Вход в личный кабинет | Регистрация
Избранное (0) Список сравнения (0)
Ваши покупки:
0 товаров на 0 Р
Итого: 0 Р Купить

Препараты рыбьего жира в капсулах: Рыбий жир инструкция по применению: показания, противопоказания, побочное действие – описание Fish oil Капсулы (42857)

Содержание

Рыбий жир для детей: польза Омега-3 для развития детей

Рыбий жир для детей от компании NFO — качественная биодобавка, которая содержит жирные кислоты Omega-3, а также комплекс витаминов и микроэлементов. С его помощью вы сможете обеспечить организм ребенка практически всем, что необходимо для нормального роста и развития.

Детский рыбий жир NFO необходимо использовать согласно инструкции производителя. Способ применения: детям старше 4 лет и взрослым по 1 капсуле 3-4 раза в день. Форма выпуска: 120 капсул капсулы массой 799 мг.

Рыбий жир в капсулах детям можно давать с 4 лет. Преимущества этого препарата заключается в удобстве использования. Он не разольется и не испачкает одежду. Перед приемом препарата рекомендуется получить консультацию педиатра.

Рыбий жир в капсулах детям — рекомендации и противопоказания


Омега-3 для детей NFO рекомендуется применять в следующих случаях:

  • гиперактивное поведение;
  • частые простудные заболевания;
  • профилактика рахита;
  • нарушения в физическом и психическом развитии;
  • дефицит витаминов А, Д и Е;
  • депрессия и раздражительность;
  • рассеянность, плохая память;
  • гемофилия;
  • ослабление иммунитета;
  • сердечно-сосудистые болезни;
  • лишний вес;
  • диатез;
  • малокровие;
  • наличие ран и ожогов;
  • сухость волос и кожи;
  • проблемы с зубами;
  • искусственное вскармливание.

Прием этого препарата поможет ребенку успешно справляться с образовательными нагрузками и приобретать необходимые навыки без существенных затруднений.

Противопоказания к применению Омега-3 для детей:

  • аллергия на компоненты препарата;
  • врожденный диабет;
  • гипервитаминоз;
  • пониженное давление;
  • желудочные болезни;
  • обострение холецистита и панкреатита;
  • камни в почках и желчном пузыре;
  • открытый туберкулез;
  • тяжелая травма.

Чтобы избежать передозировки препарата, его необходимо принимать согласно инструкции или назначению педиатра.




Источники Омега-3 для вашего ребёнка

Кислоты Омега-3 не вырабатываются в человеческом организме. Поэтому они обязательно должны присутствовать в рационе вашего питания. В максимальных количествах они содержатся в жирных видах рыб: лососе, скумбрии, сельди, тунце, морском окуне, пикше, угре. Также они входят в состав следующих масел: льняного, оливкового, тыквенного, рапсового, соевого. Кроме этого, они содержатся в грецких орехах и семечках тыквы.

Использование рыбьего жира для детей позволяет восполнить нехватку Омега-3 и витаминов по оптимальной цене.

Почему рыбий жир необходим будущим мамам

Рыбий жир рекомендуют принимать будущим мамам, так как этот препарат благотворно влияет на развитие ребенка уже во время беременности.

Когда же ребенок появляется на свет и начинает развиваться вне материнского организма,  потребность в незаменимых жирных кислотах возрастает. И вот почему. Омега-3, находящиеся в составе рыбьего жира,  отвечают за полноценное развитие нейронов головного мозга, укрепление межнейронных связей. В результате риск тяжёлых заболеваний нервной системы сводится к минимуму. Это очень важно, ведь рост ребенка и его развитие напрямую связаны с ростом нервной системы и мозга.

Польза рыбьего жира для детей

Основное назначение рыбьего жира для детей — снижение рисков сердечно-сосудистых заболеваний, диабета, профилактика ожирения, и конечно же — усвоение кальция и нормальный рост костей, что обеспечивается витамином D (важным компонентом рыбьего жира).

Омега-3 обеспечивают нормальную реакцию на внешние раздражители, подавляют агрессию и гиперактивность, делает организм устойчивым к стрессу. Этот препарат рекомендуют детям с СДВГ и другими нарушениями.

Омега-3 и витамин D нормализуют уровень фосфора и кальция в организме. Благодаря этому скелет становится крепче. Витамин Е обеспечивает эластичность сосудов и кожи, а витамин А улучшает функционирование органов зрения, умственное развитие и память у детей.

Благодаря применению рыбьего жира у детей  повышается активность клеток иммунной системы, нормализуется выработка антител, в результате чего борьба с антигенами становится более эффективной. А это значит, что ребенок становится более устойчив к инфекциям.

Жирные кислоты Омега-3 выступают основой для гормонов. Достаточное количество ПНЖК в организме оптимизирует регуляторную функцию желёз эндокринной системы. 

Рыбий жир для детей положительно влияет на эпителиальную ткань. Кожа становится более упругой, волосы приобретают мягкость, укрепляются ногти.

Последнее время среди врачей идет активное обсуждение, что нужно в обязательном порядке детям принимать рыбий жир (помните, как это было в детстве наших родителей?). И это не случайно.

Рыбий жир является эффективным и безопасным средством для поддержания иммунитета ребенка и в целом его состояния.

Детский рыбий жир — как выбрать и купить

Рыбий жир — это натуральный продукт, который получают из печени рыб тресковых пород. Обычно он бывает в жидкой форме со вкусовыми добавками, но сейчас можно купить и рыбий жир в жевательной форме — в виде мармеладок разного цвета и вкуса. Детям такой продукт интересно и приятно принимать, поэтому сложностей с приемом препарата обычно не возникает.

Главный критерий выбора биодобавок — это высокое качество. Качественный детский рыбий жир выпускается на заводах, расположенных в непосредственной близости от станции по приему улова. Это гарантирует свежесть сырья и быстроту его переработки. Рыбий жир для детей не должен содержать синтетических веществ и ГМО, капсулы для него изготавливаются из натурального желатина. Препараты NFO полностью соответствуют этим критериям, они безопасны для здоровья ваших малышей.

Чтобы защитить себя от некачественной продукции, покупайте рыбий жир в капсулах детям, а также жидкие препараты — на сайте NFO. Вы сможете заказывать их по минимальным ценам с доставкой по Москве и Московской области. В другие города препараты отправляются курьерской службой или почтой России. Кроме того, вы можете покупать продукцию NFO в партнерских аптеках, которые расположены в Москве и других городах России. При помощи отзывов покупателей, размещенных на сайте, вы можете убедиться в эффективности наших биодобавок.

Рыбий жир не является признанным официальным лекарством, поэтому покупателям необходимо тщательно проверять покупаемый продукт и доверять только проверенным производителям, каким является ООО «ОДАС Фарма» — официальный дистрибьютор норвежского рыбьего жира Norwegian Fish Oil.

Мы можем гарантировать и подтвердить сертификатами, что рыбий жир Norwegian Fish Oil является лучшим препаратом Омега-3, содержит необходимое количество ПНЖК, витаминов и обладает всеми полезными свойствами рыбьего жира.

Мы добываем рыбий жир только из диких северных рыб, в районах, известных чистотой окружающей среды и можем уверенно сказать, что наш рыбий жир в любой форме — высокого качества.

И небольшая памятка, как выбрать и применять детский рыбий жир:

1. Рыбий жир должен предназначаться для людей. Ветеринарный рыбий жир имеет на этикетке отметку, обращайте на нее внимание!

2. Для детей старайтесь выбирать рыбий жир со вкусовыми добавками — в нашей линейке есть натуральная жидкая форма жира печени трески и жевательные мармеладки с фруктовым вкусом.

3. Обращайте внимание на срок годности партии. Оптимальный срок годности рыбьего жира – 2-3 года.

4. Соблюдайте дозировку! Считается, что полезная и безопасная дозировка этого продукта для детей до полутора лет рассчитывается по формуле: 60 мг жира на каждый килограмм веса ребенка. От полутора лет до 15 лет суточная доза меньше, она рассчитывается по формуле: 30 мг на килограмм веса. Кормящей маме в среднем нужно около 300 мг продукта в сутки. Важно не допустить передозировки витамином D. Обязательно проконсультируйтесь с врачом!

Рыбий жир для детей — цена здоровья ребёнка

Компания NFO производит рыбий жир для детей, цена которого выше аналогичной продукции. Это объясняется безупречным качеством и высокой эффективностью препаратов. Стоимость рыбьего жира вы можете узнать на сайте NFO.

Если вы заказали нашу биодобавку, мы будем рады увидеть отзыв о полученных результатах. Вы можете разместить его на сайте в любое удобное для вас время.

Рыбий жир для ногтей: жидкой или в капсулах

*На правах рекламы

Польза рыбьего жира неоценима для организма человека, в том числе для ногтей. Современные производители выпускают разные виды препаратов: жидкие и в виде капсул. В связи с этим у потребителя возникает закономерный вопрос: какой вариант выбрать?

Для чего применяется рыбий жир

Омега-3-полиненасыщенные жирные кислоты, содержащиеся в рыбьем жире, являются незаменимыми (организм не способен синтезировать такие вещества, но остро в них нуждается). Преимущества регулярного приема добавки:

  • повышение иммунитета;
  • улучшение работы мозга, профилактика заболеваний психики и нервной системы;
  • нормализация артериального давления, разжижение крови;
  • снижение холестерина, риска развития атеросклероза;
  • улучшение зрительной функции,
  • уменьшение воспалительных процессов;
  • ускорение метаболизма, позволяющее эффективно худеть и растить мышечную массу;
  • улучшение состояния волос, кожи, ногтей.

Рыбий жир в капсулах

Чтобы понять, для чего рыбий жир помещается в капсулы, нужно изучить особенности омега-3 жирных кислот. При взаимодействии с кислородом они быстро окисляются, превращаясь в свободные радикалы – вещества, способные причинить вред здоровью. Герметичная оболочка защищает препарат от воздействия окружающей среды, что обеспечивает длительное хранение без потери полезных свойств.

Еще одно преимущество данной формы – удобство применения. Добавку легко пить (безвкусная оболочка растворяется при попадании в желудок), можно класть в таблетницу и брать с собой. Используя рыбий жир в капсулах, вы избавляете себя от необходимости отмерять нужное количество препарата: достаточно принять несколько штук (в зависимости от рекомендаций врача или производителя).

Жидкий рыбий жир

Если рыбий жир жидкий, он, как правило, стоит дешевле. Сохранить свежесть продукта при контакте с воздухом помогают антиоксиданты (витамин Е, розмарин, аскорбиновая кислота и др.). Некоторым производителям удается перебить неприятный вкус с помощью лимонных и фруктовых ароматизаторов.

Держать жидкий препарат лучше дома, т. к. употреблять его на выезде не всегда удобно (нужно куда-то класть бутылочку, иметь под рукой пакет и мерную ложку). Кроме того, в домашних условиях проще обеспечить правильные условия хранения. При использовании жидкого препарата нужно быть предельно аккуратным: если жир прольется на стол или одежду, избавиться от специфического рыбного запаха будет сложно.

Какой выбрать

Добавка в жидкой форме подойдет тем, кто ищет недорогой и быстро усваиваемый продукт (в т. ч. конкретного производителя). Такой вариант станет отличным решением для маленьких детей и взрослых, которые не умеют или боятся глотать таблетки.

Если вы цените комфорт и личное время, проводите много времени в разъездах, вам подойдут капсулы – безвкусные, удобные в применении, не требующие специфических условий хранения. Такую добавку хорошо давать детям постарше, которым не нравится вкус или консистенция рыбьего жира. Зайдите на сайт vitgid.ru, чтобы ознакомиться с рейтингом лучших препаратов в капсулах и жидкой форме.

Solgar, Омега-3 рыбий жир, концентрат, 240 капсул

Solgar, Омега-3 рыбий жир, концентрат, 240 капсул

Описание

  • На рынке с 1947 года

  • Продукт очищен от ртути

  • Без ГМО

  • Без глютена, пшеницы и молочных продуктов

  • Пищевая добавка

Данный препарат представляет собой натуральный концентрированный источник незаменимых омега-3 жирных кислот ДГК и ЭПК, полученных из глубоководной холодолюбивой рыбы. ЭПК и ДГК поддерживают здоровье сердечно-сосудистой системы и суставов, способствуют укреплению иммунитета. Рыбий жир в составе данного препарата прошел испытания на оптимальную чистоту. Сырье проходит молекулярную возгонку, в результате которой удаляется ртуть.

Рекомендации по применению

В качестве биологически активной добавки для взрослых принимать по две (2) капсулы три раза в день (желательно во время еды) или в соответствии с рекомендациями врача.

Ингредиенты

Желатин, растительный глицерин, натуральная смесь токоферолов. Содержит рыбу (анчоус, сардину).

Не содержит глютена, пшеницы, молочных продуктов, дрожжей, сахара, натрия, искусственных ароматизаторов, подсластителей, консервантов и красителей.

Предупреждения

Как и перед началом приема любых других добавок, необходимо проконсультироваться с врачом, если вы беременны, кормите грудью, планируете проведение медицинской процедуры или хирургической операции, принимаете какие-либо лекарства (включая препараты, разжижающие кровь) или страдаете каким-либо заболеванием. При возникновении любых побочных реакций следует прекратить прием и обратиться к врачу. Хранить в недоступном для детей месте. Хранить при комнатной температуре. Не использовать, если наружная защитная пленка отсутствует или повреждена.

