование свободных аминокислот, таким образом улучшая метаболизм белков и рост мышц. Эти эффекты даже сравнялись с эффектами, наблюдаемыми в группе положительного контроля (Leu: Ile: Val = 1: 0.51: 0,63, 20% CP) [20, 21]. Хотя влияние соотношения BCAA на метаболизм мышечного белка было изучено на молекулярном уровне [21], взаимосвязь между соотношением BCAA и типами мышечных волокон не была так подробно охарактеризована. Основываясь на этих наблюдениях, мы предположили, что эффекты диеты с низким содержанием белка (17% CP) с добавлением сбалансированных BCAA могут сравняться с эффектами диет с высоким содержанием белка на типы мышечных волокон у растущих свиней с помощью AMPK-SIRT1-PGC-1α. ось. По аналогии с метаболизмом мышечных белков очень важно получить обзор взаимосвязей между соотношением BCAA и сигнальными молекулами для типов мышечных волокон.

Пропорции типа миофибрилл longissimus dorsi, мышцы (LM), двуглавой мышцы бедра, мышцы (BM) и поясничной мышцы, мышцы (PM), различаются в зависимости от их анатомического расположения и, следовательно, у них разные метаболические свойства [22] . Процент окислительных (тип I и IIa) волокон в трех скелетных мышцах следующий: PM> BM> LM. Напротив, процент гликолитических (тип IIb) волокон в мышцах PM

РЕЗУЛЬТАТЫ

Концентрации глюкозы и инсулина в сыворотке

Как показано в таблице, концентрации глюкозы в сыворотке не различались между группами ( P > 0,05). Концентрации инсулина в сыворотке крови в группе 1: 1: 1 (17% CP) были такими же, как и в контрольной группе (группа PC, Leu: Ile: Val = 1: 0.51: 0,63, 20% CP), в то время как концентрации в других экспериментальных группах значительно увеличились ( P <0,05), и не было никакой разницы между тремя группами.

Таблица 2

Влияние соотношения BCAA в рационе на биохимические параметры сыворотки у растущих свиней 1

Элемент Leu: Ile: Val SEM 9007 P значение 900 1: 0,51: 0,63 (20% CP) 1: 1: 1 (17% CP) 1: 0.75: 0,75 (17% КП) 1: 0,51: 0,63 (17% КП) 1: 0,25: 0,25 (17% КП)
Глюкоза, ммоль / л 5,21 5,62 6,22 5,24 6,69 0,41 0,20
Инсулин, МЕ / мл 9,65 b 9,60 b 17,01 3 900,2822 907 907 а 1,70 0.04

Обилие мРНК генов изоформ MyHC

Мы проанализировали обилие мРНК MyHC I, IIa, IIx и IIb в LM, BM и PM свиней, получавших низкобелковые диеты с различными соотношениями BCAA. Как показано в таблице, количество мРНК MyHC I, IIa, IIx и IIb было самым высоким в BM по сравнению с LM и PM. В частности, содержание мРНК MyHC I, IIa, IIx и IIb в BM было на 19,58%, 84,37%, 78,83% и 23,49% выше, чем в LM ( P <0.05), соответственно, и был на 4,91%, 67,38%, 97,84% и 17,20% выше, чем в PM ( P <0,05), соответственно. Более того, по сравнению с контролем в экспериментальных группах наблюдались более высокие уровни содержания мРНК MyHC I и IIa , причем самые высокие значения наблюдались в группе 1: 0,25: 0,25 ( P <0,05). Хотя экспериментальные группы показали более высокое содержание мРНК MyHC IIx , чем контрольные, содержание мРНК MyHC IIx в экспериментальных группах постепенно снижалось с уменьшением соотношения BCAA в пище, при этом наименьшее значение наблюдалось в соотношении 1: 0.25: группа 0,25 ( P <0,05). Наблюдалось взаимодействие мышцы × диета для содержания мРНК MyHC IIa, IIx и IIb в мышцах разных типов волокон ( P <0,05).

Таблица 3

Влияние различных соотношений BCAA в рационах с низким содержанием белка на относительное содержание мРНК изоформы тяжелой цепи миозина (MyHC I, IIa, IIx и IIb) в скелетных мышцах с различным составом мышечных волокон у растущих свиней 1

1767 большая поясничная мышца 0.51: 0,63 (20% CP) 90 AB 901,0 d 907
Позиция Скелетные мышцы Leu: Ile: Val ratio SEM P value
Длинная мышца спины Большая двуглавая мышца 1: 1: 1 (17% CP) 1: 0,75: 0,75 (17% CP) 1: 0,51: 0,63 (17% CP) 1: 0,25: 0,25 (17% CP) P мышца P отношение P мышца × соотношение
MyHC I 1,43 B 1,71 A 1,05 c 1,52 b 1,74 ab 1.71 ab 1,93 a 0,25 0,043 <0,001 0,133
MyHC IIa 1,28 B 2,36 A 1,58 c 1,97 b 1,55 c 2,28 a 0,25 <0,001 <0,001 <0.001
MyHC IIx 1,37 B 2,45 A 1,09 B 1,07 b 1,73 a 1.7862 1.7862 2,03 a 0,28 <0,001 <0,001 <0,001
MyHC IIb 1,49 B 1,84 A 1.57 AB 1,04 c 1,98 a 1,94 a 1,73 ab 1,48 b 0,27 0,029

Содержание мРНК SIRT1, PGC-1α, UCP3 и GLUT4

Относительные уровни содержания мРНК SIRT1, PGC-1α, разобщающего белка 3 (UCP3) и транспортера глюкозы 4 (GLUT4) представлены в Стол .Обилие мРНК SIRT1, PGC-1α и UCP3 было самым высоким в BM и самым низким в LM, с промежуточным значением в PM ( P <0,05). Обилие мРНК GLUT4 было самым высоким в PM и самым низким в LM, с промежуточным значением в BM. Кроме того, содержание мРНК SIRT1 и UCP3 в 1: 0,75: 0,75, 1: 0,51: 0,63 и 1: 0,25: 0,25 было выше, чем в контроле ( P <0,05), с наибольшим Повышение скорости наблюдается в соотношении 1: 0.51: 0,63 (17% КП). Что касается содержания мРНК PGC-1α , группы 1: 0,75: 0,75 и 1: 0,51: 0,63 показали более высокое содержание по сравнению с контролем ( P <0,05). Содержание мРНК GLUT4 в группе 1: 0,75: 0,75 было выше, чем в других группах ( P <0,05), и ни одна из этих групп не достигла статистической значимости. Наблюдалось взаимодействие мышцы × диета для содержания мРНК SIRT1, PGC-1α, UCP3 и GLUT4 в мышцах с различными типами волокон ( P <0.05).

Таблица 4

Влияние различных соотношений BCAA в рационах с низким содержанием белка на относительное содержание мРНК ключевых молекул, участвующих в энергетическом метаболизме в скелетных мышцах различных типов волокон у растущих свиней 1

903 907
Товар Скелетные мышцы Соотношение Leu: Ile: Val SEM P значение
Длинная мышца спины Двуглавая мышца бедра Большая поясничная мышца 1: 0.51: 0,63 (20% CP) 1: 1: 1 (17% CP) 1: 0,75: 0,75 (17% CP) 1: 0,51: 0,63 (17% CP) 1: 0,25: 0,25 (17% CP) P мускул P соотношение P мускул × соотношение
SIRT1 0,93 C 1,91 A 4 1,05 c 1,26 bc 1,38 b 1.73 a 1,55 ab 0,25 <0,001 <0,001 <0,001
PGC-1α 1,16 B 1,56 907 1,07 b 1,12 b 1,60 a 1,53 a 1,22 b 0,23 <0,001 <0,001
UCP3 0,75 C 1,61 A 1,33 B 1,06 b 1,10 b 1,27 907 903 903 907 1,28 ab 0,22 <0,001 <0,001 <0,001
GLUT4 0,91 C 1,12 B 1.61 A 1,08 b 1,15 b 1,40 a 1,19 b 1,21 b 0,20 <0,0012 <0,0012

Обилие белка

MyHC I и IIa , а также ось AMPK-SIRT1-PGC-1α

Как показано на рисунке, в LM обилие белка MyHC IIa и I был самым высоким — 1: 0.75: 0,75 и 1: 0,51: 0,63 (17% CP) и наименьшее значение в группе 1: 0,25: 0,25, с промежуточным значением в 1: 1: 1 и контроле ( P <0,05). Изменение содержания белка p-SIRT1 и p-AMPKα показало те же тенденции, что и у MyHC IIa и I . Содержание белка PGC-1α в группе 1: 0,25: 0,25 было таким же, как и в контроле ( P > 0,05), в то время как 1: 1: 1, 1: 0,75: 0,75 и 1: 0,51 : 0.63 (17% CP) группы не смогли довести содержание белка PGC-1α до того же уровня, который наблюдался в контрольной группе ( P <0,05). В BM (рисунок) содержание белка MyHC IIa и I в группе 1: 0,25: 0,25 не отличалось от такового в контроле, в то время как другие экспериментальные группы не смогли довести количество до того же уровня, что и в группе. контроль ( P <0,05). Содержание белка PGC-1α было самым высоким в соотношении 1: 0.51: 0,63 (17% CP) группа ( P <0,05), и другие экспериментальные группы существенно не отличались от контрольной. Обилие белка p-SIRT1 было самым высоким в группе 1: 0,75: 0,75 ( P <0,05), а другие экспериментальные группы существенно не отличались от контрольной группы. Обработка не влияла на содержание белка p-AMPKα ( P > 0,05). В PM (рисунок) экспериментальные группы имели тенденцию к увеличению содержания белка MyHC IIa и I , причем наибольшее увеличение наблюдалось в соотношении 1: 0.51: 0,63 (17% CP) группа ( P <0,05). Изменение содержания белка p-SIRT1 и p AMPKα показало те же тенденции, что и у MyHC IIa и I . Содержание белка PGC-1α в группах 1: 1: 1 и 1: 0,25: 0,25 было таким же, как и в контроле ( P > 0,05), в то время как 1: 0,75: 0,75 и 1: 0,51: 0,63 (17% CP) группы не смогли довести содержание белка PGC-1α до того же уровня, который наблюдался в контрольной группе ( P <0.05).

Уровни содержания белка MyCH I, MyCH IIa и p / t-SIRT1, p / t-AMPKα, PGC-1α в длинной мышце спины, двуглавой мышце бедра и большой поясничной мышце у растущих свиней, получавших низкопротеиновые диеты с добавлением различных соотношений BCAA

Данные были нормализованы до значения соответствующего общего белка или внутреннего контрольного β-актина и выражены как среднее значение ± SE (n = 8). Значения в строке с разными надстрочными индексами значительно различаются ( P <0,05).