Пищевая ценность
Размер порции: 2 капсулы
Порций в упаковке: 120
  Количество в 1 порции % от суточной нормы

Калории

20

 

Калорий из жира

20

 

Всего жиров 2 г 3%**
Насыщенные жиры 0,5 г 3%**
Полиненасыщенные жиры 1 г ***
Мононенасыщенные жиры 0,5 г ***
Холестерин 20 мг 7%**
Концентрат рыбьего жира состоит из:
Всего полиненасыщенных кислот омега-3 †, содержащих:
ЭПК (эйкозапентаеновая кислота)
ДГК (докозагексаеновая кислота)
2000 мг
600 мг
320 мг
200 мг
***
***
***
***
** Процент от суточной нормы при условии потребления 2000 калорий в день.
*** Суточная норма не определена.
† В виде натуральных триглицеридов

Сердечный рыбий жир, N30 — Aptiekas Produkcija

Эйкозапентаеновая кислота (EPA) и докозагексаеновая кислота (DHA) способствует нормальному сердцебиению. Благоприятный эффект достигается при ежедневном приеме 250 мг EPA и DHA.

Состав:

концентрат рыбьего жира, желатин, увлажнитель — глицерин.

Состав активных ингредиентов

в 1 капсуле

*РСД %

в 2 капсулах

*РСД %

концентрат рыбьего жира

1000,0 мг

**

2000,0 мг

**

эйкозапентаеновая кислота (EPA)

180,0 мг

**

360,0 мг

**

докозагексаеновая кислота (DHA)

120,0 мг

**

240,0 мг

**

*РСД – рекомендуемая суточная доза

**РСДН – рекомендуемая суточная доза не установлена

Продукт содержит ингредиенты, полученные из рыбы.

Применение:

по 1–2 капсулы в день. Не превышать рекомендованную суточную дозу.

Продукт предназначен для длительного использования.

Не использовать пищевую добавку в качестве заменителя полноценного и сбалансированного питания. Хранить плотно закрытым при комнатной температуре, в недоступном для детей месте. Не использовать, если повреждена упаковка. Не использовать при индивидуальной непереносимости компонентов продукта.

Помните — разнообразное и сбалансированное питание, здоровый образ жизни — предварительное условие крепкого здоровья!

Форма:

мягкие желатиновые капсулы по 1,4 г.

Упаковка:

30 капсул в PET бутылке.

Приготовление пероральной добавки, богатой омега-3, с использованием молочных и немолочных ингредиентов

J Food Sci Technol. 2018 Фев; 55 (2): 760–766.

1 и 2

Gunvantsinh Rathod

1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного животноводства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

Нарсайя Кайрам

2 Отдел сельскохозяйственного контроля ICAR — Центральный институт послеуборочной инженерии и технологии, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного хозяйства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

2 Отдел сельскохозяйственных структур и контроля окружающей среды, ICAR-Центральный институт послеуборочной инженерии и технологий, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

Автор, ответственный за переписку.

Пересмотрено 18 ноября 2017 г .; Принято 7 декабря 2017 г.

Авторское право © Ассоциация ученых и технологов в области пищевых продуктов (Индия), 2017 г.

Abstract

Рыбий жир является богатым источником омега-3 жирных кислот, незаменимых жирных кислот, жизненно важных для функционирования человеческого организма. Но нежелательный привкус является естественным ограничением рыбьего жира, что снижает его приемлемость. Маскировка рыбного вкуса может повысить усвояемость рыбьего жира. Настоящее исследование было сосредоточено на двойной инкапсуляции рыбьего жира, чтобы замаскировать его особый вкус.Рыбий жир эмульгировали с использованием соевого лецитина, при этом соотношение эмульгатора к жиру составляло 1: 4. Размер капель эмульсии составлял от 172,9 ± 1,7 до 238,2 ± 33,8 нм. Эмульсию смешивали с раствором сывороточного протеина и альгината натрия и превращали в шарики путем экструзии по каплям в растворе хлорида кальция. Капли превращали в шарики мягкого геля, содержащие рыбий жир. Эффективность капсулирования составила 89,3%. От высушенных бусин ощущался аромат рыбьего жира. Следовательно, шарики дополнительно покрывали жиром с высокой температурой плавления, используя устройство для нанесения покрытия на сковороде, и ароматизировали, чтобы шарики были вкусными для использования в качестве пероральной добавки.Бусины были сыпучими, светло-желтоватого цвета. Гранулы, покрытые жиром с высокой температурой плавления и ароматом ванили, получили больше баллов при сенсорной оценке участниками комиссии. Гранулы хранили в герметичной упаковке в холодильнике.

Ключевые слова: Инкапсуляция, жир с высокой температурой плавления, сывороточный протеин, альгинат натрия, рыбий жир

Введение

Спрос на функциональные продукты питания растет, поскольку они чрезвычайно важны для профилактики, контроля и лечения различных хронических заболеваний (Lee et al. al.2012). Омега-3 (ω-3) и омега-6 (ω-6) жирные кислоты, содержащиеся в рыбьем жире, являются одними из наиболее важных функциональных пищевых ингредиентов. Они улучшают сердечно-сосудистую деятельность, улучшают долговременную память и нормальную функцию мозга (Kralovec et al. 2012). Однако ω-3 жирные кислоты подвержены деградации с высвобождением вредных для здоровья продуктов, таких как вторичные продукты окисления полиненасыщенных жирных кислот, альдегидов, кетонов, спиртов, летучих органических кислот, углеводородов и эпоксидных соединений, о которых сообщили Shahidi и Zhong (2010).Инкапсуляция — отличный способ избежать вышеуказанных проблем, поскольку она может обеспечить стабильность и защиту, придать характеристики целевого и контролируемого высвобождения. Кроме того, он маскирует неприятный запах и вкус, продлевает срок хранения и улучшает биодоступность и вкусовые качества инкапсулированных материалов. Для эффективной доставки функциональных пищевых продуктов системы-носители должны обладать такими свойствами, как хорошее усвоение, увеличенное время циркуляции, отсутствие неприемлемых клинических побочных эффектов, высокая биосовместимость и низкая иммуногенность (McClements et al.2007). Разнообразные материалы, такие как циклодекстрин, весенний декстрин, хитозан, желатин и негелатиновые глобулярные белки, такие как бычий сывороточный альбумин, яичный альбумин, β-лакто-глобулин, соевые белки, гороховые белки и сывороточные белки, были использованы для разработки систем носителей для функциональных продукты питания (Schmitt and Turgeon 2011; Xu et al.2013).

Среди всех биоразлагаемых полимеров альгинат является одним из многообещающих кандидатов в матрицу доставки, поскольку гелевые шарики можно очень легко приготовить в водном растворе при комнатной температуре без использования какого-либо органического растворителя (Kikuchi et al.1999). Чен и Субирад (2006) документально подтвердили, что альгинаты представляют собой природные полисахариды, экстрагированные из бурых водорослей, и имеют линейную цепь из 1 → f 4 связанных остатков β-d-маннуроновой кислоты (M) и R-1-гулуроновой кислоты (G). Инкапсулирование с использованием альгинатов чаще всего проводят путем капельной экструзии раствора альгината через иглу в гелеобразующую среду раствора хлорида кальция. Из-за замены иона натрия ионами кальция альгинат образует структуру «яичный ящик», и происходит сшивание для образования гидрогеля.Будучи пищевым, альгинат использовался для инкапсуляции белков, антиоксидантов, полифенолов, витаминов (Chen and Subirade 2007) и пробиотиков (Hansen et al. 2008; Subirade et al. 2010).

Wichchukit et al. 2013 использовали гранулы сывороточного протеина / альгината в качестве носителя рибофлавина в качестве биологически активного компонента. Они также сообщили об использовании твин 80 для формирования круглых шариков. Чен и Субирад (2006) разработали гранулированные микросферы (шарики) на основе альгината и сывороточного протеина в качестве носителя биологически активного соединения, такого как рибофлавин.

Технология инкапсуляции хорошо известна в пищевой, фармацевтической, химической и косметической промышленности. В пищевой промышленности он используется для ароматизации жиров, масел, витаминов, красителей и ферментов. Рыбий жир, являющийся богатым источником высоконенасыщенных длинноцепочечных жирных кислот омега-3, обладает сильным запахом из-за окисления ненасыщенных жирных кислот. Инкапсуляция защитит рыбий жир от автоокисления полиненасыщенных жирных кислот (Jafari et al. 2008). Chen et al. (2013) инкапсулировали рыбий жир сложными эфирами фитостерола и лимоненом в молочных белках.Их исследование дало некоторые полезные сведения о применении концепции совместной инкапсуляции для защиты высушенных распылением микрокапсул рыбьего жира от окисления путем введения других липофильных биоактивных компонентов, а именно сложных эфиров фитостерола и лимонена в качестве основных материалов. Совместное инкапсулирование рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола может эффективно предотвратить окисление полиненасыщенных жирных кислот, а включение лимонена показало хорошую способность маскировать нежелательный рыбный запах.

Принимая во внимание преимущества и ограничения использования рыбьего жира, богатого омега-3, настоящая работа проводится с целью инкапсулирования рыбьего жира в альгинатные шарики и покрытия их жиром с высокой температурой плавления и ароматизатором для использования в качестве пероральных добавок.

Материалы и методы

Материалы

Альгинат натрия и гуаровая камедь были получены от SD Fine Chemicals Limited, Индия. Соевый лецитин был закуплен у Sonic Biochem Extraction Limited, Индия. Концентрат сывороточного протеина 80 был закуплен у Mahaan Proteins Ltd, Индия. Хлорид кальция был получен от M / S SD Fine Chemicals Limited, Индия. Масло печени трески (рыбий жир, морская треска) было закуплено у компании Sanofi India Limited, Индия. Жир с высокой температурой плавления был закуплен у Mundra Enterprises, Индия, и Flavors (International Flavor and Fragrances India Private ltd) на местном рынке, Лудхиана, Индия.

План экспериментов

Исследование было разработано для разработки стабильной эмульсии рыбьего жира с использованием молочного белка и натурального эмульгатора и превращения стабильной эмульсии в приятные на вкус шарики. На основании предварительных испытаний были выбраны соевый лецитин и концентрат сывороточного белка (WPC) для приготовления стабильной эмульсии рыбьего жира. Грубую эмульсию готовили путем смешивания рыбьего жира, WPC и соевого лецитина с использованием подвесной мешалки. Мелкодисперсная эмульсия была приготовлена ​​двумя разными способами, а именно. Ultra Turrex (смесь с высокими сдвиговыми усилиями) и гомогенизатор высокого давления.Соотношение эмульгатора и жира (EFR) в обоих экспериментах поддерживалось 1: 4 и 1: 6, в то время как другие параметры менялись в зависимости от оборудования. Скорость вращения в минуту (об / мин) смеси с высоким усилием сдвига, а именно 10 000, 12 000 об / мин, и время сдвига, а именно 12, 8 мин, были сохранены в качестве переменных для Ultra Turrax, в то время как давление, а именно 10, 15, 20 Kpsi и количество проходов. а именно, 1–4 оставались переменными для гомогенизатора высокого давления. Экспериментальный диапазон переменной был определен на основе предварительных испытаний. Оба метода сравнивали на основе размера частиц (в мм), и для дальнейших экспериментов была выбрана лучшая комбинация.Эти разработанные эмульсии были преобразованы в шарики с использованием альгината натрия и хлорида кальция в соответствии с предыдущей работой. Для нанесения покрытия на шарики использовали воск и жир с высокой температурой плавления. В ароматизатор добавлен аромат ванили и апельсина для улучшения вкусовых качеств. Результаты всех экспериментов были получены в трех повторностях.

Приготовление шариков

Рыбий жир (2 г) и лецитин (0,5 г) взвешивали и тщательно перемешивали. Добавляли 100 мл воды и перемешивали с помощью подвесной мешалки (EUROSTAR, IKA, USA) с 4-лопастной мешалкой пропеллерного типа (R 1342) диаметром 50 мм при 1700 об / мин в течение 15 минут с получением грубой эмульсии.Через 15 минут к эмульсии постепенно добавляли 2 г концентрата сывороточного белка и перемешивали еще 20 минут. Его оставляли на ночь для полной гидратации сывороточных белков. Грубую эмульсию четыре раза пропускали через гомогенизатор высокого давления (Constant Systems Limited, UK) при 15000 фунтов на квадратный дюйм для приготовления тонкой эмульсии. Эмульсию оставляли на ночь при комнатной температуре для образования комплекса белок-липосома. После хранения в течение ночи к тонкой эмульсии постепенно добавляли альгинат натрия при 2% мас. / Об..Затем смесь перемешивали при 1700 об / мин до полного перемешивания альгината натрия. Смесь переносили в перфорированный стакан и по каплям падали в 0,2 М раствор CaCl 2 (перемешивали при 500 об / мин с использованием магнитной мешалки) для быстрого образования шариков. После завершения формирования шариков шарики выдерживали для отверждения в 0,2 М CaCl 2 еще 30 мин. Гранулы отделяли с помощью муслиновой ткани и промывали дистиллированной водой для удаления избытка CaCl 2 , приставшего к гранулам.Промытые шарики сушили в сушильном шкафу при 50 ° C в течение 3–4 ч. Высушенные шарики хранили при температуре охлаждения для дальнейшего применения. Для покрытия шариков брали тугоплавкий жир (HMF) в соотношении 1 г HMF: 10 г шариков. К HMF добавляли ароматизатор в соотношении 1: 5 [Ванильный ароматизатор: (HMF)]. Для нанесения покрытия на шарики использовалась технология покрытия панелей. Высушенные шарики добавляли непосредственно к расплавленному и ароматизированному HMF и покрывали сковороду. После охлаждения гранулы покрывали ароматизированным HMF. Эти шарики были герметично упакованы и хранятся вдали от прямого света, чтобы проверить окисление жиров.Во время исследования эмульсии гомогенизатор Ultra Turrax [зонд S25 N-25G (IKA T-25, США)] также был использован для приготовления мелкодисперсной эмульсии вместо гомогенизатора высокого давления.