ОБСУЖДЕНИЕ

Скелетная мышца, включая LM, BM и PM, представляет собой очень гетерогенную ткань, в основном состоящую из четырех типов миофибрилл: окислительных (I и IIa), промежуточных (IIx) и гликолитических (IIb) [22] .Существуют заметные различия в соотношении волокон между этими мышцами. LM свиньи имеет высокую долю волокон типа IIb и небольшую долю волокон типа I и классифицируется как гликолитическая скелетная мышца [23]. BM также в основном содержит волокна типа IIb, тогда как окислительный тип I в BM выше, чем в LM. Таким образом, BM классифицируется как оксидогликолитическая скелетная мышца. По сравнению с LM и BM, PM содержит относительно более высокий процент волокон типа I и более низкий процент волокон типа IIb и классифицируется как окислительные скелетные мышцы [24].Наши исследования показали, что содержание мРНК как окислительных, так и гликолитических изоформ особенно увеличивалось в BM свиней в ответ на лечение низкобелковыми диетами с различными соотношениями BCAA (1: 0,75: 0,75 ~ 0,25: 0,25), однако, по сравнению с LM и PM степень увеличения (103,95% и 72,29% соответственно) окислительных изоформ (I и IIa) в BM была выше, чем степень увеличения (78,83% и 17,20% соответственно) гликолитических изоформ (IIb) . Следовательно, трансформация гликолитических волокон в окислительные может происходить в BM в ответ на диетическое лечение.Фенотип мышечных волокон тесно связан с качеством мяса и здоровьем мышц. Более высокое количество волокон типа I и IIa связано с повышенной нежностью мяса [25] и обеспечивает защиту от инсулинорезистентности и метаболической дисрегуляции [7, 26]. Напротив, увеличение процента волокон типа IIb может увеличить потери стекания и сделать мясо более жестким [27]. Основываясь на этом, наши результаты показывают, что кормление диет с низким содержанием белка (17% CP) с различными соотношениями BCAA (1: 0,75: 0,75 ~ 0,25: 0,25) может стимулировать окисление мышц, что способствует улучшению качества мяса и здоровья мышц. .

Изменение типа волокна от гликолитического к окислительному в BM свиней согласуется с функцией AMPK в скелетных мышцах. Фермент AMPK является основным энергетическим сенсором миоцитов [28]. Мышцы, богатые волокнами типа IIb, могут иметь более высокую активность AMPK , чем мышцы, богатые волокнами типа I и IIa, для более эффективного или быстрого модулирования энергетических процессов, тем самым сохраняя энергию для активности АТФазы и затрат на напряжение. Следовательно, активность AMPK можно регулировать в соответствии с энергетическими потребностями различных типов мышечных волокон.Это указывает на тесную взаимосвязь между активностью AMPK и функцией мышц [29]. Хронические упражнения на мышах усиливают биогенез митохондрий и индуцируют переход скелетных мышц с гликолитических волокон в окислительные; эти переходы блокируются у AMPKα -неактивных мышей [30, 31]. Аналогичным образом, хроническая активация AMPK путем инъекции AICAR способствует переходу от быстрого к медленному типу волокон в скелетных мышцах кроликов и грызунов [14, 32]. Сообщения о влиянии AMPKα на трансформацию мышечных волокон в основном сосредоточены на грызунах, а связь между AMPKα и трансформацией мышечных волокон свиней не совсем понятна.Однако недавно сообщалось, что лечение матерью линолевой кислотой с пищей увеличивает количество мРНК AMPKα у поросят, которые имеют больше окислительных мышечных волокон [33]. Эти данные показывают, что AMPKα может быть связан с составом мышечных волокон свиней. В соответствии с предыдущими исследованиями мы обнаружили, что диеты с низким содержанием белка, дополненные различными соотношениями BCAA (1: 0,75: 0,75 ~ 1: 0,25: 0,25), специфически стимулировали активацию AMPK в BM, который имел больше окислительных мышечных волокон, чем LM. и личка.Напротив, другие исследования показали другие модели ответов. Например, предыдущие исследования показали подавление AMPK у крыс, получавших повышенное содержание Leu [34], или фосфорилирование AMPK было увеличено в ответ на высокую концентрацию BCAA, но сопровождалось воспалением [35]. Расхождения между этими результатами могут быть связаны с несколькими факторами, включая модель на животных и экспериментальные условия (например, соотношение BCAA). Хотя мы показываем потенциальную связь между соотношением BCAA и активацией AMPK, проксимальные механизмы, с помощью которых AMPK отвечает на соотношения BCAA, остаются неуловимыми.В целом, мРНК, специфичная для определенного типа мышечных волокон, и изобилие белка AMPKα могут способствовать переходу от гликолитических к окислительным волокнам в BM.

Сообщалось, что PGC-1α , расположенный ниже AMPK , был предложен как частично ответственный за эффекты, оказываемые AMPK на трансформацию мышечных волокон [3]. Эксперименты на мышах показали, что избыток PGC-1α приводит к усилению волокон типа I [13], тогда как пропорции волокон типа I имеют тенденцию к снижению у мышей с мышечно-специфическим нокаутом PGC-1α [36]. AMPK может модулировать PGC-1α напрямую или через SIRT1 [37]. В соответствии с обилием белка AMPK , обилие мРНК SIRT1 и PGC-1α было выше в BM у свиней, получавших низкобелковые диеты с различными соотношениями BCAA (1: 0,75: 0,75 ~ 1: 0,25: 0,25). Настоящие результаты предполагают, что диеты с низким содержанием белка, дополненные оптимальным соотношением BCAA, специфически повышают содержание AMPK в костном мозге растущих свиней и что AMPK может влиять на трансформацию мышечных волокон, модулируя содержание мРНК PGC-1α .Предыдущие исследования показали, что ось AMPK-SIRT1 , воспринимающая энергетический статус клетки, может модулировать тип мышечных волокон, воздействуя на митохондрии [38-40]. Функция митохондрий рассматривается как новый медиатор типа волокон скелетных мышц, и PGC-1α играет особенно важную роль в биогенезе и функции митохондрий [41]. Кроме того, митохондриальный биогенез участвует в роли Leu в энергетическом метаболизме [42]. Имеются убедительные доказательства того, что Leu (0,5 мМ) может усиливать биогенез митохондрий в миоцитах C2C12 и регулировать энергетический метаболизм скелетных мышц, модулируя количество SIRT1 и PGC-1α [43].Таким образом, предполагается, хотя еще не проверено в настоящем исследовании, что ось AMPK-SIRT1-PGC1a вносит вклад в изменения типа волокон скелетных мышц в ответ на диетическое лечение, влияя на биогенез и функцию митохондрий. Для подтверждения этой гипотезы необходимы дальнейшие исследования.

В соответствии с типичным сдвигом типа волокон с быстрого на медленное, увеличение численности GLUT4 обычно происходит параллельно с активацией AMPK и PGC-1α , что приводит к усилению метаболизма глюкозы в мышцах и использованию энергии [ 44, 45].Более того, содержание белка GLUT4 и поглощение мышечной глюкозы увеличивались в ответ на активацию AMPK , особенно в быстро сокращающихся гликолитических мышцах, а не в медленно сокращающихся окислительных мышцах [46]. В отличие от этих предыдущих исследований, мы не наблюдали одновременного увеличения содержания GLUT4 и AMPKα в BM после диетического лечения. Вместо этого PM показал наибольшее содержание GLUT4 . Наши данные свидетельствуют о том, что способность усваивать глюкозу мышцами может быть улучшена, особенно в медленно сокращающихся окислительных мышцах.У грызунов содержание GLUT4 изначально больше в мышцах окислительного типа I по сравнению с мышцами гликолитического типа IIb [47]. В соответствии с этим наши результаты на свиньях показали, что окислительные PM содержат больше GLUT4 , чем окислительно-гликолитические BM и гликолитические LM, хотя активности AMPK и PGC-1α были значительно повышены в BM. Напротив, в других исследованиях были выявлены другие модели реакций в мышцах других видов. Исследования с использованием моделей на крысах и людях показывают, что уровень GLUT4 не всегда выше в типе I, чем в типе II [48].Сообщалось о более высоком уровне GLUT4 в волокнах типа IIb, чем в волокнах типа I и IIa в мышцах лошади [49]. Более того, некоторые исследования показывают, что существует небольшая взаимосвязь между содержанием GLUT4 и типом клетчатки, хотя тренировка с физической нагрузкой увеличивает уровень GLUT4 [50]. Следовательно, GLUT4 может быть больше связан с мышечной активностью, чем с изоформой MyHC , и точный механизм, с помощью которого AMPK модулирует характерное для типа мышечного волокна количество GLUT4 , остается неуловимым.

Сообщалось, что изобилие UCP3 тесно связано с метаболизмом глюкозы в скелетных мышцах. Избыточная экспрессия UCP3 в мышечных трубках L6 способствует поглощению глюкозы за счет увеличения набора переносчика глюкозы GLUT4 на поверхность клетки [51]. Было показано, что количество мРНК UCP3 и GLUT4 увеличивается параллельно после упражнений на выносливость [52]. Один из предложенных механизмов, с помощью которого UCP3 может влиять на поглощение глюкозы посредством транслокации GLUT4 , — через AMPK [53].Эксперименты на людях также показывают, что UCP3 экспрессируется более обильно в гликолитических мышечных волокнах типа IIb, чем в окислительных мышечных волокнах типа I [54]. В отличие от предыдущих результатов, мы обнаружили, что в наших экспериментальных условиях in vivo содержание мРНК UCP3 было самым высоким в окислительно-гликолитических скелетных мышцах (BM) и самым низким в гликолитических скелетных мышцах (LM) растущих свиней. Паттерн изобилия мРНК UCP3 был аналогичен паттерну изобилия белка AMPKα в скелетных мышцах.Однако количество мРНК GLUT4 не увеличивалось параллельно с UCP3 . Эксперименты на мышах также показывают, что сверхэкспрессия UCP3 снижает уровни глюкозы и инсулина в плазме [55]. Однако в настоящем исследовании не было отмечено различий в концентрациях глюкозы в сыворотке между всеми группами, а концентрации инсулина в сыворотке были увеличены у свиней, получавших рационы с различными соотношениями BCAA (1: 0,75: 0,75 ~ 1: 0,25: 0,25). Особенностью скелетных мышц является то, что они состоят из разных типов мышечных волокон с разной способностью реагировать на внешние раздражители [56].Следовательно, хотя причина этого несоответствия не ясна, возможно, что разница в экспериментальных подходах, таких как породы животных, упражнения или нет, а также диеты, могли способствовать наблюдаемой разнице. В целом, наши данные свидетельствуют о том, что активация AMPKα увеличивала уровни мРНК PGC-1α и содержания белка и, следовательно, увеличивала содержание UCP3 , особенно в оксидогликолитических скелетных мышцах (BM).

Таким образом, здесь мы продемонстрировали, что диеты с низким содержанием белка, дополненные оптимальным соотношением BCAA, т.е.е. 1: 0,75: 0,75-1: 0,25: 0,25, индуцировал трансформацию мышечных волокон из гликолитических в окислительные волокна, особенно в окислительно-гликолитических скелетных мышцах растущих свиней. Эти эффекты, вероятно, были связаны с активацией оси AMPK-SIRT1-PGC-1α . Кроме того, такое лечение также увеличивало содержание мРНК UCP3 в оксидогликолитических скелетных мышцах. Предполагается, что эта адаптация может быть связана с повышенной активностью AMPKα . С другой стороны, паттерн изобилия мРНК GLUT4 в выбранных мышцах может не зависеть от пути AMPK .

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Все процедуры, использованные в настоящем эксперименте, были одобрены комитетом по уходу за животными Института субтропического сельского хозяйства Китайской академии наук.

Животные и рационы

Всего было отобрано сорок свиней (крупная белая × ландрас) со средним исходным весом (9,85 ± 0,35 кг) и случайным образом распределено по пяти режимам питания. Каждое лечение имело восемь повторов (n = 8). Животных содержали индивидуально в клетках.Рационы основывались на кукурузе и соевом шроте, а составы различались по количеству CP и AA (дополнительная таблица 1). Все диеты были обогащены лизином, метионином, треонином и триптофаном для обеспечения рекомендованных уровней в соответствии с Национальным исследовательским советом (NRC, [57]). Диеты группы положительного контроля (ПК) содержали 20% CP с соотношением Leu: Ile: Val 1: 0,51: 0,63 в соответствии с рекомендацией NRC 2012 года [57]. В четырех экспериментальных группах диетический уровень CP был снижен до 17%, а соотношение Leu: Ile: Val составляло 1: 1: 1, 1: 0.75: 0,75, 1: 0,51: 0,63 и 1: 0,25: 0,25 соответственно. Общее количество BCAA было одинаковым во всех вариантах лечения. Все экспериментальные диеты были составлены как изоэнергетические и удовлетворяли пищевым потребностям растущих свиней (дополнительная таблица 1). Свиньи кормились экспериментальным рационом ad libitum и имели неограниченный доступ к чистой питьевой воде. Эксперимент длился 45 дней.

Сбор образцов ткани

Перед убоем образцы крови из пункции яремной вены собирали в пробирки объемом 10 мл для определения биохимических показателей сыворотки крови.Сыворотку отделяли центрифугированием при 3000 g в течение 10 мин при 4 ° C, а затем хранили при -80 ° C до анализа. В конце теста на кормление все свиньи были голодны в течение ночи и забиты путем электрического оглушения (250 В, 0,5 А, в течение 5–6 секунд) и обескровливания, как описано в нашем предыдущем исследовании [58]. Сразу же образцы скелетных мышц, включая LM, BM и PM, были быстро вырезаны с левой стороны туши. Затем образцы помещали в 10% нейтральный забуференный формалин или помещали в жидкий азот и затем хранили при -80 ° C, соответственно, до дальнейшего анализа.

Измерение сывороточных концентраций глюкозы и инсулина

Концентрации сывороточного инсулина измеряли с использованием коммерческих наборов для ELISA (Cusabio Life Science Inc., Ухань, Китай). Концентрации циркулирующей глюкозы определяли с помощью коммерческого набора от CIBA Corning (Огайо, США).

Обратная транскрипция и количественная ПЦР в реальном времени

Обратную транскрипцию и количественную ПЦР в реальном времени проводили, как описано ранее [22, 58]. Вкратце, тотальную РНК экстрагировали из скелетных мышц с использованием реагента Trizol (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA).Праймеры для выбранных генов были сконструированы с помощью программы Oligo 6.0 (таблица). RT выполняли с использованием набора для обратной транскриптазы AMV (Promega). Относительные уровни экспрессии генов-мишеней определяли с помощью количественной ПЦР в реальном времени, выполняемой с помощью системы ПЦР ABI 7900 (ABI Biotechnology). Конечный объем реакционных смесей (20 мкл) содержал разбавленную комплементарную ДНК и SYBR Green I (молекулярные зонды) в качестве основного реагента ПЦР. Ген содержания в жилище β-актин использовали в качестве внутреннего контроля для нормализации экспрессии генов-мишеней.Относительную количественную оценку амплификации гена с помощью ОТ-ПЦР проводили с использованием значения порогового цикла (Ct). Относительную экспрессию генов-мишеней определяли методом 2 -∆∆Ct [58, 59].

Таблица 1

Праймеры, используемые для количественной ПЦР в реальном времени

rse
Гены Праймеры Последовательности (5′-3 ‘) Размер (п.о.)
MyHC I Форвард GGCCCCTTCCAGCTTGA 63
Обратный TGGCTGCGCCTTGGTTT
MyHC IIa Форвард TTAAAAAGCTCCAAGAACTGTTTCA 109
Обратный CCATTTCCTGGTCGGAACTC
MyHC IIx Вперед AGCTTCAAGTTCTGCCCCACT 79
Задний ход GGCTGCGGGTTATTGATGG
MyHC IIbACT
MyHC IIbACT GGCAGCAGGGCACTAGATGT
SIRT1 Обратный GGTTTGAAGAATGTTGCCTG 114
Форвард CCGTTTACTAATCTGCTCCT
PGC-1α Обратный GCCCAGTCTGCGGCTATTT 265
Форвард GTTCAGCTCGGCTCGGATTT
UCP3 Обратный GAGATGGTGACCTATGATGT 260
Форвард CGCAAAAAGGAAGGTGTGAA
GLUT4 Обратный CGAGGCAGGACGTTTGACC 75
Вперед CTCCAGTTCTGTGCTGGGTTTC
β-actin Вперед TGCGGGACATCAAGGAGAAG 292
AGTTGAAGGTGGTCTCGTGG

Вестерн-блоттинг-анализ

Вестерн-блоттинг-анализ проводился в соответствии с нашими предыдущими исследованиями [22, 60, 61].Вкратце, образцы тканей (около 500-800 мг) измельчали ​​в жидком N2 для экстракции общего белка. Общий белок (примерно 30-50 мкг) отделяли восстановлением электрофореза в SDS-PAGE. Использовались следующие поликлональные антитела: анти- MyHC IIa (Santa Cruz Biotechnology, sc-71632), анти- MyHC I (Santa Cruz Biotechnology, sc-53089), анти- PGC-1α (Cell Signaling). Technology, Danvers, MA; # 4259), антифосфор (p) — AMPKα (Cell Signaling Technology, Danvers, MA; # 2535), всего (t) — AMPKα (Cell Signaling Technology, Danvers, MA; № 2532S), анти-p- SIRT1 (Cell Signaling Technology, Danvers, MA; № 2314), t- SIRT1 Cell Signaling Technology, Danvers, MA; # 2310S) и анти-β-актин (Santa Cruz Biotechnology, sc-47778).Вторичные антитела (козий анти-кроличий IgG: ZSGB-BIO, ZB-2301; козий анти-мышиный IgG: ZSGB-BIO, ZB-2305) использовали (1: 5000) в течение 1 ч при комнатной температуре. Полосы белка визуализировали с использованием хемилюминесцентного реагента (Pierce, Rockford, USA) с системой ChemiDoc XRS (Bio-Rad, Philadelphia, PA, USA). Мы количественно оценили полученные сигналы с помощью программного обеспечения Alpha Imager 2200 (Alpha Innotech Corporation, Калифорния, США) и нормализовали данные со значением соответствующего общего белка или внутреннего контроля.

Статистический анализ

Данные о параметрах сыворотки и размере волокон, полученные в этом исследовании, анализировали с помощью одностороннего дисперсионного анализа (ANOVA) с использованием программного обеспечения SAS 8.2 (Кэри, Северная Каролина, США) с последующим тестом множественного сравнения Дункана. Другие данные в настоящем исследовании были получены с помощью дисперсионного анализа с использованием общих процедур линейной модели SAS, подходящих для факторного плана 2 × 2 (SAS Inc., Кэри, Северная Каролина). Статистическая модель включала влияние мышц (LM, BM или PM), диеты (1: 0.51: 0,63 (20% CP), 1: 1: 1 (17% CP), 1: 0,75: 0,75 (17% CP), 1: 0,51: 0,63 (17% CP) и 1: 0,25: 0,25 (17% CP). % CP)) и их взаимодействия. Различия между видами лечения оценивали с помощью теста Тьюки. Результаты представлены как средние значения со стандартными ошибками. Различия между значимыми средними считались статистически разными при P <0,05 и тенденцией к значимости при P <0,10.

Чтобы просмотреть дополнительные материалы к этой статье, перейдите по ссылке https: //.springer.com/article/10.1007/s00726-016-2223-2

ТАБЛИЦА ДОПОЛНИТЕЛЬНЫХ МАТЕРИАЛОВ

Выражение признательности

Это исследование финансировалось Национальной программой фундаментальных исследований Китая (2013CB127305), основным проектом провинции Хунань (2015NK1002). ), Китайская система сельскохозяйственных исследований (CARS-35), научно-технические проекты провинции Хунань (2017RS3058, 2016SK3022), Ассоциация содействия молодежным инновациям CAS (2016326), Проект молодежной инновационной группы ISA, CAS (2017QNCXTD_ZCS), ключевой Проект плана исследований и разработок провинции Хунань (2016NK2170) и Национального министерства науки и технологий (2014BAD08B11).

Сокращения

longissimus dorsi
AMPKα AMP-активированная протеинкиназа α
AP адекватный белок
BCAA аминокислота с разветвленной цепью
BM двуглавой мышцы бедра
CP сырой белок
GLUT4 транспортер глюкозы 4
Ile изолейцин
Leu лейцин
LM longissimus dorsi
LP с низким содержанием белка
MyHC тяжелая цепь миозина
PGC-1α пероксисомный пролифератор-активируемый рецептор-g-рецептор-1α
PM поясничная мышца большая мышца
SIRT1 бесшумная информация n транскрипт регулятора 1
UCP3 разобщающий белок 3
Val валин
Предоставлено

Вклад авторов

YLY и FNL разработали и разработали исследование.YHD провела испытание на животных, проанализировала и интерпретировала данные и написала статью. WLW, QPG и CYW помогли со сбором тканей, отредактировали рукопись и выполнили химический анализ. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