Измерение размера частиц

Размер частиц эмульсии анализировали методом динамического светорассеяния с использованием анализатора размера наночастиц (серия Zetasizer Nano, ZEN3600, Malvern Instruments, UK). Прибор содержит гелий-неоновый лазер мощностью 4 мВт, работающий на длине волны 633 нм. Измерение проводилось при угле обнаружения 173 ° и температуре 25 ° C.

Общее содержание масла в инкапсулированных шариках

Брали два грамма микрокапсулированных шариков (до покрытия HMF), измельчали ​​и экстрагировали рыбий жир с использованием аппарата Сокслета.

Эффективность инкапсуляции

Количество неинкапсулированного масла (свободного масла) измеряли для расчета эффективности инкапсуляции сразу после получения шариков. Для этого к точной навеске (2 г) порошка микрокапсул добавляли гексан (15 мл) с последующим встряхиванием смеси в течение 2 мин при комнатной температуре.Затем суспензию фильтровали через фильтровальную бумагу Whatman № 1 и остаток трижды промывали, пропуская каждый раз по 20 мл гексана. Затем раствор фильтрата, содержащий экстрагированное масло, переносили в печь при 70 ° C на 6 ч для полного испарения гексана. Количество масла на поверхности рассчитывалось по разнице в начальном и конечном весах контейнера для суспензии, а эффективность инкапсуляции рассчитывалась следующим образом (Тонон и др. 2011; Ван и др. 2011)

Эффективность инкапсуляции = TotalOilContent-SurfaceOilContentTotalOilContent

Цветовой анализ (L, a, b)

Цветовой анализ выполняли с помощью Mini Scan ™ XE plus hunter color Lab, Вирджиния, США.

Сенсорный анализ

Сенсорный анализ был проведен девятью полуобученными экспертами из ICAR-Central Post Harvest Engineering and Technology. Возрастной диапазон составлял от 24 до 56 лет с участием мужчин и женщин. Образцы были идентифицированы с помощью алфавитного кода. Рейтинговый тест проводился по шкале от 1 до 5. Экспертам было предложено оценить образцы покрытых шариков на предмет запаха рыбьего жира по шкале интенсивности от 1 до 5. (Где 1. Отсутствие рыбного запаха 2. Сверхлегкий рыбный запах 3. Легкий рыбный запах 4.Слабый рыбный запах 5. Сильный рыбный запах.) Все образцы оценивали в закрытой камере при температуре 25 ± 2 ° C и освещении флуоресцентным светом.

Статистический анализ

Дисперсионный анализ (ANOVA) был выполнен с использованием программного обеспечения SPSS (версия 20) для оценки влияния трех различных параметров гомогенизатора высокого давления, а именно. EFR, давление и количество проходов, а также Ultra Turrax, а именно. EFR, об / мин и время от размера частиц. Среднее значение трехкратного анализа со стандартным отклонением было представлено в таблице и сравнивалось с использованием ANOVA.На основе критической разницы (КР) были выделены средние значения. Постфактум был использован Дункан. Сенсорный анализ сравнивали по рангу.

Результаты и обсуждение

Оптимизация приготовления эмульсии

Была предпринята попытка эмульгирования рыбьего жира для получения эмульсии масло в воде с использованием различных эмульгаторов и натуральных эмульгаторов соевый лецитин был выбран для дальнейшего исследования. Клинкесорн и его сотрудники приготовили эмульсию с использованием тунцового масла и лецитина. Они сделали грубую эмульсию с помощью высокоскоростного смесителя и обработки ультразвуком в течение 2 минут при частоте 20 кГц, амплитуде 70% и скважности 0.5 (Клинкесорн и др., 2005).

Эмульсии получали с UT и HP с использованием различных комбинаций и сравнивали по размеру частиц. В случае метода UT из таблицы видно, что средний размер частиц был ниже при EFR 1: 4 по сравнению с 1: 6, что указывает на то, что соотношение EFR 1: 4 было адекватным для обволакивания глобул рыбьего жира, образованных из-за сдвига в UT. . Более высокий процент масла в эмульсиях приводит к большему среднему диаметру капель при тех же условиях гомогенизации (Floury et al.2000). Размер частиц был меньше (248,5 нм), когда образец находился на UT в течение 12 минут, чем 8 минут. Кроме того, размер частиц был меньше, когда образцы подвергались 12000 об / мин, чем 10000 об / мин. Высокие обороты UT и более длительная продолжительность могли привести к более сильному сдвигу, что привело к уменьшению размера капель. Поскольку капли были меньше, общая площадь поверхности капли увеличивалась, и она была покрыта лецитином, эмульгатором. Следовательно, должно присутствовать достаточное количество эмульгатора, чтобы обволакивать вновь образованные капли, в противном случае эти маленькие капли объединяются друг с другом и образуют глобулы большего размера.Это может быть возможной причиной наличия капли большего размера в образцах с EFR 1: 6. Статистический анализ данных показал значительное влияние эмульгатора на средний размер частиц, в то время как другие параметры и эффект взаимодействия были незначительными, что указывает на то, что статистически частота вращения и время не оказывают какого-либо значительного влияния на средний размер частиц.

Таблица 1

Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсии, приготовленной с Ultra Turrax

67139
Соотношение эмульгатора Об / мин Ultra Turrax Размер частиц (нм)
Время (в минутах) Ultra Turrax
12 мин 8 мин
1: 4 (лецитин: рыбий жир) 12000 248.5 ± 12,6 266,0 ± 30,4
10,000 262,4 ± 35,1 277,8 ± 33,6
1: 6 (Лецитин: Рыбий жир) 12000
10,000 423,9 ± 161,6 511,4 ± 178,2

То же исследование было проведено с методом HPH, в котором EFR оставался таким же, как и в предыдущем, но уровни давления гомогенизатора и уровни проходов были фиксированы вместо обороты и время, которое было сделано в UT.Как и в предыдущих исследованиях, размер частиц был меньше (182 нм) в EFR 1: 4, чем 1: 6 (таблица). Некоторые рабочие также сообщили об увеличении среднего диаметра жировых глобул с увеличением содержания масла для гомогенизации эмульсий масла в воде с помощью гомогенизатора APV Gaulin. Уменьшение диаметра капель наблюдалось с увеличением давления и количества проходов, что согласуется с предыдущими исследованиями (Qian and McClements 2011; Tan and Nakajima 2005; Tcholakova et al. 2003). Статистические данные показали, что влияние EFR и количества проходов очень существенно влияет на размер частиц.Это исследование также дополнило результаты предыдущего исследования EFR. Поэтому для образования эмульсии небольшого размера был необходим оптимальный уровень эмульгатора. Кроме того, по мере увеличения количества проходов в гомогенизаторе образец подвергался большему сдвигу, что приводило к гораздо меньшему размеру капли. Средний диаметр капель продолжал уменьшаться по мере того, как эмульсии пропускались через гомогенизатор все большее количество раз (Qian and McClements 2011), но дальнейшее уменьшение было довольно скромным. По данным Trotta et al.(2002), продолжительность обработки может повлиять на стабильность эмульсии. Опубликованные исследования показали, что количество проходов продукта через устройство влияет на средний размер частиц и распределение частиц по размерам. Статистический анализ показал, что капли, полученные после третьего и четвертого проходов, существенно не различались (таблица). Кроме того, более высокое давление и большее количество проходов привели к увеличению размера капель, что можно было наблюдать, когда образец с EFR 1: 6 прошел через HPH четыре раза при давлении 20 000 фунтов на квадратный дюйм.Было замечено, что повторение обработки или цикла приводило к уменьшению среднего размера частиц капли и сужению гранулометрического состава, после чего средний размер частиц и стандартное отклонение увеличивались по мере продолжения обработки, как указано выше. Это наблюдение согласуется с сообщениями, подтверждающими, что размер капель был результатом разрушения и коалесценции и что для систем, содержащих относительно высокий процент масла, повышение рабочего давления не всегда приводит к уменьшению размера капель эмульсии.Для мелкодисперсной эмульсии требовались оптимальное усилие сдвига и оптимальный эмульгатор. Оба исследования дали одинаковый результат об оптимальном уровне EFR 1: 4 для хорошей эмульсии. Когда и UT, и HPH сравнивали по размеру частиц, HPH давал гораздо более мелкие капли по сравнению с UT. Кроме того, PDI (индекс полидисперсности) эмульсии, полученной с помощью HPH, был довольно низким по сравнению с UT.

Таблица 2

Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсий, полученных с помощью гомогенизатора высокого давления

8) Бюро по патентам и товарным знакам США. Вашингтон, округ Колумбия,
  • Schmitt C, Turgeon SL. Белковые / полисахаридные комплексы и коацерваты в пищевых системах.Adv Colloid Interface Sci. 2011; 167: 63–70. DOI: 10.1016 / j.cis.2010.10.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Шахиди Ф., Чжун Ю. Окисление липидов и повышение устойчивости к окислению. Chem Soc Rev.2010; 39: 4067-4079. DOI: 10,1039 / b

    3m. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

  • Sinchaipanid N, Junyaprasert V, Mitrevej A. Нанесение термоплавкого покрытия для контролируемого высвобождения гранул гидрохлорида пропранолола. Пудра Технол. 2004. 141: 203–209. DOI: 10.1016 / j.powtec.2004.02.008. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Subirade M, Hebrard G, Hoffart V, Beyssac E, Cardot JM, Alric M. Покрытые оболочкой микрочастицы сывороточного протеина / альгината в качестве пероральных систем контролируемой доставки пробиотических дрожжей. J Microencapsul. 2010. 27: 292–302. DOI: 10.3109 / 026520404529. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тамджиди Ф., Шахеди М., Варшосаз Дж., Насирпур А. Наноструктурированные липидные носители (НЖК): потенциальная система доставки для биоактивных молекул пищи. Innov Food Sci Emerg Technol.2013; 19: 29–43. DOI: 10.1016 / j.ifset.2013.03.002. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Tan CP, Накадзима М. Нанодисперсии бета-каротина: получение, характеристика и оценка стабильности. Food Chem. 2005. 92: 661–671. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2004.08.044. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Чолакова С., Денков Н.Д., Сиджакова Д., Иванов И.Б., Кэмпбелл Б. Взаимосвязь между размером капли и адсорбцией белка при различных условиях эмульгирования. Ленгмюра. 2003; 19: 5640–5649. DOI: 10.1021 / la034411f.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Tonon RV, Grosso CRF, Hubinger MD. Влияние состава эмульсии и температуры воздуха на входе на микрокапсулирование льняного масла методом распылительной сушки. Food Res Int. 2011; 44: 282–289. DOI: 10.1016 / j.foodres.2010.10.018. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тротта М., Паттарино Ф., Игнони Т. Стабильность эмульсий лекарственное средство-носитель, содержащих смеси фосфатидилхолина. Eur J Pharm Biopharm. 2002; 53: 203–208. DOI: 10.1016 / S0939-6411 (01) 00230-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ван Р., Тиан З., Чен Л.Новый процесс микрокапсулирования рыбьего жира с белком ячменя. Food Res Int. 2011; 44: 2735–2741. DOI: 10.1016 / j.foodres.2011.06.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Wichchukit S, Oztop MH, McCarthy MJ, McCarthy KL. Гранулы сывороточного протеина / альгината как носители биологически активного компонента. Пищевой Hydrocoll. 2013; 33: 66–73. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2013.02.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Xu J, Zhao W, Ning Y, Bashari M, Wu F, Chen H, Yang N, Jin Z, Xu B, Zhang L, Xu X. Повышенная стабильность и контролируемое высвобождение ω- 3 / ω-6 полиненасыщенные жирные кислоты путем инкапсуляции весеннего декстрина.Carbohydr Polym. 2013; 92: 1633–1640. DOI: 10.1016 / j.carbpol.2012.11.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Приготовление пероральной добавки, богатой омега-3, с использованием молочных и немолочных ингредиентов

    J Food Sci Technol. 2018 Фев; 55 (2): 760–766.

    1 и 2

    Gunvantsinh Rathod

    1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного животноводства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

    Нарсайя Кайрам

    2 Отдел сельскохозяйственного контроля ICAR — Центральный институт послеуборочной инженерии и технологии, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

    1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного хозяйства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

    2 Отдел сельскохозяйственных структур и контроля окружающей среды, ICAR-Центральный институт послеуборочной инженерии и технологий, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

    Автор, ответственный за переписку.

    Пересмотрено 18 ноября 2017 г .; Принято 7 декабря 2017 г.

    Авторское право © Ассоциация ученых и технологов в области пищевых продуктов (Индия), 2017 г.

    Abstract

    Рыбий жир является богатым источником омега-3 жирных кислот, незаменимых жирных кислот, жизненно важных для функционирования человеческого организма. Но нежелательный привкус является естественным ограничением рыбьего жира, что снижает его приемлемость. Маскировка рыбного вкуса может повысить усвояемость рыбьего жира. Настоящее исследование было сосредоточено на двойной инкапсуляции рыбьего жира, чтобы замаскировать его особый вкус.Рыбий жир эмульгировали с использованием соевого лецитина, при этом соотношение эмульгатора к жиру составляло 1: 4. Размер капель эмульсии составлял от 172,9 ± 1,7 до 238,2 ± 33,8 нм. Эмульсию смешивали с раствором сывороточного протеина и альгината натрия и превращали в шарики путем экструзии по каплям в растворе хлорида кальция. Капли превращали в шарики мягкого геля, содержащие рыбий жир. Эффективность капсулирования составила 89,3%. От высушенных бусин ощущался аромат рыбьего жира. Следовательно, шарики дополнительно покрывали жиром с высокой температурой плавления, используя устройство для нанесения покрытия на сковороде, и ароматизировали, чтобы шарики были вкусными для использования в качестве пероральной добавки.Бусины были сыпучими, светло-желтоватого цвета. Гранулы, покрытые жиром с высокой температурой плавления и ароматом ванили, получили больше баллов при сенсорной оценке участниками комиссии. Гранулы хранили в герметичной упаковке в холодильнике.