КОНФЛИКТЫ ИНТЕРЕСОВ

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

СПРАВОЧНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

1. Ли Ш., Джу С.Т., Рю Ю.С. Тип волокон скелетных мышц и миофибриллярные белки в зависимости от качества мяса.Meat Sci. 2010; 86: 166–70. [PubMed] [Google Scholar] 2. Росси А.С., Маммукари С., Аргентини С., Реджиани С., Скьяффино С. Два новых / древних миозина в скелетных мышцах млекопитающих: MYh24 / 7b и MYh25 экспрессируются в экстраокулярных мышцах и мышечных веретенах. J Physiol. 2010. 588: 353–64. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 3. Наказато К., Цутаки А. Механизмы регуляции типов мышечных волокон и их возможное взаимодействие с внешними пищевыми стимулами. J Phys Fitness Sports Med. 2012; 1: 655–64.[Google Scholar] 4. Петте Д., Старон Р.С. Изоформы миозина, типы мышечных волокон и переходы. Microsc Res Tech. 2000; 50: 500–09. [PubMed] [Google Scholar] 5. Чой Ю.М., Рю Ю.С., Ким BC. Влияние изоформ тяжелой и легкой цепей миозина на раннюю посмертную скорость гликолиза и качество свинины. Meat Sci. 2007. 76: 281–88. [PubMed] [Google Scholar] 6. Bassel-Duby R, Olson EN. Сигнальные пути ремоделирования скелетных мышц. Анну Рев Биохим. 2006; 75: 19–37. [PubMed] [Google Scholar] 7. Ван YX, Zhang CL, Yu RT, Cho HK, Nelson MC, Bayuga-Ocampo CR, Ham J, Kang H, Evans RM.Регулирование типа мышечных волокон и беговой выносливости с помощью дельты PPAR. PLoS Biol. 2004; 2: 1532–39. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 8. Дуань Ю., Ли Ф., Тан Б., Яо К., Инь Ю. Метаболический контроль миофибрилл: многообещающая терапевтическая цель при ожирении и диабете 2 типа. Obes Rev.2017; 18: 647–59. [PubMed] [Google Scholar] 9. Taillandier D, Bigard X, Desplanches D, Attaix D, Guezennec CY, Arnal M. Роль потребления белка на синтез белка и распределение волокон в невзвешенной камбаловидной мышце. J Appl Physiol (1985) 1993; 75: 1226–32.[PubMed] [Google Scholar] 10. Белый П., Каттанео Д., Даунси М.Дж. Постнатальная регуляция экспрессии изоформы тяжелой цепи миозина и активности метаболических ферментов с помощью питания. Br J Nutr. 2000; 84: 185–94. [PubMed] [Google Scholar] 11. Brodsky IG, Suzara D, Hornberger TA, Goldspink P, Yarasheski KE, Smith S, Kukowski J, Esser K, Bedno S. Ограничение изоэнергетического пищевого белка снижает фракцию тяжелой цепи IIx миозина и продукцию тяжелых цепей миозина у людей. J Nutr. 2004. 134: 328–34. [PubMed] [Google Scholar] 12.Наказато К., Сонг Х. Повышенные окислительные свойства икроножной мышцы у крыс, получавших диету с высоким содержанием белка. J Nutr Biochem. 2008; 19: 26–32. [PubMed] [Google Scholar] 13. Lin J, Wu H, Tarr PT, Zhang CY, Wu Z, Boss O, Michael LF, Puigserver P, Isotani E, Olson EN, Lowell BB, Bassel-Duby R, Spiegelman BM. Коактиватор транскрипции PGC-1 alpha управляет образованием медленно сокращающихся мышечных волокон. Природа. 2002; 418: 797–801. [PubMed] [Google Scholar] 14. Ljubicic V, Miura P, Burt M, Boudreault L, Khogali S, Lunde JA, Renaud JM, Jasmin BJ.Хроническая активация AMPK вызывает медленную окислительную миогенную программу и запускает полезные адаптации в скелетных мышцах мышей MDX. Hum Mol Genet. 2011; 20: 3478–93. [PubMed] [Google Scholar] 15. Lordelo MM, Gaspar AM, Le Bellego L, Freire JP. Добавление изолейцина и валина к рациону на основе кукурузо-пшенично-соевой муки с низким содержанием белка для поросят: показатели роста и азотный баланс. J Anim Sci. 2008; 86: 2936–41. [PubMed] [Google Scholar] 16. Чжан С., Цяо С., Рен М., Цзэн Х, Ма Х, Ву З., Такер П., Ву Г.Добавление аминокислот с разветвленной цепью к низкобелковой диете регулирует кишечную экспрессию переносчиков аминокислот и пептидов у поросят-отъемышей. Аминокислоты. 2013; 45: 1191–205. [PubMed] [Google Scholar] 17. Le Bellego L, Noblet J. Эффективность и использование диетической энергии и аминокислот у поросят, получавших рацион с низким содержанием белка. Livest Prod Sci. 2002. 76: 45–58. [Google Scholar] 18. Лангер С., Счисловски П.В., Браун Д.С., Дьюи П., Фуллер М.Ф. Взаимодействие между аминокислотами с разветвленной цепью и их влияние на утилизацию метионина у растущих свиней: влияние на концентрацию амино- и кетокислот в плазме и активность дегидрогеназы кетокислот с разветвленной цепью.Br J Nutr. 2000. 83: 49–58. [PubMed] [Google Scholar] 19. Wiltafsky MK, Pfaffl MW, Roth FX. Влияние взаимодействий аминокислот с разветвленной цепью на показатели роста, метаболиты в крови, кинетику ферментов и транскриптомику у свиней-отъемышей. Br J Nutr. 2010; 103: 964–76. [PubMed] [Google Scholar] 20. Дуань YH, Цзэн Л.М., Ли ФН, Ли YH, Тан BE, Цзи YJ, Kong XF, Тан YL, Чжан YZ, Инь YL. Влияние соотношения аминокислот с разветвленной цепью в рационе на показатели роста и аминокислотный пул сыворотки растущих свиней. J Anim Sci.2016; 94 (Приложение 3): 129–34. [Google Scholar] 21. Duan Y, Guo Q, Wen C, Wang W, Li Y, Tan B, Li F, Yin Y. Профиль свободных аминокислот и экспрессия генов, связанных с метаболизмом белка в скелетных мышцах растущих свиней, получавших низкопротеиновые диеты с добавлением разветвленных -цепочечные аминокислоты. J. Agric Food Chem. 2016; 64: 9390–400. [PubMed] [Google Scholar] 22. Li Y, Li F, Wu L, Wei H, Liu Y, Li T, Tan B, Kong X, Yao K, Chen S, Wu F, Duan Y, Yin Y. Влияние ограничения пищевого белка на характеристики мышечных волокон и mTORC1 путь в скелетных мышцах свиней на доращивании-откорме.J Anim Sci Biotechnol. 2016; 7: 47. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 23. Чой Ю.М., Рю Ю.С., Ким BC. Влияние изоформ тяжелой цепи миозина на характеристики мышечных волокон и качество мяса в длиннейшей мышце свиньи. J Muscle Foods. 2006; 17: 413–27. [Google Scholar] 24. Карлссона А.Х., Клонтб Р.Э., Фернандезк X. Волокна скелетных мышц как факторы качества свинины. Livest Prod Sci. 1999. 60: 255–69. [Google Scholar] 25. Maltin CA, Sinclair KD, Warriss PD, Grant CM, Porter AD, Delday MI, Warkup CC. Влияние возраста убоя, генотипа и системы откорма на биохимические свойства, характеристики типа мышечных волокон и пищевые качества быка, полученного от молочных телят.Anim Sci. 1998. 66: 341–48. [Google Scholar] 26. Барнс Б.Р., Марклунд С., Штайлер Т.Л., Уолтер М., Хьялм Дж., Амаргер В., Махлапуу М., Ленг Й., Йоханссон С., Галуска Д., Линдгрен К., Абринк М., Стэплтон Д. и др. Изоформа 5′-AMP-активированной протеинкиназы гамма3 играет ключевую роль в метаболизме углеводов и липидов в гликолитических скелетных мышцах. J Biol Chem. 2004. 279: 38441–47. [PubMed] [Google Scholar] 27. Чой Ю.М., Ким BC. Характеристики мышечных волокон, изоформы миофибриллярного белка и качество мяса. Livest Sci.2009. 122: 105–18. [Google Scholar] 28. Харди Д.Г., Карлинг Д., Карлсон М. Подсемейство AMP-активированных / SNF1 протеинкиназ: метаболические сенсоры эукариотической клетки? Анну Рев Биохим. 1998. 67: 821–55. [PubMed] [Google Scholar] 29. Парк СК, Шеффлер Т.Л., Сперлок М.Э., Грант А.Л., Джеррард Д.Е. Хроническая активация 5′-AMP-активированной протеинкиназы изменяет экспрессию тяжелой цепи миозина у растущих свиней. J Anim Sci. 2009. 87: 3124–33. [PubMed] [Google Scholar] 30. Röckl KS, Hirshman MF, Brandauer J, Fujii N, Witters LA, Goodyear LJ.Адаптация скелетных мышц к тренировкам: активированная АМФ протеинкиназа опосредует сдвиг типа мышечных волокон. Диабет. 2007; 56: 2062–69. [PubMed] [Google Scholar] 31. Ян З., Окуцу М, Ахтар Ю.Н., Лира В.А. Регуляция индуцированной физической нагрузкой трансформации типов волокон, митохондриального биогенеза и ангиогенеза в скелетных мышцах. J Appl Physiol (1985) 2011; 110: 264–74. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 32. Green HJ, Düsterhöft S, Dux L, Pette D. Паттерны метаболизма, связанные с истощением, восстановлением и трансформацией хронически стимулированных быстро сокращающихся мышц кролика.Pflugers Arch. 1992; 420: 359–66. [PubMed] [Google Scholar] 33. Лу ZQ, Ren Y, Zhou XH, Yu XF, Huang J, Yu DY, Wang XX, Wang YZ. Добавка линолевой кислоты в рацион матери способствует преобразованию типа мышечных волокон поросят-сосунов. J Anim Physiol Anim Nutr (Berl), 2016 Epub в преддверии печати. https://doi.org/10.1111/jpn.12626. [PubMed] [Google Scholar] 34. Саха А.К., Сюй XJ, Лоусон Э., Деоливейра Р., Брэндон А.Э., Креген Э.В., Рудерман Н.Б. Подавление AMPK сопровождает индуцированное лейцином и глюкозой увеличение синтеза белка и резистентности к инсулину в скелетных мышцах крыс.Диабет. 2010; 59: 2426–34. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 35. Женюх О., Сивантос Э., Руис-Ортега М., Санчес М.С., Васкес С., Пейро С., Эджидо Дж., Мас С. Высокая концентрация аминокислот с разветвленной цепью способствует окислительному стрессу, воспалению и миграции мононуклеарных клеток периферической крови человека через активацию mTORC1 . Free Radic Biol Med. 2017; 104: 165–77. [PubMed] [Google Scholar] 36. Handschin C, Chin S, Li P, Liu F, Maratos-Flier E, Lebrasseur NK, Yan Z, Spiegelman BM. Переключение типа волокон скелетных мышц, непереносимость физических упражнений и миопатия у животных с нокаутом, специфичным для мышц PGC-1alpha.J Biol Chem. 2007. 282: 30014–21. [PubMed] [Google Scholar] 37. Cantó C, Auwerx J. PGC-1alpha, SIRT1 и AMPK, сеть измерения энергии, которая контролирует расход энергии. Curr Opin Lipidol. 2009. 20: 98–105. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 38. Парсонс С.А., Уилкинс Б.Дж., Буэно О.Ф., Молькентин Д.Д. Измененные фенотипы скелетных мышц у мышей, нацеленных на кальциневрин Aalpha и Abeta. Mol Cell Biol. 2003. 23: 4331–43. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 39. Харди Д.Г., Росс Ф.А., Хоули С.А. AMPK: датчик питательных веществ и энергии, поддерживающий гомеостаз энергии.Nat Rev Mol Cell Biol. 2012; 13: 251–62. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 40. Chalkiadaki A, Igarashi M, Nasamu AS, Knezevic J, Guarente L. Мышечно-специфическое усиление функции SIRT1 увеличивает медленно сокращающиеся волокна и улучшает патофизиологию на мышиной модели мышечной дистрофии Дюшенна. PLoS Genet. 2014; 10: e1004490. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 41. He X, Duan Y, Yao K, Li F, Hou Y, Wu G, Yin Y. β-Гидрокси-β-метилбутират, митохондриальный биогенез и здоровье скелетных мышц.Аминокислоты. 2016; 48: 653–64. [PubMed] [Google Scholar] 42. Дуань И, Ли Ф, Лю Х, Ли И, Лю И, Конг Х, Чжан И, Дэн Д., Тан И, Фэн З, Ву Г, Инь Ю. Питательная и регулирующая роль лейцина в росте мышц и сокращении жира. Front Biosci (Landmark Ed) 2015; 20: 796–813. [PubMed] [Google Scholar] 43. Солнце X, Земель МБ. Лейциновая модуляция митохондриальной массы и потребления кислорода в клетках скелетных мышц и адипоцитах. Нутр Метаб (Лондон) 2009; 6: 26. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 44. Харди Д.Г., Сакамото К.AMPK: ключевой датчик топливно-энергетического статуса скелетных мышц. Физиология (Bethesda) 2006; 21: 48–60. [PubMed] [Google Scholar] 45. Сува М., Накано Х., Кумагаи С. Влияние хронического лечения AICAR на состав волокон, активность ферментов, UCP3 и PGC-1 в мышцах крыс. J Appl Physiol (1985) 2003; 95: 960–68. [PubMed] [Google Scholar] 46. Winder WW, Holmes BF, Rubink DS, Jensen EB, Chen M, Holloszy JO. Активация АМФ-активированной протеинкиназы увеличивает количество митохондриальных ферментов в скелетных мышцах. J. Appl Physiol (1985) 2000; 88: 2219–26.[PubMed] [Google Scholar] 47. Керн М., Уэллс Дж. А., Стивенс Дж. М., Элтон К. В., Фридман Дж. Э., Тапскотт Э. Б., Пекала PH, Дом Г.Л. Чувствительность к инсулину в скелетных мышцах определяется уровнем белка-переносчика глюкозы (Glut4). Биохим Дж. 1990; 270: 397–400. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 48. Borghouts LB, Schaart G, Hesselink MK, Keizer HA. Экспрессия GLUT-4 не всегда выше в волокнах типа 1, чем в волокнах типа 2 крысы и латеральной широкой мышцы бедра человека; иммуногистохимическое исследование. Pflugers Arch.2000; 441: 351–58. [PubMed] [Google Scholar] 49. van Dam KG, van Breda E, Schaart G, van Ginneken MM, Wijnberg ID, de Graaf-Roelfsema E, van der Kolk JH, Keizer HA. Исследование экспрессии и локализации транспортера глюкозы 4 и транслоказы жирных кислот / CD36 в скелетных мышцах лошади. Am J Vet Res. 2004. 65: 951–56. [PubMed] [Google Scholar] 50. Даугард Дж. Р., Нильсен Дж., Кристиансен С., Андерсен Дж. Л., Харгривз М., Рихтер Е. А.. Специфическая для типа волокна экспрессия GLUT4 в скелетных мышцах человека: влияние тренировок.Диабет. 2000; 49: 1092–95. [PubMed] [Google Scholar] 51. Хуппертц К., Фишер Б.М., Ким И.Б., Котани К., Видал-Пуч А., Сликер Л.Дж., Шлоуп К.В., Лоуэлл Б.Б., Кан BB. Несвязанный белок 3 (UCP3) стимулирует поглощение глюкозы мышечными клетками посредством механизма, зависимого от фосфоинозитид-3-киназы. J Biol Chem. 2001; 276: 12520–29. [PubMed] [Google Scholar] 52. Цубояма-Касаока Н., Цунода Н., Маруяма К., Такахаши М., Ким Х., Икемото С., Эзаки О. Повышающая регуляция мРНК разобщающего белка 3 (UCP3) с помощью физических упражнений и понижающая регуляция UCP3 путем денервации в скелетных мышцах.Biochem Biophys Res Commun. 1998. 247: 498–503. [PubMed] [Google Scholar] 53. Winder WW, Hardie DG. АМФ-активированная протеинкиназа, главный переключатель метаболизма: возможные роли при диабете 2 типа. Am J Physiol. 1999; 277: E1–10. [PubMed] [Google Scholar] 54. Hesselink MK, Keizer HA, Borghouts LB, Schaart G, Kornips CF, Slieker LJ, Sloop KW, Saris WH, Schrauwen P. Экспрессия белка UCP3 различается между человеческими волокнами типа 1, типа 2a и типа 2b. FASEB J. 2001; 15: 1071–73. [PubMed] [Google Scholar] 55. Клэпхэм Дж. К., Арч Дж. Р., Чепмен Х, Хейнс А., Листер С., Мур Г. Б., Пирси В., Картер С. А., Ленер И., Смит С. А., Били Л. Дж., Годден Р. Дж., Херрити Н. и др.Мыши, сверхэкспрессирующие человеческий разобщающий белок-3 в скелетных мышцах, гиперфагичны и худощавы. Природа. 2000; 406: 415–18. [PubMed] [Google Scholar] 56. Шраувен П., Хесселинк М. UCP2 и UCP3 в мышцах, контролирующих метаболизм тела. J Exp Biol. 2002; 205: 2275–85. [PubMed] [Google Scholar] 57. NRC. Потребности свиней в питательных веществах (одиннадцатое пересмотренное издание) Вашингтон, округ Колумбия: National Academic Press; 2012. [Google Scholar] 58. Дуань И, Дуань И, Ли Ф, Ли И, Гуо Q, Джи И, Тан Б., Ли Т, Инь Ю. Влияние добавления аминокислот с разветвленной цепью к низкобелковым диетам на экспрессию генов, связанных с метаболизмом липидов в организме человека. скелетная мышца растущих свиней.Аминокислоты. 2016; 48: 2131–44. [PubMed] [Google Scholar] 59. Li F, Duan Y, Li Y, Tang Y, Geng M, Oladele OA, Kim SW, Yin Y. Влияние диетического соотношения n-6: n-3 ПНЖК на состав жирных кислот, профиль свободных аминокислот и экспрессию генов транспортеров в откорме свиней. Br J Nutr. 2015; 113: 739–48. [PubMed] [Google Scholar] 60. Li F, Li Y, Tan B, Wang J, Duan Y, Guo Q, Liu Y, Kong X, Li T, Tang Y, Yin Y. Изменение воспалительных цитокинов, регуляторов энергетического метаболизма и типа мышечных волокон в скелетных мышцах поросят после отъема.J Anim Sci. 2016; 94: 1064–72. [PubMed] [Google Scholar] 61. Дуань И, Ли Ф, Ли Л, Фан Дж, Сан Х, Инь Ю. Соотношение n-6: n-3 ПНЖК участвует в регулировании липидного обмена и воспаления у свиней. Br J Nutr. 2014; 111: 445–51. [PubMed] [Google Scholar]

Кальций-связывающий белок парвальбумин связан с быстро сокращающимися мышечными волокнами

  • 1

    Weber, A., Herz, R. & Reiss, I. Proc. R. Soc. B 160 , 489–499 (1964).

    объявлений CAS Google ученый

  • 2

    Эбаши, С. A. Rev. Physiol. 38 , 293–313 (1976).

    CAS Статья Google ученый

  • 3

    Gerday, C. & Gillis, J.-M. J. Physiol., Lond. 258 , 96П – 97П (1976).

    CAS PubMed Google ученый

  • 4

    Gillis, J.-M. & Gerday, C. в Calcium Binding Proteins and Calcium Function (eds Wasserman, R.H. et al. ) 193–196 (Elsevier, Амстердам, 1977).

    Google ученый

  • 5

    Fischer, E.H. et al. в Молекулярные основы подвижности (ред. Хейлмейер, Л. М. Дж. Младший, Рюгг, Дж. К. и Виланд, Т.) 137–153 (Springer, Берлин, 1976).

    Книга Google ученый

  • 6

    Pechère, J. f., Derancourt, J. & Haiech, J. FEBS Lett. 75 , 111–114 (1977).

    Артикул Google ученый

  • 7

    Blum, H.E., Lehky, P., Kohler, L., Stein, E.A. & Fischer, E.H. J. biol Chem. 252 , 2834–2838 (1977).

    CAS PubMed Google ученый

  • 8

    Gillis, J.-M. в Calcium Binding Proteins, Structure and Function (eds Siegel, F. L., Carafoli, E., Kretsinger, R.H., MacLennan, D.M. & Wasserman, R.H.) 309–311 (Elsevier, Amsterdam, 1980).

    Google ученый

  • 9

    Close, R. I. Physiol. Ред. 52 , 129–197 (1972).

    CAS Статья Google ученый

  • 10

    Luff, A.R. J. Physiol., Lond. 313 , 161–171 (1981).

    CAS Статья Google ученый

  • 11

    Селио, М.Р. и Хейцманн, К. В. Nature 293 , 300–302 (1981).

    объявлений CAS Статья Google ученый

  • 12

    Ван Эдлик, Л. Дж. И Уоттерсон, Д. М. J. biol. Chem. 256 , 4205–4210 (1981).

    Google ученый

  • 13

    Sternberger, L.A. в Immunocytochemistry , 104–169 (Wiley, New York, 1979).

    Google ученый

  • 14

    Гут, Л.& Samaha, F. T. Expl Neurol. 28 , 365–367 (1970).

    CAS Статья Google ученый

  • 15

    Брук, М. Х. и Кайзер, К. К. 9 1986 Archs Neurol. 23 , 369–379 (1970).

    CAS Статья Google ученый

  • 16

    Tunnel, G. L. & Hart, M. N. 9 1986 Archs Neurol. 34 , 171–173 (1977).

    Артикул Google ученый

  • 17

    Edjtehadi, G. & Lewis, D. M. J. Physiol., Lond. 287 , 439–453 (1979).

    CAS Статья Google ученый

  • 18

    Spurway, N.C. J. Histochem. 29 , 87–88 (1981).

    CAS Google ученый

  • 19

    Питер Дж.Б., Барнард, Р. Дж., Эдгертон, В. Р., Гиллеспи, К. А. и Стемпел, К. Е. Биохимия 11 , 2627–2633 (1972).

    CAS Статья Google ученый

  • 20

    Gauthier, G. F. Z. Zellforsch. 95 , 462–482 (1969).

    CAS Статья Google ученый

  • 21

    Драхман, Д. Б. и Джонстон, Д. М. Дж.Physiol., Lond. 234 , 29–42 (1973).

    CAS Статья Google ученый

  • 22

    Close, R. J. Physiol., Lond. 173 , 74–95 (1964).

    CAS Статья Google ученый

  • 23

    Boyd, I.A. Prog. Brain Res. 44 , 33–49 (1976).

    CAS Статья Google ученый

  • 24

    Карафоли, Э.в Calcium in Cell Regulation (ed. Smellie, R. S.) 101–103 (Общество биохимиков, Лондон, 1974).

    Google ученый

  • 25

    Berchtold, M. W., Wilson, K. J. & Heizmann, C. W. (в процессе подготовки).

  • 26

    Spamer, C. & Pette, D. Histochemistry 60 , 9–19 (1979).

    CAS Статья Google ученый

  • 27

    Немет, П.М., Хофер, Х. В. и Петте, Д. Гистохимия 63 , 191–201 (1979).

    CAS Статья Google ученый

  • 28

    Kugelberg, E. J. Neurol. Sci. 27 , 269–289 (1976).

    CAS Статья Google ученый

  • 29

    Jansson, E., Sjödin, B. & Tesch, P. Acta Physiol. сканд. 104 , 235–237 (1978).

    CAS Статья Google ученый

  • 30

    Billeter, R., Heizmann, C. W., Howald, H. & Jenny, E. Eur. J. Biochem. 116 , 389–395 (1981).