    Ключевые слова: Инкапсуляция, жир с высокой температурой плавления, сывороточный протеин, альгинат натрия, рыбий жир

    Введение

    Спрос на функциональные продукты питания растет, поскольку они чрезвычайно важны для профилактики, контроля и лечения различных хронических заболеваний (Lee et al. al.2012). Омега-3 (ω-3) и омега-6 (ω-6) жирные кислоты, содержащиеся в рыбьем жире, являются одними из наиболее важных функциональных пищевых ингредиентов. Они улучшают сердечно-сосудистую деятельность, улучшают долговременную память и нормальную функцию мозга (Kralovec et al. 2012). Однако ω-3 жирные кислоты подвержены деградации с высвобождением вредных для здоровья продуктов, таких как вторичные продукты окисления полиненасыщенных жирных кислот, альдегидов, кетонов, спиртов, летучих органических кислот, углеводородов и эпоксидных соединений, о которых сообщили Shahidi и Zhong (2010).Инкапсуляция — отличный способ избежать вышеуказанных проблем, поскольку она может обеспечить стабильность и защиту, придать характеристики целевого и контролируемого высвобождения. Кроме того, он маскирует неприятный запах и вкус, продлевает срок хранения и улучшает биодоступность и вкусовые качества инкапсулированных материалов. Для эффективной доставки функциональных пищевых продуктов системы-носители должны обладать такими свойствами, как хорошее усвоение, увеличенное время циркуляции, отсутствие неприемлемых клинических побочных эффектов, высокая биосовместимость и низкая иммуногенность (McClements et al.2007). Разнообразные материалы, такие как циклодекстрин, весенний декстрин, хитозан, желатин и негелатиновые глобулярные белки, такие как бычий сывороточный альбумин, яичный альбумин, β-лакто-глобулин, соевые белки, гороховые белки и сывороточные белки, были использованы для разработки систем носителей для функциональных продукты питания (Schmitt and Turgeon 2011; Xu et al.2013).

    Среди всех биоразлагаемых полимеров альгинат является одним из многообещающих кандидатов в матрицу доставки, поскольку гелевые шарики можно очень легко приготовить в водном растворе при комнатной температуре без использования какого-либо органического растворителя (Kikuchi et al.1999). Чен и Субирад (2006) документально подтвердили, что альгинаты представляют собой природные полисахариды, экстрагированные из бурых водорослей, и имеют линейную цепь из 1 → f 4 связанных остатков β-d-маннуроновой кислоты (M) и R-1-гулуроновой кислоты (G). Инкапсулирование с использованием альгинатов чаще всего проводят путем капельной экструзии раствора альгината через иглу в гелеобразующую среду раствора хлорида кальция. Из-за замены иона натрия ионами кальция альгинат образует структуру «яичный ящик», и происходит сшивание для образования гидрогеля.Будучи пищевым, альгинат использовался для инкапсуляции белков, антиоксидантов, полифенолов, витаминов (Chen and Subirade 2007) и пробиотиков (Hansen et al. 2008; Subirade et al. 2010).

    Wichchukit et al. 2013 использовали гранулы сывороточного протеина / альгината в качестве носителя рибофлавина в качестве биологически активного компонента. Они также сообщили об использовании твин 80 для формирования круглых шариков. Чен и Субирад (2006) разработали гранулированные микросферы (шарики) на основе альгината и сывороточного протеина в качестве носителя биологически активного соединения, такого как рибофлавин.

    Технология инкапсуляции хорошо известна в пищевой, фармацевтической, химической и косметической промышленности. В пищевой промышленности он используется для ароматизации жиров, масел, витаминов, красителей и ферментов. Рыбий жир, являющийся богатым источником высоконенасыщенных длинноцепочечных жирных кислот омега-3, обладает сильным запахом из-за окисления ненасыщенных жирных кислот. Инкапсуляция защитит рыбий жир от автоокисления полиненасыщенных жирных кислот (Jafari et al. 2008). Chen et al. (2013) инкапсулировали рыбий жир сложными эфирами фитостерола и лимоненом в молочных белках.Их исследование дало некоторые полезные сведения о применении концепции совместной инкапсуляции для защиты высушенных распылением микрокапсул рыбьего жира от окисления путем введения других липофильных биоактивных компонентов, а именно сложных эфиров фитостерола и лимонена в качестве основных материалов. Совместное инкапсулирование рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола может эффективно предотвратить окисление полиненасыщенных жирных кислот, а включение лимонена показало хорошую способность маскировать нежелательный рыбный запах.

    Принимая во внимание преимущества и ограничения использования рыбьего жира, богатого омега-3, настоящая работа проводится с целью инкапсулирования рыбьего жира в альгинатные шарики и покрытия их жиром с высокой температурой плавления и ароматизатором для использования в качестве пероральных добавок.

    Материалы и методы

    Материалы

    Альгинат натрия и гуаровая камедь были получены от SD Fine Chemicals Limited, Индия. Соевый лецитин был закуплен у Sonic Biochem Extraction Limited, Индия. Концентрат сывороточного протеина 80 был закуплен у Mahaan Proteins Ltd, Индия. Хлорид кальция был получен от M / S SD Fine Chemicals Limited, Индия. Масло печени трески (рыбий жир, морская треска) было закуплено у компании Sanofi India Limited, Индия. Жир с высокой температурой плавления был закуплен у Mundra Enterprises, Индия, и Flavors (International Flavor and Fragrances India Private ltd) на местном рынке, Лудхиана, Индия.

    План экспериментов

    Исследование было разработано для разработки стабильной эмульсии рыбьего жира с использованием молочного белка и натурального эмульгатора и превращения стабильной эмульсии в приятные на вкус шарики. На основании предварительных испытаний были выбраны соевый лецитин и концентрат сывороточного белка (WPC) для приготовления стабильной эмульсии рыбьего жира. Грубую эмульсию готовили путем смешивания рыбьего жира, WPC и соевого лецитина с использованием подвесной мешалки. Мелкодисперсная эмульсия была приготовлена ​​двумя разными способами, а именно. Ultra Turrex (смесь с высокими сдвиговыми усилиями) и гомогенизатор высокого давления.Соотношение эмульгатора и жира (EFR) в обоих экспериментах поддерживалось 1: 4 и 1: 6, в то время как другие параметры менялись в зависимости от оборудования. Скорость вращения в минуту (об / мин) смеси с высоким усилием сдвига, а именно 10 000, 12 000 об / мин, и время сдвига, а именно 12, 8 мин, были сохранены в качестве переменных для Ultra Turrax, в то время как давление, а именно 10, 15, 20 Kpsi и количество проходов. а именно, 1–4 оставались переменными для гомогенизатора высокого давления. Экспериментальный диапазон переменной был определен на основе предварительных испытаний. Оба метода сравнивали на основе размера частиц (в мм), и для дальнейших экспериментов была выбрана лучшая комбинация.Эти разработанные эмульсии были преобразованы в шарики с использованием альгината натрия и хлорида кальция в соответствии с предыдущей работой. Для нанесения покрытия на шарики использовали воск и жир с высокой температурой плавления. В ароматизатор добавлен аромат ванили и апельсина для улучшения вкусовых качеств. Результаты всех экспериментов были получены в трех повторностях.

    Приготовление шариков

    Рыбий жир (2 г) и лецитин (0,5 г) взвешивали и тщательно перемешивали. Добавляли 100 мл воды и перемешивали с помощью подвесной мешалки (EUROSTAR, IKA, USA) с 4-лопастной мешалкой пропеллерного типа (R 1342) диаметром 50 мм при 1700 об / мин в течение 15 минут с получением грубой эмульсии.Через 15 минут к эмульсии постепенно добавляли 2 г концентрата сывороточного белка и перемешивали еще 20 минут. Его оставляли на ночь для полной гидратации сывороточных белков. Грубую эмульсию четыре раза пропускали через гомогенизатор высокого давления (Constant Systems Limited, UK) при 15000 фунтов на квадратный дюйм для приготовления тонкой эмульсии. Эмульсию оставляли на ночь при комнатной температуре для образования комплекса белок-липосома. После хранения в течение ночи к тонкой эмульсии постепенно добавляли альгинат натрия при 2% мас. / Об..Затем смесь перемешивали при 1700 об / мин до полного перемешивания альгината натрия. Смесь переносили в перфорированный стакан и по каплям падали в 0,2 М раствор CaCl 2 (перемешивали при 500 об / мин с использованием магнитной мешалки) для быстрого образования шариков. После завершения формирования шариков шарики выдерживали для отверждения в 0,2 М CaCl 2 еще 30 мин. Гранулы отделяли с помощью муслиновой ткани и промывали дистиллированной водой для удаления избытка CaCl 2 , приставшего к гранулам.Промытые шарики сушили в сушильном шкафу при 50 ° C в течение 3–4 ч. Высушенные шарики хранили при температуре охлаждения для дальнейшего применения. Для покрытия шариков брали тугоплавкий жир (HMF) в соотношении 1 г HMF: 10 г шариков. К HMF добавляли ароматизатор в соотношении 1: 5 [Ванильный ароматизатор: (HMF)]. Для нанесения покрытия на шарики использовалась технология покрытия панелей. Высушенные шарики добавляли непосредственно к расплавленному и ароматизированному HMF и покрывали сковороду. После охлаждения гранулы покрывали ароматизированным HMF. Эти шарики были герметично упакованы и хранятся вдали от прямого света, чтобы проверить окисление жиров.Во время исследования эмульсии гомогенизатор Ultra Turrax [зонд S25 N-25G (IKA T-25, США)] также был использован для приготовления мелкодисперсной эмульсии вместо гомогенизатора высокого давления.

    Измерение размера частиц

    Размер частиц эмульсии анализировали методом динамического светорассеяния с использованием анализатора размера наночастиц (серия Zetasizer Nano, ZEN3600, Malvern Instruments, UK). Прибор содержит гелий-неоновый лазер мощностью 4 мВт, работающий на длине волны 633 нм. Измерение проводилось при угле обнаружения 173 ° и температуре 25 ° C.

    Общее содержание масла в инкапсулированных шариках

    Брали два грамма микрокапсулированных шариков (до покрытия HMF), измельчали ​​и экстрагировали рыбий жир с использованием аппарата Сокслета.

    Эффективность инкапсуляции

    Количество неинкапсулированного масла (свободного масла) измеряли для расчета эффективности инкапсуляции сразу после получения шариков. Для этого к точной навеске (2 г) порошка микрокапсул добавляли гексан (15 мл) с последующим встряхиванием смеси в течение 2 мин при комнатной температуре.Затем суспензию фильтровали через фильтровальную бумагу Whatman № 1 и остаток трижды промывали, пропуская каждый раз по 20 мл гексана. Затем раствор фильтрата, содержащий экстрагированное масло, переносили в печь при 70 ° C на 6 ч для полного испарения гексана. Количество масла на поверхности рассчитывалось по разнице в начальном и конечном весах контейнера для суспензии, а эффективность инкапсуляции рассчитывалась следующим образом (Тонон и др. 2011; Ван и др. 2011)

    Эффективность инкапсуляции = TotalOilContent-SurfaceOilContentTotalOilContent

    Цветовой анализ (L, a, b)

    Цветовой анализ выполняли с помощью Mini Scan ™ XE plus hunter color Lab, Вирджиния, США.

    Сенсорный анализ

    Сенсорный анализ был проведен девятью полуобученными экспертами из ICAR-Central Post Harvest Engineering and Technology. Возрастной диапазон составлял от 24 до 56 лет с участием мужчин и женщин. Образцы были идентифицированы с помощью алфавитного кода. Рейтинговый тест проводился по шкале от 1 до 5. Экспертам было предложено оценить образцы покрытых шариков на предмет запаха рыбьего жира по шкале интенсивности от 1 до 5. (Где 1. Отсутствие рыбного запаха 2. Сверхлегкий рыбный запах 3. Легкий рыбный запах 4.Слабый рыбный запах 5. Сильный рыбный запах.) Все образцы оценивали в закрытой камере при температуре 25 ± 2 ° C и освещении флуоресцентным светом.

    Статистический анализ

    Дисперсионный анализ (ANOVA) был выполнен с использованием программного обеспечения SPSS (версия 20) для оценки влияния трех различных параметров гомогенизатора высокого давления, а именно. EFR, давление и количество проходов, а также Ultra Turrax, а именно. EFR, об / мин и время от размера частиц. Среднее значение трехкратного анализа со стандартным отклонением было представлено в таблице и сравнивалось с использованием ANOVA.На основе критической разницы (КР) были выделены средние значения. Постфактум был использован Дункан. Сенсорный анализ сравнивали по рангу.