    CAS Статья Google ученый

  • 31

    Billeter, R. et al. Гистохимия 65 , 249–259 (1980).

    CAS Статья Google ученый

  • 32

    Барань, М. J. gen. Physiol. 50 , 197–216 (1967).

    Артикул Google ученый

  • 33

    Гарнетт Р.А.Ф., О’Донован М.Дж., Стивенс Дж. А. и Тейлор А.Дж. J. Physiol., Lond. 287 , 33–43 (1978).

    Артикул Google ученый

  • 34

    Homsher, E. & Irving, M. Adv. физиол. Sci. 5 , 141–150 (1980).

    Google ученый

  • 35

    Pechère, J. F., Capony, J. P. & Demaille, J. Syst. Zool. 22 , 533–548 (1973).

    Артикул Google ученый

  • 36

    Hamoir, G. Symp. Биол. Висела. 17 , 17–33 (1974).

    Google ученый

  • 37

    Gosselin-Rey, C.в Calcium Binding Proteins (eds Drabikowski, W., Strzelecka-Golas-zewska, H. & Carafoli, E.) 643–677 (Elsevier, Amsterdam, 1974).

    Google ученый

  • 38

    Gerday, C., Joris, B., Gerardin-Otthiers, N., Collin, S. & Hamoir, G. Biochimie 61 , 589–599 (1979).

    CAS Статья Google ученый

  • 39

    Хамуар, Г.И Gerardin-Otthiers, N. Comp. Biochem. Physiol. 65 B , 199–206 (1980).

    Google ученый

  • 40

    Takahashi, S. Comp. Biochem. Physiol. 62 A , 539–544 (1979).

    Артикул Google ученый

  • 41

    Schmalbruch, H. Z. Zellforsch. 119 , 120–146 (1971).

    CAS Статья Google ученый

  • 42

    Bach-Y-Rita, P. & Ito, F. J. gen Physiol. 49 , 1177–1198 (1966).

    CAS Статья Google ученый

  • 43

    Вита, Г. Ф., Масталья, Ф. Л. и Джонсон, М. А. Невропат, приложение. Neurobiol. 6 , 449–463 (1980).

    CAS Статья Google ученый

  • Влияние тренировки на выносливость на уровни белков комплекса LINC в волокнах скелетных мышц крыс с STZ-индуцированным диабетом

  • 1.

    Брохон, С. Г., Партридж, Дж. Р., Уиттл, Дж. Р. и Шварц, Т. У. Комплекс ядерных пор вступил в атомную эру. Структура 17 , 1156–1168 (2009).

    CAS Статья Google ученый

  • 2.

    Крисп, М. и др. . Сцепление ядра и цитоплазмы: роль комплекса LINC. J Cell Biol 172 , 41–53 (2006).

    CAS Статья Google ученый

  • 3.

    Старр, Д. А. и Фридольфссон, Х. Н. Взаимодействия между ядрами и цитоскелетом опосредуются мостиками ядерной оболочки SUN-KASH. Ежегодный обзор клеточной биологии и биологии развития 26 , 421–444 (2010).

    CAS Статья Google ученый

  • 4.

    Sosa, B.A., Rothballer, A., Kutay, U. & Schwartz, T.U. Комплексы LINC образуются путем связывания трех пептидов KASH с интерфейсами доменов тримерных белков SUN. Cell 149 , 1035–1047 (2012).

    CAS Статья Google ученый

  • 5.

    Хак, Ф. и др. . SUN1 взаимодействует с ядерным ламином А и цитоплазматическими неспринами, обеспечивая физическую связь между ядерной пластинкой и цитоскелетом. Молекулярная и клеточная биология 26 , 3738–3751 (2006).

    CAS Статья Google ученый

  • 6.

    Chen, C.-Y. и др. . Накопление белка внутренней ядерной оболочки Sun1 является патогенным при прогерической и дистрофической ламинопатиях. Cell 149 , 565–577 (2012).

    CAS Статья Google ученый

  • 7.

    Хонма, Т. Сравнительное исследование флуорометрического и электрохимического определения катехоламина, серотонина и метаболитов в головном мозге крыс с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии. Аналитические письма 19 , 417–431 (1986).

    объявлений CAS Статья Google ученый

  • 8.

    Mellad, J. A., Warren, D. T. & Shanahan, C. M. Nesprins LINC ядро ​​и цитоскелет. Текущее мнение в области клеточной биологии 23 , 47–54 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 9.

    Rajgor, D., Mellad, J. A., Autore, F., Zhang, Q. & Shanahan, C.M. Множественные новые варианты несприн-1 и несприн-2 действуют как универсальные тканеспецифические внутриклеточные каркасы. PloS one 7 , e40098 (2012).

    объявлений CAS Статья Google ученый

  • 10.

    Zhang, J. et al. . Nesprin 1 имеет решающее значение для ядерного позиционирования и закрепления. Молекулярная генетика человека 19 , 329–341 (2009).

    Артикул Google ученый

  • 11.

    Cao, H. & Hegele, R.A. Мутация R482Q ядерного ламина A / C у канадских родственников с семейной частичной липодистрофией типа Даннигана. Молекулярная генетика человека 9 , 109–112 (2000).

    CAS Статья Google ученый

  • 12.

    Гундерсен Г. и Ворман Х. Дж. Ядерное позиционирование. Cell 152 , 1376–1389 (2013).

    CAS Статья Google ученый

  • 13.

    Страуд, М. Дж., Банерджи, И., Виверс, Дж. И Чен, Дж. Линкер белков нуклеоскелета и комплекса цитоскелета в структуре, функции и заболевании сердца. Исследование обращения 114 , 538–548 (2014).

    CAS Статья Google ученый

  • 14.

    Wilson, M.H. и Holzbaur, E.L. Nesprins закрепляют двигатели кинезина-1 в ядре, чтобы управлять распределением ядер в мышечных клетках. Развитие 142 , 218–228 (2015).

    Артикул Google ученый

  • 15.

    Romero, N.Б. Центроядерные миопатии: расширяющаяся концепция. Нервно-мышечные расстройства 20 , 223–228 (2010).

    Артикул Google ученый

  • 16.

    Маттиоли, Э. и др. . Преламин A-опосредованное рекрутирование SUN1 в ядерную оболочку направляет ядерное позиционирование в мышцах человека. Гибель и дифференцировка клеток 18 , 1305 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 17.

    Мецгер, Т. и др. . MAP и кинезин-зависимое ядерное позиционирование необходимо для функции скелетных мышц. Природа 484 , 120–124 (2012).

    объявлений CAS Статья Google ученый

  • 18.

    Коулман, С.К., Ребалка, И.А., Д’Суза, Д.М. и Хоук, Т.Дж. Скелетные мышцы как терапевтическая мишень для отсрочки диабетических осложнений 1-го типа. Всемирный журнал диабета 6 , 1323 (2015).

    Артикул Google ученый

  • 19.

    D’Souza, D. M., Al-Sajee, D. & Hawke, T. J. Диабетическая миопатия: влияние сахарного диабета на клетки-предшественники скелетных мышц. Границы физиологии 4 , 379 (2013).

    PubMed PubMed Central Google ученый

  • 20.

    Høydal, M. A., Wisløff, U., Kemi, O. J. & Ellingsen, Ø. Скорость бега и максимальное потребление кислорода у крыс и мышей: практическое значение для тренировок. Европейский журнал профилактики сердечно-сосудистых заболеваний и реабилитации 14 , 753–760 (2007).

    Артикул Google ученый

  • 21.

    Рахмати М. и др. . Тренировка на беговой дорожке изменяет белок-движитель KIF5B в спинном мозге и седалищном нерве у диабетических крыс, вызванных STZ. Архив иранской медицины (AIM) 18 (2015).

  • 22.

    Рахмати, М. и Каземи, А.Различная интенсивность упражнений по-разному регулирует экспрессию GAP-43 и CAP-1 в гиппокампе крыс. Ген 692 , 185–194 (2019).

    CAS Статья Google ученый

  • 23.

    Desgeorges, T. et al. . Open-CSAM, новый инструмент для полуавтоматического анализа площади поперечного сечения миофибрилл при регенерации скелетных мышц взрослых. Скелетная мышца 9 , 2 (2019).

    Артикул Google ученый

  • 24.

    Ноегель А. и Нойманн С. (Портленд Пресс Лимитед, 2011).

  • 25.

    Апель, Э. Д., Льюис, Р. М., Грэди, Р. М. и Санес, Дж. Р. Syne-1, белок, связанный с дистрофином и Кларсихтом, связанный с синаптическими ядрами в нервно-мышечном соединении. Журнал биологической химии 275 , 31986–31995 (2000).

    CAS Статья Google ученый

  • 26.

    Мислоу, Дж. М., Ким, М. С., Davis, D. B. & McNally, E. M. Myne-1, трансмембранный белок с повторением спектрина внутренней ядерной мембраны миоцита, взаимодействует с ламином A / C. Journal of Cell Science 115 , 61–70 (2002).

    CAS PubMed Google ученый

  • 27.

    Zhang, Q. и др. . Nesprin-2 — это мульти-изомерный белок, который связывает ламин и эмерин в ядерной оболочке и образует субклеточную сеть в скелетных мышцах. Журнал клеточной науки 118 , 673–687 (2005).

    объявлений CAS Статья Google ученый

  • 28.

    Старр, Д. А. и Хан, М. Роль ANC-1 в привязке ядер к актиновому цитоскелету. Наука 298 , 406–409 (2002).

    CAS Статья Google ученый

  • 29.

    Старр, Д. А. и Хан, М. А. Ушли прочь: актиновый механизм позиционирования ядра. Журнал клеточной науки 116 , 211–216 (2003).

    CAS Статья Google ученый

  • 30.

    Кайсар Р. Миоядерная организация и регуляция мышечного сокращения в отдельных мышечных волокнах: влияние старения, пола, видов, эндокринных факторов и размера мышц , Acta Universitatis Upsaliensis, (2012).

  • 31.

    Charifi, N., Kadi, F., Féasson, L. & Denis, C. Влияние тренировки на выносливость на частоту сателлитных клеток в скелетных мышцах пожилых мужчин. Мышцы и нервы: официальный журнал Американской ассоциации электродиагностической медицины 28 , 87–92 (2003).

    Артикул Google ученый

  • 32.

    Fujimaki, S., Wakabayashi, T., Asashima, M., Takemasa, T. & Kuwabara, T. Бег на беговой дорожке вызывает активацию сателлитных клеток у мышей с диабетом. Отчеты по биохимии и биофизике 8 , 6–13 (2016).

    Артикул Google ученый

  • 33.

    Snijders, T. и др. . Изменения размера миоядерных доменов не предшествуют гипертрофии мышц во время длительных тренировок с отягощениями. Acta Physiologica 216 , 231–239 (2016).

    CAS Статья Google ученый

  • 34.

    Кадо, Б., Гаш, В. и Гомес, Э. Р. Перемещение и позиционирование ядра в скелетных мышцах — шаг за шагом. Ядро 6 , 373–381 (2015).

    Артикул Google ученый

  • 35.

    Starr, D. A. & Fischer, J. A. KASH’n Karry: Семейство KASH-доменов карго-специфичных адаптерных белков цитоскелета. Bioessays 27 , 1136–1146 (2005).