    Результаты и обсуждение

    Оптимизация приготовления эмульсии

    Была предпринята попытка эмульгирования рыбьего жира для получения эмульсии масло в воде с использованием различных эмульгаторов и натуральных эмульгаторов соевый лецитин был выбран для дальнейшего исследования. Клинкесорн и его сотрудники приготовили эмульсию с использованием тунцового масла и лецитина. Они сделали грубую эмульсию с помощью высокоскоростного смесителя и обработки ультразвуком в течение 2 минут при частоте 20 кГц, амплитуде 70% и скважности 0.5 (Клинкесорн и др., 2005).

    Эмульсии получали с UT и HP с использованием различных комбинаций и сравнивали по размеру частиц. В случае метода UT из таблицы видно, что средний размер частиц был ниже при EFR 1: 4 по сравнению с 1: 6, что указывает на то, что соотношение EFR 1: 4 было адекватным для обволакивания глобул рыбьего жира, образованных из-за сдвига в UT. . Более высокий процент масла в эмульсиях приводит к большему среднему диаметру капель при тех же условиях гомогенизации (Floury et al.2000). Размер частиц был меньше (248,5 нм), когда образец находился на UT в течение 12 минут, чем 8 минут. Кроме того, размер частиц был меньше, когда образцы подвергались 12000 об / мин, чем 10000 об / мин. Высокие обороты UT и более длительная продолжительность могли привести к более сильному сдвигу, что привело к уменьшению размера капель. Поскольку капли были меньше, общая площадь поверхности капли увеличивалась, и она была покрыта лецитином, эмульгатором. Следовательно, должно присутствовать достаточное количество эмульгатора, чтобы обволакивать вновь образованные капли, в противном случае эти маленькие капли объединяются друг с другом и образуют глобулы большего размера.Это может быть возможной причиной наличия капли большего размера в образцах с EFR 1: 6. Статистический анализ данных показал значительное влияние эмульгатора на средний размер частиц, в то время как другие параметры и эффект взаимодействия были незначительными, что указывает на то, что статистически частота вращения и время не оказывают какого-либо значительного влияния на средний размер частиц.

    Таблица 1

    Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсии, приготовленной с Ultra Turrax

    Соотношение эмульгатора Проходы гомогенизатора высокого давления Размер частиц (нм)
    Давление высокого -гомогенизатор давления
    10 Kpsi 15 Kpsi 20 Kpsi
    1: 4 (Лецитин: рыбий жир) 1-й проход 233.3 ± 13,0 a 226,2 ± 13,8 a 225,4 ± 10,7 a
    2-й проход 203,2 ± 7,2 b 214,8 ± 27,1 34 b b
    3-й проход 185,6 ± 6,5 c 183,8 ± 11,3 c 192,3 ± 23,2 c
    4-й проход 178 c.9 ± 1,7 c 191,8 ± 2,7 c
    1: 6 (лецитин: рыбий жир) 1-й проход 246,6 ± 11,8 a 251,5 ± 24,3 38,3 ± 10,6 a
    2-й проход 227,3 ± 8,1 b 214,9 ± 12,3 b 213,1 ± 7,6 b
    b
    9138 8,0 196.5 ± 10,5 c 200,3 ± 8,9 c
    4-й проход 201,3 ± 5,0 c 196,7 ± 17,1 c 216,6 ± 36,0 32 90 32 средний размер частиц и PDI влияют на физическую стабильность, растворимость, биологические характеристики, скорость высвобождения, мутность и химическую стабильность эмульсий (Tamjidi et al. 2013). Гомогенизация под высоким давлением дает более стабильные эмульсии, чем гомогенизация с высоким усилием сдвига (Trotta et al.2002). Исходя из этих соображений, для получения эмульсии был выбран метод HPH с наилучшим сочетанием давления и прохода, т.е. 15000 фунтов на квадратный дюйм и 4 прохода были выбраны, в которых были зарегистрированы глобулы рыбьего жира меньшего размера. Анализ размера частиц выбранной комбинации показал более низкие значения как для среднего размера частиц (163,6 нм), так и для PDI (0,157).

    Стандартизация метода производства альгинатных шариков, содержащих рыбий жир

    После оптимизации параметров процесса образования эмульсии, следующей задачей было оптимизировать процесс инкапсулирования наноэмульсии в матрицу из альгината с использованием системы альгинат натрия-хлорид кальция.В первой попытке альгинат натрия растворяли в уже образованной эмульсии, и шарики формировались путем экструзии по каплям в 0,2 М раствор хлорида кальция. Инкапсулированные шарики собирали и сушили. Видимый рыбий жир наблюдался на поверхности высушенных шариков, также ощущался запах рыбьего жира, который указывал на то, что рыбий жир выделялся из альгинатной матрицы. Снижение вязкости наблюдалось в растворе альгината натрия, содержащем рыбий жир. Из-за вышеупомянутого эффекта во время формирования шариков наблюдали образование хвостов.В растворе хлорида кальция были обнаружены мелкие капли рыбьего жира, оставшиеся после затвердевания шариков, и запах рыбьего жира ощущался от раствора хлорида кальция. Следовательно, для инкапсулирования рыбьего жира требуется дальнейшая модификация процесса.

    Капля альгината натрия превращается в гранулы альгината кальция путем замены иона натрия на ион кальция. При поперечном сшивании альгинатных цепей образуются гранулы альгината кальция и молекулы-мишени, захваченные в этой матрице. Когда шарики были высушены, объем шариков уменьшился из-за потери воды, и материал матрицы сузился.Поскольку капли рыбьего жира не связывались с альгинатом, они выходили и переносились на поверхность, когда шарики сдавливались из-за высыхания и сжатия связей. Следовательно, удерживание рыбьего жира на альгинатной связи было возможно только при наличии какой-либо связи между каплей рыбьего жира и альгинатной сеткой и / или при наличии некоторого наполнителя для уменьшения эффекта сжатия альгинатных связей. Молочные белковые продукты, а именно казеинат натрия и концентрат сывороточного белка, обладают превосходными эмульгирующими и обезвоживающими свойствами (Keogh and O’Kennedy 1999).Целью сывороточного протеина было эмульгирование и стабилизация вновь созданных границ раздела жир / вода. Поскольку сывороточные белки имеют глобулярную природу, любая адсорбция на границе раздела масло / вода приведет к разворачиванию молекулы белка, стабилизируя поверхность раздела, но денатурируя белок. Эксперименты проводились с использованием сывороточного протеина и сухого обезжиренного молока в качестве наполнителя на одном уровне (2%, выбранных из предварительных исследований). Было замечено, что образец, приготовленный из концентрата сывороточного белка, имел более низкое содержание поверхностного рыбьего жира и был более сыпучим, чем образец, приготовленный из сухого обезжиренного молока.Образцы проверяли на эффективность капсулирования, и она составила 89,3 ± 0,5%. Таким образом, концентрат сывороточного протеина был выбран для дальнейших исследований. Когда грубую эмульсию с раствором сывороточного протеина оставляли на ночь для гидратации, более сухие и сыпучие шарики получали, чем раньше. После внесения этих модификаций процесса была проведена процедура стандартизации во время следующего эксперимента по изготовлению гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир.

    Покрытие гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир

    Sinchaipanid и его сотрудники сообщили о нанесении покрытия из горячего расплава для контролируемого высвобождения гранул пропранолола гидрохлорида (Sinchaipanid et al.2004 г.). Гранулы пропранолола, содержащие 60% микрокристаллической целлюлозы, получали с использованием техники прямого гранулирования в роторном грануляторе с псевдоожиженным слоем. Гранулы с размером ячеек 16:18 собирали и покрывали расплавленным воском в различных соотношениях и толщинах в верхней распылительной установке с псевдоожиженным слоем. Гранулы альгината сывороточного протеина, содержащие рыбий жир (WAF), покрывали воском, а также жиром с высокой температурой плавления, используя технику нанесения покрытия на противень, в которой рассчитанное количество материала покрытия плавили и шарики непосредственно добавляли в поддон.Было обнаружено, что шарики, покрытые жиром с высокой температурой плавления, обладают большей текучестью, чем шарики, покрытые воском. Время затвердевания воска было намного быстрее, чем у высокоплавкого жира, поэтому покрытие трудно контролировать. Неровный налет и комки на шариках, покрытых воском. Кроме того, покрытые воском шарики имеют твердое покрытие и зернистую текстуру. С учетом всех наблюдений для дальнейшего применения был выбран тугоплавкий жир. Также было замечено, что соотношение материала покрытия и шариков (HMF: WAF) остается практически неизменным независимо от исходного количества материала покрытия.Оставшееся количество материала покрытия оставалось в поддоне как материал без покрытия. Таким образом, для нанесения покрытия было использовано на 10% больше HMF, так как некоторое количество жира также будет прилипать к сковороде.

    Ароматизатор WAF с покрытием

    Ароматизатор увеличивает вкусовые качества продукта. Рыбий жир был инкапсулирован, но все же присутствовал запах рыбьего жира и жира с высокой температурой плавления, что делало его менее приемлемым. Следовательно, жир с высоким содержанием кофеина при нанесении покрытия был ароматизирован двумя разными ароматизаторами, а именно. апельсин и ваниль в разной концентрации для улучшения вкусовых качеств и приемлемости.Идея маскировки аромата была взята из US 6235267 (Santi and Nelson 2001), в котором говорилось о маскировании вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Органолептическая оценка показала, что аромат ванили обладает более сильным маскирующим эффектом, чем аромат апельсина. Наконец, в высокоплавкий жир добавляли ванильный ароматизатор из расчета 20%.

    Цветовой анализ образцов

    Цветовой анализ приготовленных шариков показал значительную разницу в значениях L *, a * и b * для четырех типов шариков (таблица). Не было значительной разницы в значении L * гранул, покрытых HMF, независимо от того, содержат они рыбий жир или нет.Но разница была значительной в шариках без покрытия. Бусины с покрытием имеют HMF на своей внешней поверхности, поэтому они будут иметь почти такую ​​же легкость, в то время как легкость образцов без покрытия будет отличаться отражением из-за рыбьего жира. Все средние выборки значимо различались для значения *. В случае значения b * не было значительной разницы между гранулами, покрытыми HMF без рыбьего жира, и гранулами без покрытия HMF с рыбьим жиром, в то время как другие средства существенно различались. Вероятной причиной может быть совокупный эффект толщины покрытия, а также содержания рыбьего жира.

    Таблица 3

    Параметры цвета образцов, измеренные Hunter Color Lab и сенсорная оценка образцов на основе рыбного запаха по пятибалльной шкале оценок

    Образец Описание L * a * b * Среднее восприятие
    A Покрытие HMF и без рыбьего жира 47,09 ± 0,56 b 8,65 ± 0,09 c 32.20 ± 0,76 b 1,14 ± 0,44 a
    B Покрытие HMF и рыбьим жиром 48,22 ± 0,26 c 6,68 ± 0,19 34 a 2,43 ± 1,33 b
    C Покрытие без HMF и без рыбьего жира 43,51 ± 0,12 a 9,30 ± 0,17 d 34,69 1.29 ± 0,73 a
    D Покрытие без HMF и с рыбьим жиром 48,11 ± 0,59 c 7,04 ± 0,15 b 32,80 ± 0,22 38 1,30005 c

    Сенсорная оценка образцов альгинатных гранул

    Для сенсорной оценки четырех различных образцов гранул рыбьего жира была отобрана группа полуобразованных сенсорных экспертов. Таблица показывает, что меньше вкуса рыбьего жира ощущалось в шариках, содержащих рыбий жир, покрытых ароматизированным высокоплавким жиром (Образец B), чем у гранул без покрытия, содержащих рыбий жир без покрытия (Образец D).Приемлемость гранул увеличивалась за счет покрытия из высокоплавкого жира со вкусом ванили. Следовательно, можно сделать вывод, что использование ванильного ароматизатора может замаскировать вкус и улучшить общее восприятие.

    Заключение

    Рыбий жир, богатый источник ненасыщенных жирных кислот, склонен к окислению, что приводит к резкому запаху из-за продуктов окисления. Кроме того, рыбий жир имеет свой особый вкус, неприемлемый для большинства населения, что создает дополнительные проблемы при его использовании и применении.Следовательно, гранулы, содержащие рыбий жир, были составлены с использованием системы сывороточный белок-альгинат, и, кроме того, они были покрыты с использованием высокоплавкого жира и ароматизированы с использованием ванильного ароматизатора, чтобы сделать его более привлекательным. Сообщения о сенсорной оценке подтверждают, что они были сенсорно приемлемыми. Дальнейшая работа в этой области может быть продолжена с использованием другого материала для покрытия, техники инкапсуляции и исходного ингредиента для производства пероральных добавок, имеющих большую приемлемость и контролируемое высвобождение.