    CAS Статья Google ученый

  • 36.

    Wilhelmsen, K., Ketema, M., Truong, H. & Sonnenberg, A. Белки KASH-домена в ядерной миграции, закреплении и других процессах. Journal of Cell Science 119 , 5021–5029 (2006).

    CAS Статья Google ученый

  • 37.

    Ридделл М. и Перкинс Б. А. Физические упражнения и метаболизм глюкозы у лиц с сахарным диабетом: перспективы роли непрерывного мониторинга уровня глюкозы. Журнал науки и техники о диабете 3 , 914–923 (2009).

    Артикул Google ученый

  • Скелетные мышцы — анатомия и физиология

    Цели обучения

    К концу этого раздела вы сможете:

    • Описать слои соединительной ткани, упаковывающие скелетную мышцу
    • Объясните, как мышцы работают вместе с сухожилиями для движения тела
    • Определите области волокон скелетных мышц
    • Описание муфты возбуждения-сжатия

    Наиболее известной особенностью скелетных мышц является их способность сокращаться и вызывать движение.Скелетные мышцы действуют не только для движения, но и для остановки движения, например, противодействуя силе тяжести, чтобы поддерживать осанку. Небольшие, постоянные корректировки скелетных мышц необходимы, чтобы удерживать тело в вертикальном или сбалансированном положении в любом положении. Мышцы также предотвращают чрезмерное движение костей и суставов, поддерживая стабильность скелета и предотвращая повреждение или деформацию скелетных структур. Суставы могут полностью смещаться или смещаться из-за натяжения связанных костей; мышцы работают, чтобы суставы оставались стабильными.Скелетные мышцы расположены по всему телу в отверстиях внутренних путей, чтобы контролировать движение различных веществ. Эти мышцы позволяют произвольно контролировать такие функции, как глотание, мочеиспускание и дефекация. Скелетные мышцы также защищают внутренние органы (особенно органы брюшной полости и таза), действуя как внешний барьер или щит от внешних травм и поддерживая вес органов.

    Скелетные мышцы способствуют поддержанию гомеостаза в организме, выделяя тепло.Для сокращения мышц требуется энергия, а при расщеплении АТФ выделяется тепло. Это тепло очень заметно во время упражнений, когда продолжительное движение мышц вызывает повышение температуры тела, а в случаях сильного холода, когда дрожь вызывает случайные сокращения скелетных мышц для выделения тепла.

    Каждая скелетная мышца — это орган, состоящий из различных интегрированных тканей. Эти ткани включают волокна скелетных мышц, кровеносные сосуды, нервные волокна и соединительную ткань. Каждая скелетная мышца имеет три слоя соединительной ткани (называемой «мизией»), которые окружают ее и обеспечивают структуру мышцы в целом, а также разделяют мышечные волокна внутри мышцы ((рисунок)).Каждая мышца обернута оболочкой из плотной соединительной ткани неправильной формы, называемой эпимизием, которая позволяет мышце сокращаться и мощно двигаться, сохраняя при этом свою структурную целостность. Эпимизий также отделяет мышцу от других тканей и органов в этой области, позволяя мышце двигаться независимо.

    Три слоя соединительной ткани

    Пучки мышечных волокон, называемые пучками, покрыты перимизием. Мышечные волокна покрыты эндомизием.

    Внутри каждой скелетной мышцы мышечные волокна организованы в отдельные пучки, каждый из которых называется пучком, с помощью среднего слоя соединительной ткани, называемого перимизием.Эта фасцикулярная организация часто встречается в мышцах конечностей; он позволяет нервной системе запускать определенное движение мышцы, активируя подмножество мышечных волокон в пучке или пучке мышцы. Внутри каждого пучка каждое мышечное волокно заключено в тонкий слой соединительной ткани из коллагена и ретикулярных волокон, называемый эндомизием. Эндомизий содержит внеклеточную жидкость и питательные вещества, поддерживающие мышечные волокна. Эти питательные вещества поступают в мышечную ткань через кровь.

    В скелетных мышцах, которые работают с сухожилиями, натягивая кости, коллаген в трех тканевых слоях (мизия) переплетается с коллагеном сухожилия. На другом конце сухожилия оно срастается с надкостницей, покрывающей кость. Напряжение, создаваемое сокращением мышечных волокон, затем передается через мезию к сухожилию, а затем к надкостнице, чтобы тянуть кость для движения скелета. В других местах мезия может сливаться с широким, похожим на сухожилие листом, называемым апоневрозом, или с фасцией, соединительной тканью между кожей и костями.Широкий слой соединительной ткани в нижней части спины, в который сливаются широчайшие мышцы спины («широчайшие»), является примером апоневроза.

    Каждая скелетная мышца также богато снабжена кровеносными сосудами для питания, доставки кислорода и удаления шлаков. Кроме того, каждое мышечное волокно в скелетной мышце снабжается аксонной ветвью соматического двигательного нейрона, которая сигнализирует волокну о сокращении. В отличие от сердечных и гладких мышц, единственный способ функционального сокращения скелетных мышц — это передача сигналов от нервной системы.

    Волокна скелетных мышц

    Поскольку клетки скелетных мышц длинные и цилиндрические, их обычно называют мышечными волокнами. Волокна скелетных мышц могут быть довольно большими для клеток человека: диаметром до 100 мкм м и длиной до 30 см (11,8 дюйма) в портняжной мышце верхней части ноги. На раннем этапе развития эмбриональные миобласты, каждый из которых имеет собственное ядро, сливаются с сотнями других миобластов, образуя многоядерные волокна скелетных мышц. Множественные ядра означают множественные копии генов, позволяющие производить большое количество белков и ферментов, необходимых для сокращения мышц.

    Некоторые другие термины, связанные с мышечными волокнами, восходят к греческому sarco , что означает «плоть». Плазматическая мембрана мышечных волокон называется сарколеммой, цитоплазма называется саркоплазмой, а специальный гладкий эндоплазматический ретикулум, который хранит, высвобождает и извлекает ионы кальция (Ca ++ ), называется саркоплазматическим ретикулумом (SR). ((Фигура)). Как будет описано ниже, функциональной единицей волокна скелетных мышц является саркомер, высокоорганизованная структура сократительных миофиламентов актина (тонкая нить) и миозина (толстая нить), а также других поддерживающих белков.

    Мышечное волокно

    Волокно скелетных мышц окружено плазматической мембраной, называемой сарколеммой, которая содержит саркоплазму, цитоплазму мышечных клеток. Мышечное волокно состоит из множества фибрилл, которые придают клетке полосатый вид.

    Саркомер

    Поперечно-полосатый вид волокон скелетных мышц обусловлен расположением миофиламентов актина и миозина в последовательном порядке от одного конца мышечного волокна до другого.Каждый пакет этих микрофиламентов и их регуляторных белков, тропонина и тропомиозина (наряду с другими белками) называется саркомером.

    Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о макро- и микроструктуре скелетных мышц. а) Как называются «точки соединения» между саркомерами? (б) Как называются «субъединицы» в миофибриллах, которые проходят по длине волокон скелетных мышц? в) Что такое «двойная нить жемчуга», описанная в видео? (d) Что придает скелетным мышечным волокнам поперечно-полосатый вид?

    Саркомер — функциональная единица мышечного волокна.Сам саркомер связан с миофибриллами, которые проходят по всей длине мышечного волокна и прикрепляются к сарколемме на своем конце. По мере сокращения миофибрилл сокращается вся мышечная клетка. Поскольку миофибриллы имеют диаметр примерно 1,2 мкм м, внутри одного мышечного волокна можно найти от сотен до тысяч (каждая с тысячами саркомеров). Каждый саркомер имеет длину примерно 2 мкм м и имеет трехмерное цилиндрическое расположение и ограничен структурами, называемыми Z-дисками (также называемыми Z-линиями, потому что изображения двумерные), к которым прикреплены миофиламенты актина. на якоре ((рисунок)).Поскольку актин и его комплекс тропонин-тропомиозин (выступающий от Z-дисков к центру саркомера) образуют нити, которые тоньше миозина, его называют тонкой нитью саркомера. Точно так же, поскольку нити миозина и их многочисленные головки (выступающие от центра саркомера к Z-дискам, но не полностью к ним) имеют большую массу и толще, их называют толстой нитью саркомера.

    Саркомер

    Саркомер, область от одной Z-линии до следующей Z-линии, является функциональной единицей волокна скелетных мышц.

    Нервно-мышечное соединение

    Еще одна специализация скелетных мышц — это место, где терминал двигательного нейрона встречается с мышечным волокном, называемое нервно-мышечным соединением (НМС). Здесь мышечное волокно в первую очередь реагирует на сигналы двигательного нейрона. Каждое волокно скелетных мышц в каждой скелетной мышце иннервируется двигательным нейроном в СНС. Сигналы возбуждения от нейрона — единственный способ функционально активировать сокращение волокна.

    Каждое волокно скелетных мышц снабжается двигательным нейроном в СНС. Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о том, что происходит в СМП. а) Что означает моторная единица? б) Каковы структурные и функциональные различия между большой моторной единицей и малой моторной единицей? (c) Вы можете привести пример каждого из них? (d) Почему нейромедиатор ацетилхолин разлагается после связывания с его рецептором?

    Муфта возбуждения-сжатия

    Все живые клетки имеют мембранные потенциалы или электрические градиенты на мембранах.Внутренняя часть мембраны обычно составляет от -60 до -90 мВ относительно внешней стороны. Это называется мембранным потенциалом клетки. Нейроны и мышечные клетки могут использовать свои мембранные потенциалы для генерации электрических сигналов. Они делают это, контролируя движение заряженных частиц, называемых ионами, через свои мембраны для создания электрических токов. Это достигается за счет открытия и закрытия специализированных белков в мембране, называемых ионными каналами. Хотя токи, генерируемые ионами, движущимися через эти канальные белки, очень малы, они составляют основу как нейронной передачи сигналов, так и сокращения мышц.

    И нейроны, и клетки скелетных мышц электрически возбудимы, что означает, что они способны генерировать потенциалы действия. Потенциал действия — это особый тип электрического сигнала, который может перемещаться по клеточной мембране в виде волны. Это позволяет быстро и точно передавать сигнал на большие расстояния.

    Хотя термин «связь возбуждения-сокращения» сбивает с толку или пугает некоторых студентов, он сводится к следующему: для сокращения волокна скелетной мышцы его мембрана должна сначала быть «возбуждена» — другими словами, ее нужно стимулировать, чтобы запустить потенциал действия. .Потенциал действия мышечных волокон, который движется по сарколемме в виде волны, «связан» с фактическим сокращением через высвобождение ионов кальция (Ca ++ ) из SR. После высвобождения Ca ++ взаимодействует с защитными белками, заставляя их отодвигаться в сторону, так что сайты связывания актина становятся доступными для прикрепления миозиновыми головками. Затем миозин тянет актиновые нити к центру, укорачивая мышечные волокна.

    В скелетных мышцах эта последовательность начинается с сигналов соматического моторного отдела нервной системы.Другими словами, этап «возбуждения» в скелетных мышцах всегда запускается сигналом нервной системы ((рисунок)).

    Концевая пластина двигателя и иннервация

    В NMJ терминал аксона высвобождает ACh. Моторная пластинка — это место расположения ACh-рецепторов в сарколемме мышечного волокна. Когда молекулы ACh высвобождаются, они диффундируют через небольшое пространство, называемое синаптической щелью, и связываются с рецепторами.

    Моторные нейроны, которые заставляют скелетные мышечные волокна сокращаться, берут начало в спинном мозге, меньшее их количество находится в стволе мозга для активации скелетных мышц лица, головы и шеи.Эти нейроны имеют длинные отростки, называемые аксонами, которые специализируются на передаче потенциалов действия на большие расстояния — в данном случае от спинного мозга до самой мышцы (которая может находиться на расстоянии до трех футов). Аксоны нескольких нейронов связываются вместе, образуя нервы, как провода, связанные вместе в кабель.

    Передача сигналов начинается, когда потенциал действия нейрона проходит по аксону двигательного нейрона, а затем по отдельным ветвям и заканчивается в НМС. В NMJ окончание аксона выпускает химический мессенджер или нейромедиатор, называемый ацетилхолином (ACh).Молекулы ACh диффундируют через крошечное пространство, называемое синаптической щелью, и связываются с рецепторами ACh, расположенными внутри моторной концевой пластинки сарколеммы на другой стороне синапса. После связывания ACh канал в рецепторе ACh открывается, и положительно заряженные ионы могут проходить в мышечное волокно, вызывая его деполяризацию, что означает, что мембранный потенциал мышечного волокна становится менее отрицательным (ближе к нулю).

    По мере того, как мембрана деполяризуется, открывается другой набор ионных каналов, называемых потенциалозависимыми натриевыми каналами.Ионы натрия попадают в мышечные волокна, и потенциал действия быстро распространяется (или «вспыхивает») по всей мембране, инициируя взаимодействие возбуждения и сокращения.

    В мире возбудимых мембран все происходит очень быстро (только подумайте, как быстро вы сможете щелкнуть пальцами, как только решите это сделать). Сразу после деполяризации мембраны она реполяризуется, восстанавливая отрицательный мембранный потенциал. Между тем, ACh в синаптической щели расщепляется ферментом ацетилхолинэстеразой (AChE), так что ACh не может повторно связываться с рецептором и повторно открывать свой канал, что может вызвать нежелательное расширенное возбуждение и сокращение мышц.

    Распространение потенциала действия по сарколемме является возбуждающей частью связи возбуждение-сокращение. Напомним, что это возбуждение фактически вызывает высвобождение ионов кальция (Ca ++ ) из их хранилища в SR клетки. Чтобы потенциал действия достиг мембраны SR, в сарколемме есть периодические инвагинации, называемые Т-канальцами («Т» означает «поперечный»). Вы помните, что диаметр мышечного волокна может достигать 100 мкм м, поэтому эти Т-канальцы гарантируют, что мембрана может приблизиться к SR в саркоплазме.Расположение Т-канальца с мембранами SR по обе стороны называется триадой ((Рисунок)). Триада окружает цилиндрическую структуру, называемую миофибриллой, которая содержит актин и миозин.

    Т-трубочка

    Узкие Т-канальцы позволяют проводить электрические импульсы. Функции SR регулируют внутриклеточные уровни кальция. Две терминальные цистерны (где увеличенный SR соединяется с Т-канальцем) и один Т-канальец составляют триаду — «тройку» мембран, с мембранами SR с двух сторон и Т-канальцем, зажатым между ними.

    Т-канальцы переносят потенциал действия внутрь клетки, что запускает открытие кальциевых каналов в мембране соседнего SR, заставляя Ca ++ диффундировать из SR в саркоплазму. Именно поступление Ca ++ в саркоплазму инициирует сокращение мышечного волокна его сократительными единицами, или саркомерами.

    Обзор главы

    Скелетные мышцы содержат соединительную ткань, кровеносные сосуды и нервы.Существует три слоя соединительной ткани: эпимизий, перимизий и эндомизий. Волокна скелетных мышц организованы в группы, называемые пучками. Кровеносные сосуды и нервы входят в соединительную ткань и разветвляются в клетке. Мышцы прикрепляются к костям напрямую или через сухожилия или апоневрозы. Скелетные мышцы поддерживают осанку, стабилизируют кости и суставы, контролируют внутренние движения и выделяют тепло.

    Волокна скелетных мышц представляют собой длинные многоядерные клетки. Мембрана клетки — это сарколемма; цитоплазма клетки — саркоплазма.Саркоплазматический ретикулум (SR) — это форма эндоплазматического ретикулума. Мышечные волокна состоят из миофибрилл. Строчки создаются организацией актина и миозина, в результате чего образуются полосы миофибрилл.

    Вопросы по интерактивной ссылке

    Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о макро- и микроструктуре скелетных мышц. а) Как называются «точки соединения» между саркомерами? (б) Как называются «субъединицы» в миофибриллах, которые проходят по длине волокон скелетных мышц? в) Что такое «двойная нить жемчуга», описанная в видео? (d) Что придает скелетным мышечным волокнам поперечно-полосатый вид?

    (а) Z-линии.(б) Саркомеры. (c) Это расположение актиновых и миозиновых нитей в саркомере. (d) Чередующиеся нити актиновых и миозиновых филаментов.

    Каждое волокно скелетных мышц снабжается двигательным нейроном в СНС. Посмотрите это видео, чтобы узнать больше о том, что происходит в нервно-мышечном соединении. а) Что означает моторная единица? б) Каковы структурные и функциональные различия между большой моторной единицей и малой моторной единицей? Вы можете привести пример каждого из них? (c) Почему нейромедиатор ацетилхолин разлагается после связывания с его рецептором?

    (a) Это количество волокон скелетных мышц, снабжаемых одним двигательным нейроном.(б) У большой двигательной единицы есть один нейрон, снабжающий множество волокон скелетных мышц для грубых движений, как, например, мышца височной мышцы, где 1000 волокон обеспечивается одним нейроном. У маленького мотора есть один нейрон, снабжающий несколько волокон скелетных мышц для очень тонких движений, например, экстраокулярные мышцы глаза, где шесть волокон снабжены одним нейроном. (c) Чтобы избежать продления мышечного сокращения.

    Обзорные вопросы

    Правильный порядок от наименьшей к наибольшей единице организации в мышечной ткани — ________.

    1. пучок, нить, мышечное волокно, миофибрилла
    2. нить, миофибрилла, мышечное волокно, пучок
    3. мышечное волокно, пучок, нить, миофибрилла
    4. миофибриллы, мышечные волокна, филаменты, пучки

    Деполяризация сарколеммы означает ________.

    1. внутренняя часть мембраны стала менее отрицательной по мере накопления ионов натрия
    2. внешняя часть мембраны стала менее отрицательной по мере накопления ионов натрия
    3. внутренняя часть мембраны стала более отрицательной по мере накопления ионов натрия
    4. сарколемма полностью потеряла электрический заряд

    Вопросы о критическом мышлении

    Что случилось бы со скелетными мышцами, если бы эпимизий был разрушен?

    Мышцы теряют свою целостность при сильных движениях, что приводит к их повреждению.

    Опишите, как сухожилия способствуют движению тела.

    Когда мышца сокращается, сила движения передается через сухожилие, которое тянет кость, вызывая движение скелета.

    Каковы пять основных функций скелетных мышц?

    Обеспечивает движение скелета, поддерживает осанку и положение тела, поддерживает мягкие ткани, охватывает отверстия пищеварительного тракта, мочевыводящих путей и других путей, а также поддерживает температуру тела.

    Каковы противоположные роли потенциалозависимых натриевых каналов и потенциалозависимых калиевых каналов?

    Открытие потенциалзависимых натриевых каналов с последующим притоком Na + передает потенциал действия после того, как мембрана достаточно деполяризовалась.Отсроченное открытие калиевых каналов позволяет K + выйти из клетки, чтобы реполяризовать мембрану.

    Глоссарий

    ацетилхолин (АЧ)
    Нейромедиатор, который связывается с концевой пластинкой двигателя и запускает деполяризацию
    актин
    Белок
    , который составляет большинство тонких миофиламентов в мышечном волокне саркомера
    потенциал действия
    изменение напряжения клеточной мембраны в ответ на стимул, который приводит к передаче электрического сигнала; уникально для нейронов и мышечных волокон
    апоневроз
    широкий, подобный сухожилию лист соединительной ткани, который прикрепляет скелетную мышцу к другой скелетной мышце или к кости
    деполяризация
    для уменьшения разницы в напряжении между внутренней и внешней частью плазматической мембраны клетки (сарколемма мышечного волокна), делая внутреннюю часть менее отрицательной, чем в состоянии покоя
    эндомизий
    рыхлая и хорошо гидратированная соединительная ткань, покрывающая каждое мышечное волокно скелетной мышцы
    эпимизий
    Внешний слой соединительной ткани вокруг скелетной мышцы
    муфта возбуждения-сжатия
    Последовательность событий от передачи сигналов двигательного нейрона к волокну скелетных мышц до сокращения саркомеров волокна
    пучок
    Пучок мышечных волокон в скелетной мышце
    Концевая пластина двигателя
    сарколемма мышечного волокна в нервно-мышечном соединении с рецепторами нейромедиатора ацетилхолина
    миофибрилла
    длинная цилиндрическая органелла, которая проходит параллельно внутри мышечного волокна и содержит саркомеры
    миозин
    Белок
    , составляющий большую часть толстой цилиндрической миофиламента в мышечном волокне саркомера
    нервно-мышечное соединение (НМС)
    синапс между концом аксона моторного нейрона и участком мембраны мышечного волокна с рецепторами ацетилхолина, высвобождаемого концом
    нейромедиатор
    сигнальное химическое вещество, высвобождаемое нервными окончаниями, которые связываются с рецепторами на клетках-мишенях и активируют их
    перимизий
    Соединительная ткань, связывающая волокна скелетных мышц в пучки внутри скелетных мышц
    саркомер
    продольно, повторяющаяся функциональная единица скелетной мышцы, со всеми сократительными и связанными белками, участвующими в сокращении
    сарколемма
    плазматическая мембрана волокна скелетной мышцы
    саркоплазма
    цитоплазма мышечной клетки
    саркоплазматический ретикулум (SR)
    специализированный гладкий эндоплазматический ретикулум, который хранит, высвобождает и извлекает Ca ++
    синаптическая щель
    Пространство между нервным окончанием (аксоном) и концевой пластиной мотора
    Т-трубочка
    Проекция сарколеммы внутрь камеры
    толстая нить
    толстые тяжи миозина и их многочисленные головки, выступающие из центра саркомера к Z-дискам, но не полностью к ним.
    тонкая нить
    тонких нитей актина и его комплекса тропонин-тропомиозин, выступающих от Z-дисков к центру саркомера
    триада
    группа из одного Т-канальца и двух терминальных цистерн
    тропонин
    Регуляторный белок
    , связывающийся с актином, тропомиозином и кальцием
    тропомиозин
    Регуляторный белок
    , который покрывает участки связывания миозина, чтобы предотвратить связывание актина с миозином
    натриевые каналы с регулируемым напряжением
    мембранных белков, которые открывают натриевые каналы в ответ на достаточное изменение напряжения и инициируют и передают потенциал действия, когда Na + входит через канал
    .

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

    *
    *