    Ссылки

    • Chen LY, Subirade M.Гранулированные микросферы альгинат-сывороточного протеина как пероральные средства доставки биоактивных соединений. Биоматериалы. 2006. 27: 4646–4654. DOI: 10.1016 / j.biomaterials.2006.04.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen LY, Subirade M. Влияние условий приготовления на свойства высвобождения питательных веществ гранулированными микросферами альгинат-сывороточного протеина. Eur J Pharm Biopharm. 2007. 65: 354–362. DOI: 10.1016 / j.ejpb.2006.10.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen Q, McGillivray D, Wen J, Zhong F, Quek SY.Совместная инкапсуляция рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола и лимоненом молочными белками. J Food Eng. 2013; 117: 505–512. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2013.01.011. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Floury J, Desrumaux A, Lardieres J. Влияние гомогенизации под высоким давлением на распределение капель по размеру и реологические свойства модельных эмульсий масло-в-воде. Innov Food Sci Emerg Technol. 2000; 1: 127–134. DOI: 10.1016 / S1466-8564 (00) 00012-6. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Hansen LT, Annan NT, Borza AD.Инкапсуляция в желатиновых микросферах, покрытых альгинатом, улучшает выживаемость пробиотика Bifidobacterium adolescentis 15703T во время воздействия моделируемых желудочно-кишечных условий. Food Res Int. 2008. 41: 184–193. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.001. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Джафари С.М., Ассадпур Э., Бхандари Б., Хе Ю. Инкапсуляция рыбьего жира с помощью наночастиц с помощью распылительной сушки. Food Res Int. 2008. 41: 172–183. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.002. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Keogh MK, O’Kennedy BT.Микрокапсулирование молочного жира с использованием сывороточных белков. Int Dairy J. 1999; 9: 657–663. DOI: 10.1016 / S0958-6946 (99) 00137-5. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Кикучи А., Кавабучи М., Ватанабе А., Сугихара М., Сакураи Ю., Окано Т. Влияние растворения геля Са2þ-альгината на высвобождение декстрана с разной молекулярной массой. J Control Release. 1999; 58: 21–28. DOI: 10.1016 / S0168-3659 (98) 00141-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Klinkesorn U, Sophanodora P, Chinachoti P, McClements DJ, Decker EA.Повышение окислительной стабильности жидких и сушеных эмульсий тунца в воде с помощью электростатического послойного осаждения. J. Agric Food Chem. 2005; 53: 4561–4566. DOI: 10,1021 / jf0479158. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Kralovec JA, Zhang S, Zhang W., Barrow CJ. Обзор прогресса в области ферментативной концентрации и микрокапсулирования масла, богатого омега-3, из рыбных и микробных источников. Food Chem. 2012; 131: 639–644. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2011.08.085. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Ли П.С., Йим С.Г., Чой Й, Ха ТВА, Ко С.Физиохимические свойства и поведение при пролонгированном высвобождении денатурированных хитозаном микрокапсул β-лактоглобулина для потенциальных пищевых продуктов. Food Chem. 2012; 134: 992–998. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2012.03.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • McClements DJ, Decker EA, Weiss J. Системы доставки липофильных биоактивных компонентов на основе эмульсии. J Food Sci. 2007. 72: 109–124. DOI: 10.1111 / j.1750-3841.2007.00507.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Цянь Ц., МакКлементс DJ.Образование наноэмульсий, стабилизированных модельными эмульгаторами пищевого качества с использованием гомогенизации под высоким давлением: факторы, влияющие на размер частиц. Пищевой Hydrocoll. 2011; 25: 1000–1008. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2010.09.017. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Santi PAD, Nelson DG (2001) Маскировка вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Патент № 6235267 (US5
    67139
    Соотношение эмульгатора Об / мин Ultra Turrax Размер частиц (нм)
    Время (в минутах) Ultra Turrax
    12 мин 8 мин
    1: 4 (лецитин: рыбий жир) 12000 248.5 ± 12,6 266,0 ± 30,4
    10,000 262,4 ± 35,1 277,8 ± 33,6
    1: 6 (Лецитин: Рыбий жир) 12000
    10,000 423,9 ± 161,6 511,4 ± 178,2

    То же исследование было проведено с методом HPH, в котором EFR оставался таким же, как и в предыдущем, но уровни давления гомогенизатора и уровни проходов были фиксированы вместо обороты и время, которое было сделано в UT.Как и в предыдущих исследованиях, размер частиц был меньше (182 нм) в EFR 1: 4, чем 1: 6 (таблица). Некоторые рабочие также сообщили об увеличении среднего диаметра жировых глобул с увеличением содержания масла для гомогенизации эмульсий масла в воде с помощью гомогенизатора APV Gaulin. Уменьшение диаметра капель наблюдалось с увеличением давления и количества проходов, что согласуется с предыдущими исследованиями (Qian and McClements 2011; Tan and Nakajima 2005; Tcholakova et al. 2003). Статистические данные показали, что влияние EFR и количества проходов очень существенно влияет на размер частиц.Это исследование также дополнило результаты предыдущего исследования EFR. Поэтому для образования эмульсии небольшого размера был необходим оптимальный уровень эмульгатора. Кроме того, по мере увеличения количества проходов в гомогенизаторе образец подвергался большему сдвигу, что приводило к гораздо меньшему размеру капли. Средний диаметр капель продолжал уменьшаться по мере того, как эмульсии пропускались через гомогенизатор все большее количество раз (Qian and McClements 2011), но дальнейшее уменьшение было довольно скромным. По данным Trotta et al.(2002), продолжительность обработки может повлиять на стабильность эмульсии. Опубликованные исследования показали, что количество проходов продукта через устройство влияет на средний размер частиц и распределение частиц по размерам. Статистический анализ показал, что капли, полученные после третьего и четвертого проходов, существенно не различались (таблица). Кроме того, более высокое давление и большее количество проходов привели к увеличению размера капель, что можно было наблюдать, когда образец с EFR 1: 6 прошел через HPH четыре раза при давлении 20 000 фунтов на квадратный дюйм.Было замечено, что повторение обработки или цикла приводило к уменьшению среднего размера частиц капли и сужению гранулометрического состава, после чего средний размер частиц и стандартное отклонение увеличивались по мере продолжения обработки, как указано выше. Это наблюдение согласуется с сообщениями, подтверждающими, что размер капель был результатом разрушения и коалесценции и что для систем, содержащих относительно высокий процент масла, повышение рабочего давления не всегда приводит к уменьшению размера капель эмульсии.Для мелкодисперсной эмульсии требовались оптимальное усилие сдвига и оптимальный эмульгатор. Оба исследования дали одинаковый результат об оптимальном уровне EFR 1: 4 для хорошей эмульсии. Когда и UT, и HPH сравнивали по размеру частиц, HPH давал гораздо более мелкие капли по сравнению с UT. Кроме того, PDI (индекс полидисперсности) эмульсии, полученной с помощью HPH, был довольно низким по сравнению с UT.

    Таблица 2

    Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсий, полученных с помощью гомогенизатора высокого давления

    8) Бюро по патентам и товарным знакам США. Вашингтон, округ Колумбия,
  • Schmitt C, Turgeon SL. Белковые / полисахаридные комплексы и коацерваты в пищевых системах.Adv Colloid Interface Sci. 2011; 167: 63–70. DOI: 10.1016 / j.cis.2010.10.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Шахиди Ф., Чжун Ю. Окисление липидов и повышение устойчивости к окислению. Chem Soc Rev.2010; 39: 4067-4079. DOI: 10,1039 / b

    3m. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

  • Sinchaipanid N, Junyaprasert V, Mitrevej A. Нанесение термоплавкого покрытия для контролируемого высвобождения гранул гидрохлорида пропранолола. Пудра Технол. 2004. 141: 203–209. DOI: 10.1016 / j.powtec.2004.02.008. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Subirade M, Hebrard G, Hoffart V, Beyssac E, Cardot JM, Alric M. Покрытые оболочкой микрочастицы сывороточного протеина / альгината в качестве пероральных систем контролируемой доставки пробиотических дрожжей. J Microencapsul. 2010. 27: 292–302. DOI: 10.3109 / 026520404529. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тамджиди Ф., Шахеди М., Варшосаз Дж., Насирпур А. Наноструктурированные липидные носители (НЖК): потенциальная система доставки для биоактивных молекул пищи. Innov Food Sci Emerg Technol.2013; 19: 29–43. DOI: 10.1016 / j.ifset.2013.03.002. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Tan CP, Накадзима М. Нанодисперсии бета-каротина: получение, характеристика и оценка стабильности. Food Chem. 2005. 92: 661–671. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2004.08.044. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Чолакова С., Денков Н.Д., Сиджакова Д., Иванов И.Б., Кэмпбелл Б. Взаимосвязь между размером капли и адсорбцией белка при различных условиях эмульгирования. Ленгмюра. 2003; 19: 5640–5649. DOI: 10.1021 / la034411f.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Tonon RV, Grosso CRF, Hubinger MD. Влияние состава эмульсии и температуры воздуха на входе на микрокапсулирование льняного масла методом распылительной сушки. Food Res Int. 2011; 44: 282–289. DOI: 10.1016 / j.foodres.2010.10.018. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тротта М., Паттарино Ф., Игнони Т. Стабильность эмульсий лекарственное средство-носитель, содержащих смеси фосфатидилхолина. Eur J Pharm Biopharm. 2002; 53: 203–208. DOI: 10.1016 / S0939-6411 (01) 00230-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ван Р., Тиан З., Чен Л.Новый процесс микрокапсулирования рыбьего жира с белком ячменя. Food Res Int. 2011; 44: 2735–2741. DOI: 10.1016 / j.foodres.2011.06.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Wichchukit S, Oztop MH, McCarthy MJ, McCarthy KL. Гранулы сывороточного протеина / альгината как носители биологически активного компонента. Пищевой Hydrocoll. 2013; 33: 66–73. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2013.02.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Xu J, Zhao W, Ning Y, Bashari M, Wu F, Chen H, Yang N, Jin Z, Xu B, Zhang L, Xu X. Повышенная стабильность и контролируемое высвобождение ω- 3 / ω-6 полиненасыщенные жирные кислоты путем инкапсуляции весеннего декстрина.Carbohydr Polym. 2013; 92: 1633–1640. DOI: 10.1016 / j.carbpol.2012.11.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Приготовление пероральной добавки, богатой омега-3, с использованием молочных и немолочных ингредиентов

    J Food Sci Technol. 2018 Фев; 55 (2): 760–766.

    1 и 2

    Gunvantsinh Rathod

    1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного животноводства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

    Нарсайя Кайрам

    2 Отдел сельскохозяйственного контроля ICAR — Центральный институт послеуборочной инженерии и технологии, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

    1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного хозяйства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

    2 Отдел сельскохозяйственных структур и контроля окружающей среды, ICAR-Центральный институт послеуборочной инженерии и технологий, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

    Автор, ответственный за переписку.

    Пересмотрено 18 ноября 2017 г .; Принято 7 декабря 2017 г.

    Авторское право © Ассоциация ученых и технологов в области пищевых продуктов (Индия), 2017 г.

    Abstract

    Рыбий жир является богатым источником омега-3 жирных кислот, незаменимых жирных кислот, жизненно важных для функционирования человеческого организма. Но нежелательный привкус является естественным ограничением рыбьего жира, что снижает его приемлемость. Маскировка рыбного вкуса может повысить усвояемость рыбьего жира. Настоящее исследование было сосредоточено на двойной инкапсуляции рыбьего жира, чтобы замаскировать его особый вкус.Рыбий жир эмульгировали с использованием соевого лецитина, при этом соотношение эмульгатора к жиру составляло 1: 4. Размер капель эмульсии составлял от 172,9 ± 1,7 до 238,2 ± 33,8 нм. Эмульсию смешивали с раствором сывороточного протеина и альгината натрия и превращали в шарики путем экструзии по каплям в растворе хлорида кальция. Капли превращали в шарики мягкого геля, содержащие рыбий жир. Эффективность капсулирования составила 89,3%. От высушенных бусин ощущался аромат рыбьего жира. Следовательно, шарики дополнительно покрывали жиром с высокой температурой плавления, используя устройство для нанесения покрытия на сковороде, и ароматизировали, чтобы шарики были вкусными для использования в качестве пероральной добавки.Бусины были сыпучими, светло-желтоватого цвета. Гранулы, покрытые жиром с высокой температурой плавления и ароматом ванили, получили больше баллов при сенсорной оценке участниками комиссии. Гранулы хранили в герметичной упаковке в холодильнике.

    Ключевые слова: Инкапсуляция, жир с высокой температурой плавления, сывороточный протеин, альгинат натрия, рыбий жир

    Введение

    Спрос на функциональные продукты питания растет, поскольку они чрезвычайно важны для профилактики, контроля и лечения различных хронических заболеваний (Lee et al. al.2012). Омега-3 (ω-3) и омега-6 (ω-6) жирные кислоты, содержащиеся в рыбьем жире, являются одними из наиболее важных функциональных пищевых ингредиентов. Они улучшают сердечно-сосудистую деятельность, улучшают долговременную память и нормальную функцию мозга (Kralovec et al. 2012). Однако ω-3 жирные кислоты подвержены деградации с высвобождением вредных для здоровья продуктов, таких как вторичные продукты окисления полиненасыщенных жирных кислот, альдегидов, кетонов, спиртов, летучих органических кислот, углеводородов и эпоксидных соединений, о которых сообщили Shahidi и Zhong (2010).Инкапсуляция — отличный способ избежать вышеуказанных проблем, поскольку она может обеспечить стабильность и защиту, придать характеристики целевого и контролируемого высвобождения. Кроме того, он маскирует неприятный запах и вкус, продлевает срок хранения и улучшает биодоступность и вкусовые качества инкапсулированных материалов. Для эффективной доставки функциональных пищевых продуктов системы-носители должны обладать такими свойствами, как хорошее усвоение, увеличенное время циркуляции, отсутствие неприемлемых клинических побочных эффектов, высокая биосовместимость и низкая иммуногенность (McClements et al.2007). Разнообразные материалы, такие как циклодекстрин, весенний декстрин, хитозан, желатин и негелатиновые глобулярные белки, такие как бычий сывороточный альбумин, яичный альбумин, β-лакто-глобулин, соевые белки, гороховые белки и сывороточные белки, были использованы для разработки систем носителей для функциональных продукты питания (Schmitt and Turgeon 2011; Xu et al.2013).

    Среди всех биоразлагаемых полимеров альгинат является одним из многообещающих кандидатов в матрицу доставки, поскольку гелевые шарики можно очень легко приготовить в водном растворе при комнатной температуре без использования какого-либо органического растворителя (Kikuchi et al.1999). Чен и Субирад (2006) документально подтвердили, что альгинаты представляют собой природные полисахариды, экстрагированные из бурых водорослей, и имеют линейную цепь из 1 → f 4 связанных остатков β-d-маннуроновой кислоты (M) и R-1-гулуроновой кислоты (G). Инкапсулирование с использованием альгинатов чаще всего проводят путем капельной экструзии раствора альгината через иглу в гелеобразующую среду раствора хлорида кальция. Из-за замены иона натрия ионами кальция альгинат образует структуру «яичный ящик», и происходит сшивание для образования гидрогеля.Будучи пищевым, альгинат использовался для инкапсуляции белков, антиоксидантов, полифенолов, витаминов (Chen and Subirade 2007) и пробиотиков (Hansen et al. 2008; Subirade et al. 2010).

    Wichchukit et al. 2013 использовали гранулы сывороточного протеина / альгината в качестве носителя рибофлавина в качестве биологически активного компонента. Они также сообщили об использовании твин 80 для формирования круглых шариков. Чен и Субирад (2006) разработали гранулированные микросферы (шарики) на основе альгината и сывороточного протеина в качестве носителя биологически активного соединения, такого как рибофлавин.

    Технология инкапсуляции хорошо известна в пищевой, фармацевтической, химической и косметической промышленности. В пищевой промышленности он используется для ароматизации жиров, масел, витаминов, красителей и ферментов. Рыбий жир, являющийся богатым источником высоконенасыщенных длинноцепочечных жирных кислот омега-3, обладает сильным запахом из-за окисления ненасыщенных жирных кислот. Инкапсуляция защитит рыбий жир от автоокисления полиненасыщенных жирных кислот (Jafari et al. 2008). Chen et al. (2013) инкапсулировали рыбий жир сложными эфирами фитостерола и лимоненом в молочных белках.Их исследование дало некоторые полезные сведения о применении концепции совместной инкапсуляции для защиты высушенных распылением микрокапсул рыбьего жира от окисления путем введения других липофильных биоактивных компонентов, а именно сложных эфиров фитостерола и лимонена в качестве основных материалов. Совместное инкапсулирование рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола может эффективно предотвратить окисление полиненасыщенных жирных кислот, а включение лимонена показало хорошую способность маскировать нежелательный рыбный запах.

    Принимая во внимание преимущества и ограничения использования рыбьего жира, богатого омега-3, настоящая работа проводится с целью инкапсулирования рыбьего жира в альгинатные шарики и покрытия их жиром с высокой температурой плавления и ароматизатором для использования в качестве пероральных добавок.

    Материалы и методы

    Материалы

    Альгинат натрия и гуаровая камедь были получены от SD Fine Chemicals Limited, Индия. Соевый лецитин был закуплен у Sonic Biochem Extraction Limited, Индия. Концентрат сывороточного протеина 80 был закуплен у Mahaan Proteins Ltd, Индия. Хлорид кальция был получен от M / S SD Fine Chemicals Limited, Индия. Масло печени трески (рыбий жир, морская треска) было закуплено у компании Sanofi India Limited, Индия. Жир с высокой температурой плавления был закуплен у Mundra Enterprises, Индия, и Flavors (International Flavor and Fragrances India Private ltd) на местном рынке, Лудхиана, Индия.

    План экспериментов

    Исследование было разработано для разработки стабильной эмульсии рыбьего жира с использованием молочного белка и натурального эмульгатора и превращения стабильной эмульсии в приятные на вкус шарики. На основании предварительных испытаний были выбраны соевый лецитин и концентрат сывороточного белка (WPC) для приготовления стабильной эмульсии рыбьего жира. Грубую эмульсию готовили путем смешивания рыбьего жира, WPC и соевого лецитина с использованием подвесной мешалки. Мелкодисперсная эмульсия была приготовлена ​​двумя разными способами, а именно. Ultra Turrex (смесь с высокими сдвиговыми усилиями) и гомогенизатор высокого давления.Соотношение эмульгатора и жира (EFR) в обоих экспериментах поддерживалось 1: 4 и 1: 6, в то время как другие параметры менялись в зависимости от оборудования. Скорость вращения в минуту (об / мин) смеси с высоким усилием сдвига, а именно 10 000, 12 000 об / мин, и время сдвига, а именно 12, 8 мин, были сохранены в качестве переменных для Ultra Turrax, в то время как давление, а именно 10, 15, 20 Kpsi и количество проходов. а именно, 1–4 оставались переменными для гомогенизатора высокого давления. Экспериментальный диапазон переменной был определен на основе предварительных испытаний. Оба метода сравнивали на основе размера частиц (в мм), и для дальнейших экспериментов была выбрана лучшая комбинация.Эти разработанные эмульсии были преобразованы в шарики с использованием альгината натрия и хлорида кальция в соответствии с предыдущей работой. Для нанесения покрытия на шарики использовали воск и жир с высокой температурой плавления. В ароматизатор добавлен аромат ванили и апельсина для улучшения вкусовых качеств. Результаты всех экспериментов были получены в трех повторностях.

    Приготовление шариков

    Рыбий жир (2 г) и лецитин (0,5 г) взвешивали и тщательно перемешивали. Добавляли 100 мл воды и перемешивали с помощью подвесной мешалки (EUROSTAR, IKA, USA) с 4-лопастной мешалкой пропеллерного типа (R 1342) диаметром 50 мм при 1700 об / мин в течение 15 минут с получением грубой эмульсии.Через 15 минут к эмульсии постепенно добавляли 2 г концентрата сывороточного белка и перемешивали еще 20 минут. Его оставляли на ночь для полной гидратации сывороточных белков. Грубую эмульсию четыре раза пропускали через гомогенизатор высокого давления (Constant Systems Limited, UK) при 15000 фунтов на квадратный дюйм для приготовления тонкой эмульсии. Эмульсию оставляли на ночь при комнатной температуре для образования комплекса белок-липосома. После хранения в течение ночи к тонкой эмульсии постепенно добавляли альгинат натрия при 2% мас. / Об..Затем смесь перемешивали при 1700 об / мин до полного перемешивания альгината натрия. Смесь переносили в перфорированный стакан и по каплям падали в 0,2 М раствор CaCl 2 (перемешивали при 500 об / мин с использованием магнитной мешалки) для быстрого образования шариков. После завершения формирования шариков шарики выдерживали для отверждения в 0,2 М CaCl 2 еще 30 мин. Гранулы отделяли с помощью муслиновой ткани и промывали дистиллированной водой для удаления избытка CaCl 2 , приставшего к гранулам.Промытые шарики сушили в сушильном шкафу при 50 ° C в течение 3–4 ч. Высушенные шарики хранили при температуре охлаждения для дальнейшего применения. Для покрытия шариков брали тугоплавкий жир (HMF) в соотношении 1 г HMF: 10 г шариков. К HMF добавляли ароматизатор в соотношении 1: 5 [Ванильный ароматизатор: (HMF)]. Для нанесения покрытия на шарики использовалась технология покрытия панелей. Высушенные шарики добавляли непосредственно к расплавленному и ароматизированному HMF и покрывали сковороду. После охлаждения гранулы покрывали ароматизированным HMF. Эти шарики были герметично упакованы и хранятся вдали от прямого света, чтобы проверить окисление жиров.Во время исследования эмульсии гомогенизатор Ultra Turrax [зонд S25 N-25G (IKA T-25, США)] также был использован для приготовления мелкодисперсной эмульсии вместо гомогенизатора высокого давления.

    Измерение размера частиц

    Размер частиц эмульсии анализировали методом динамического светорассеяния с использованием анализатора размера наночастиц (серия Zetasizer Nano, ZEN3600, Malvern Instruments, UK). Прибор содержит гелий-неоновый лазер мощностью 4 мВт, работающий на длине волны 633 нм. Измерение проводилось при угле обнаружения 173 ° и температуре 25 ° C.

    Общее содержание масла в инкапсулированных шариках

    Брали два грамма микрокапсулированных шариков (до покрытия HMF), измельчали ​​и экстрагировали рыбий жир с использованием аппарата Сокслета.

    Эффективность инкапсуляции

    Количество неинкапсулированного масла (свободного масла) измеряли для расчета эффективности инкапсуляции сразу после получения шариков. Для этого к точной навеске (2 г) порошка микрокапсул добавляли гексан (15 мл) с последующим встряхиванием смеси в течение 2 мин при комнатной температуре.Затем суспензию фильтровали через фильтровальную бумагу Whatman № 1 и остаток трижды промывали, пропуская каждый раз по 20 мл гексана. Затем раствор фильтрата, содержащий экстрагированное масло, переносили в печь при 70 ° C на 6 ч для полного испарения гексана. Количество масла на поверхности рассчитывалось по разнице в начальном и конечном весах контейнера для суспензии, а эффективность инкапсуляции рассчитывалась следующим образом (Тонон и др. 2011; Ван и др. 2011)

    Эффективность инкапсуляции = TotalOilContent-SurfaceOilContentTotalOilContent

    Цветовой анализ (L, a, b)

    Цветовой анализ выполняли с помощью Mini Scan ™ XE plus hunter color Lab, Вирджиния, США.

    Сенсорный анализ

    Сенсорный анализ был проведен девятью полуобученными экспертами из ICAR-Central Post Harvest Engineering and Technology. Возрастной диапазон составлял от 24 до 56 лет с участием мужчин и женщин. Образцы были идентифицированы с помощью алфавитного кода. Рейтинговый тест проводился по шкале от 1 до 5. Экспертам было предложено оценить образцы покрытых шариков на предмет запаха рыбьего жира по шкале интенсивности от 1 до 5. (Где 1. Отсутствие рыбного запаха 2. Сверхлегкий рыбный запах 3. Легкий рыбный запах 4.Слабый рыбный запах 5. Сильный рыбный запах.) Все образцы оценивали в закрытой камере при температуре 25 ± 2 ° C и освещении флуоресцентным светом.

    Статистический анализ

    Дисперсионный анализ (ANOVA) был выполнен с использованием программного обеспечения SPSS (версия 20) для оценки влияния трех различных параметров гомогенизатора высокого давления, а именно. EFR, давление и количество проходов, а также Ultra Turrax, а именно. EFR, об / мин и время от размера частиц. Среднее значение трехкратного анализа со стандартным отклонением было представлено в таблице и сравнивалось с использованием ANOVA.На основе критической разницы (КР) были выделены средние значения. Постфактум был использован Дункан. Сенсорный анализ сравнивали по рангу.

    Результаты и обсуждение

    Оптимизация приготовления эмульсии

    Была предпринята попытка эмульгирования рыбьего жира для получения эмульсии масло в воде с использованием различных эмульгаторов и натуральных эмульгаторов соевый лецитин был выбран для дальнейшего исследования. Клинкесорн и его сотрудники приготовили эмульсию с использованием тунцового масла и лецитина. Они сделали грубую эмульсию с помощью высокоскоростного смесителя и обработки ультразвуком в течение 2 минут при частоте 20 кГц, амплитуде 70% и скважности 0.5 (Клинкесорн и др., 2005).

    Эмульсии получали с UT и HP с использованием различных комбинаций и сравнивали по размеру частиц. В случае метода UT из таблицы видно, что средний размер частиц был ниже при EFR 1: 4 по сравнению с 1: 6, что указывает на то, что соотношение EFR 1: 4 было адекватным для обволакивания глобул рыбьего жира, образованных из-за сдвига в UT. . Более высокий процент масла в эмульсиях приводит к большему среднему диаметру капель при тех же условиях гомогенизации (Floury et al.2000). Размер частиц был меньше (248,5 нм), когда образец находился на UT в течение 12 минут, чем 8 минут. Кроме того, размер частиц был меньше, когда образцы подвергались 12000 об / мин, чем 10000 об / мин. Высокие обороты UT и более длительная продолжительность могли привести к более сильному сдвигу, что привело к уменьшению размера капель. Поскольку капли были меньше, общая площадь поверхности капли увеличивалась, и она была покрыта лецитином, эмульгатором. Следовательно, должно присутствовать достаточное количество эмульгатора, чтобы обволакивать вновь образованные капли, в противном случае эти маленькие капли объединяются друг с другом и образуют глобулы большего размера.Это может быть возможной причиной наличия капли большего размера в образцах с EFR 1: 6. Статистический анализ данных показал значительное влияние эмульгатора на средний размер частиц, в то время как другие параметры и эффект взаимодействия были незначительными, что указывает на то, что статистически частота вращения и время не оказывают какого-либо значительного влияния на средний размер частиц.

    Таблица 1

    Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсии, приготовленной с Ultra Turrax

    Соотношение эмульгатора Проходы гомогенизатора высокого давления Размер частиц (нм)
    Давление высокого -гомогенизатор давления
    10 Kpsi 15 Kpsi 20 Kpsi
    1: 4 (Лецитин: рыбий жир) 1-й проход 233.3 ± 13,0 a 226,2 ± 13,8 a 225,4 ± 10,7 a
    2-й проход 203,2 ± 7,2 b 214,8 ± 27,1 34 b b
    3-й проход 185,6 ± 6,5 c 183,8 ± 11,3 c 192,3 ± 23,2 c
    4-й проход 178 c.9 ± 1,7 c 191,8 ± 2,7 c
    1: 6 (лецитин: рыбий жир) 1-й проход 246,6 ± 11,8 a 251,5 ± 24,3 38,3 ± 10,6 a
    2-й проход 227,3 ± 8,1 b 214,9 ± 12,3 b 213,1 ± 7,6 b
    b
    9138 8,0 196.5 ± 10,5 c 200,3 ± 8,9 c
    4-й проход 201,3 ± 5,0 c 196,7 ± 17,1 c 216,6 ± 36,0 32 90 32 средний размер частиц и PDI влияют на физическую стабильность, растворимость, биологические характеристики, скорость высвобождения, мутность и химическую стабильность эмульсий (Tamjidi et al. 2013). Гомогенизация под высоким давлением дает более стабильные эмульсии, чем гомогенизация с высоким усилием сдвига (Trotta et al.2002). Исходя из этих соображений, для получения эмульсии был выбран метод HPH с наилучшим сочетанием давления и прохода, т.е. 15000 фунтов на квадратный дюйм и 4 прохода были выбраны, в которых были зарегистрированы глобулы рыбьего жира меньшего размера. Анализ размера частиц выбранной комбинации показал более низкие значения как для среднего размера частиц (163,6 нм), так и для PDI (0,157).

    Стандартизация метода производства альгинатных шариков, содержащих рыбий жир

    После оптимизации параметров процесса образования эмульсии, следующей задачей было оптимизировать процесс инкапсулирования наноэмульсии в матрицу из альгината с использованием системы альгинат натрия-хлорид кальция.В первой попытке альгинат натрия растворяли в уже образованной эмульсии, и шарики формировались путем экструзии по каплям в 0,2 М раствор хлорида кальция. Инкапсулированные шарики собирали и сушили. Видимый рыбий жир наблюдался на поверхности высушенных шариков, также ощущался запах рыбьего жира, который указывал на то, что рыбий жир выделялся из альгинатной матрицы. Снижение вязкости наблюдалось в растворе альгината натрия, содержащем рыбий жир. Из-за вышеупомянутого эффекта во время формирования шариков наблюдали образование хвостов.В растворе хлорида кальция были обнаружены мелкие капли рыбьего жира, оставшиеся после затвердевания шариков, и запах рыбьего жира ощущался от раствора хлорида кальция. Следовательно, для инкапсулирования рыбьего жира требуется дальнейшая модификация процесса.

    Капля альгината натрия превращается в гранулы альгината кальция путем замены иона натрия на ион кальция. При поперечном сшивании альгинатных цепей образуются гранулы альгината кальция и молекулы-мишени, захваченные в этой матрице. Когда шарики были высушены, объем шариков уменьшился из-за потери воды, и материал матрицы сузился.Поскольку капли рыбьего жира не связывались с альгинатом, они выходили и переносились на поверхность, когда шарики сдавливались из-за высыхания и сжатия связей. Следовательно, удерживание рыбьего жира на альгинатной связи было возможно только при наличии какой-либо связи между каплей рыбьего жира и альгинатной сеткой и / или при наличии некоторого наполнителя для уменьшения эффекта сжатия альгинатных связей. Молочные белковые продукты, а именно казеинат натрия и концентрат сывороточного белка, обладают превосходными эмульгирующими и обезвоживающими свойствами (Keogh and O’Kennedy 1999).Целью сывороточного протеина было эмульгирование и стабилизация вновь созданных границ раздела жир / вода. Поскольку сывороточные белки имеют глобулярную природу, любая адсорбция на границе раздела масло / вода приведет к разворачиванию молекулы белка, стабилизируя поверхность раздела, но денатурируя белок. Эксперименты проводились с использованием сывороточного протеина и сухого обезжиренного молока в качестве наполнителя на одном уровне (2%, выбранных из предварительных исследований). Было замечено, что образец, приготовленный из концентрата сывороточного белка, имел более низкое содержание поверхностного рыбьего жира и был более сыпучим, чем образец, приготовленный из сухого обезжиренного молока.Образцы проверяли на эффективность капсулирования, и она составила 89,3 ± 0,5%. Таким образом, концентрат сывороточного протеина был выбран для дальнейших исследований. Когда грубую эмульсию с раствором сывороточного протеина оставляли на ночь для гидратации, более сухие и сыпучие шарики получали, чем раньше. После внесения этих модификаций процесса была проведена процедура стандартизации во время следующего эксперимента по изготовлению гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир.

    Покрытие гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир

    Sinchaipanid и его сотрудники сообщили о нанесении покрытия из горячего расплава для контролируемого высвобождения гранул пропранолола гидрохлорида (Sinchaipanid et al.2004 г.). Гранулы пропранолола, содержащие 60% микрокристаллической целлюлозы, получали с использованием техники прямого гранулирования в роторном грануляторе с псевдоожиженным слоем. Гранулы с размером ячеек 16:18 собирали и покрывали расплавленным воском в различных соотношениях и толщинах в верхней распылительной установке с псевдоожиженным слоем. Гранулы альгината сывороточного протеина, содержащие рыбий жир (WAF), покрывали воском, а также жиром с высокой температурой плавления, используя технику нанесения покрытия на противень, в которой рассчитанное количество материала покрытия плавили и шарики непосредственно добавляли в поддон.Было обнаружено, что шарики, покрытые жиром с высокой температурой плавления, обладают большей текучестью, чем шарики, покрытые воском. Время затвердевания воска было намного быстрее, чем у высокоплавкого жира, поэтому покрытие трудно контролировать. Неровный налет и комки на шариках, покрытых воском. Кроме того, покрытые воском шарики имеют твердое покрытие и зернистую текстуру. С учетом всех наблюдений для дальнейшего применения был выбран тугоплавкий жир. Также было замечено, что соотношение материала покрытия и шариков (HMF: WAF) остается практически неизменным независимо от исходного количества материала покрытия.Оставшееся количество материала покрытия оставалось в поддоне как материал без покрытия. Таким образом, для нанесения покрытия было использовано на 10% больше HMF, так как некоторое количество жира также будет прилипать к сковороде.

    Ароматизатор WAF с покрытием

    Ароматизатор увеличивает вкусовые качества продукта. Рыбий жир был инкапсулирован, но все же присутствовал запах рыбьего жира и жира с высокой температурой плавления, что делало его менее приемлемым. Следовательно, жир с высоким содержанием кофеина при нанесении покрытия был ароматизирован двумя разными ароматизаторами, а именно. апельсин и ваниль в разной концентрации для улучшения вкусовых качеств и приемлемости.Идея маскировки аромата была взята из US 6235267 (Santi and Nelson 2001), в котором говорилось о маскировании вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Органолептическая оценка показала, что аромат ванили обладает более сильным маскирующим эффектом, чем аромат апельсина. Наконец, в высокоплавкий жир добавляли ванильный ароматизатор из расчета 20%.

    Цветовой анализ образцов

    Цветовой анализ приготовленных шариков показал значительную разницу в значениях L *, a * и b * для четырех типов шариков (таблица). Не было значительной разницы в значении L * гранул, покрытых HMF, независимо от того, содержат они рыбий жир или нет.Но разница была значительной в шариках без покрытия. Бусины с покрытием имеют HMF на своей внешней поверхности, поэтому они будут иметь почти такую ​​же легкость, в то время как легкость образцов без покрытия будет отличаться отражением из-за рыбьего жира. Все средние выборки значимо различались для значения *. В случае значения b * не было значительной разницы между гранулами, покрытыми HMF без рыбьего жира, и гранулами без покрытия HMF с рыбьим жиром, в то время как другие средства существенно различались. Вероятной причиной может быть совокупный эффект толщины покрытия, а также содержания рыбьего жира.

    Таблица 3

    Параметры цвета образцов, измеренные Hunter Color Lab и сенсорная оценка образцов на основе рыбного запаха по пятибалльной шкале оценок

    Образец Описание L * a * b * Среднее восприятие
    A Покрытие HMF и без рыбьего жира 47,09 ± 0,56 b 8,65 ± 0,09 c 32.20 ± 0,76 b 1,14 ± 0,44 a
    B Покрытие HMF и рыбьим жиром 48,22 ± 0,26 c 6,68 ± 0,19 34 a 2,43 ± 1,33 b
    C Покрытие без HMF и без рыбьего жира 43,51 ± 0,12 a 9,30 ± 0,17 d 34,69 1.29 ± 0,73 a
    D Покрытие без HMF и с рыбьим жиром 48,11 ± 0,59 c 7,04 ± 0,15 b 32,80 ± 0,22 38 1,30005 c

    Сенсорная оценка образцов альгинатных гранул

    Для сенсорной оценки четырех различных образцов гранул рыбьего жира была отобрана группа полуобразованных сенсорных экспертов. Таблица показывает, что меньше вкуса рыбьего жира ощущалось в шариках, содержащих рыбий жир, покрытых ароматизированным высокоплавким жиром (Образец B), чем у гранул без покрытия, содержащих рыбий жир без покрытия (Образец D).Приемлемость гранул увеличивалась за счет покрытия из высокоплавкого жира со вкусом ванили. Следовательно, можно сделать вывод, что использование ванильного ароматизатора может замаскировать вкус и улучшить общее восприятие.

    Заключение

    Рыбий жир, богатый источник ненасыщенных жирных кислот, склонен к окислению, что приводит к резкому запаху из-за продуктов окисления. Кроме того, рыбий жир имеет свой особый вкус, неприемлемый для большинства населения, что создает дополнительные проблемы при его использовании и применении.Следовательно, гранулы, содержащие рыбий жир, были составлены с использованием системы сывороточный белок-альгинат, и, кроме того, они были покрыты с использованием высокоплавкого жира и ароматизированы с использованием ванильного ароматизатора, чтобы сделать его более привлекательным. Сообщения о сенсорной оценке подтверждают, что они были сенсорно приемлемыми. Дальнейшая работа в этой области может быть продолжена с использованием другого материала для покрытия, техники инкапсуляции и исходного ингредиента для производства пероральных добавок, имеющих большую приемлемость и контролируемое высвобождение.

    Ссылки

    • Chen LY, Subirade M.Гранулированные микросферы альгинат-сывороточного протеина как пероральные средства доставки биоактивных соединений. Биоматериалы. 2006. 27: 4646–4654. DOI: 10.1016 / j.biomaterials.2006.04.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen LY, Subirade M. Влияние условий приготовления на свойства высвобождения питательных веществ гранулированными микросферами альгинат-сывороточного протеина. Eur J Pharm Biopharm. 2007. 65: 354–362. DOI: 10.1016 / j.ejpb.2006.10.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen Q, McGillivray D, Wen J, Zhong F, Quek SY.Совместная инкапсуляция рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола и лимоненом молочными белками. J Food Eng. 2013; 117: 505–512. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2013.01.011. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Floury J, Desrumaux A, Lardieres J. Влияние гомогенизации под высоким давлением на распределение капель по размеру и реологические свойства модельных эмульсий масло-в-воде. Innov Food Sci Emerg Technol. 2000; 1: 127–134. DOI: 10.1016 / S1466-8564 (00) 00012-6. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Hansen LT, Annan NT, Borza AD.Инкапсуляция в желатиновых микросферах, покрытых альгинатом, улучшает выживаемость пробиотика Bifidobacterium adolescentis 15703T во время воздействия моделируемых желудочно-кишечных условий. Food Res Int. 2008. 41: 184–193. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.001. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Джафари С.М., Ассадпур Э., Бхандари Б., Хе Ю. Инкапсуляция рыбьего жира с помощью наночастиц с помощью распылительной сушки. Food Res Int. 2008. 41: 172–183. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.002. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Keogh MK, O’Kennedy BT.Микрокапсулирование молочного жира с использованием сывороточных белков. Int Dairy J. 1999; 9: 657–663. DOI: 10.1016 / S0958-6946 (99) 00137-5. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Кикучи А., Кавабучи М., Ватанабе А., Сугихара М., Сакураи Ю., Окано Т. Влияние растворения геля Са2þ-альгината на высвобождение декстрана с разной молекулярной массой. J Control Release. 1999; 58: 21–28. DOI: 10.1016 / S0168-3659 (98) 00141-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Klinkesorn U, Sophanodora P, Chinachoti P, McClements DJ, Decker EA.Повышение окислительной стабильности жидких и сушеных эмульсий тунца в воде с помощью электростатического послойного осаждения. J. Agric Food Chem. 2005; 53: 4561–4566. DOI: 10,1021 / jf0479158. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Kralovec JA, Zhang S, Zhang W., Barrow CJ. Обзор прогресса в области ферментативной концентрации и микрокапсулирования масла, богатого омега-3, из рыбных и микробных источников. Food Chem. 2012; 131: 639–644. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2011.08.085. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Ли П.С., Йим С.Г., Чой Й, Ха ТВА, Ко С.Физиохимические свойства и поведение при пролонгированном высвобождении денатурированных хитозаном микрокапсул β-лактоглобулина для потенциальных пищевых продуктов. Food Chem. 2012; 134: 992–998. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2012.03.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • McClements DJ, Decker EA, Weiss J. Системы доставки липофильных биоактивных компонентов на основе эмульсии. J Food Sci. 2007. 72: 109–124. DOI: 10.1111 / j.1750-3841.2007.00507.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Цянь Ц., МакКлементс DJ.Образование наноэмульсий, стабилизированных модельными эмульгаторами пищевого качества с использованием гомогенизации под высоким давлением: факторы, влияющие на размер частиц. Пищевой Hydrocoll. 2011; 25: 1000–1008. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2010.09.017. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Santi PAD, Nelson DG (2001) Маскировка вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Патент № 6235267 (US5
    67139
    Соотношение эмульгатора Об / мин Ultra Turrax Размер частиц (нм)
    Время (в минутах) Ultra Turrax
    12 мин 8 мин
    1: 4 (лецитин: рыбий жир) 12000 248.5 ± 12,6 266,0 ± 30,4
    10,000 262,4 ± 35,1 277,8 ± 33,6
    1: 6 (Лецитин: Рыбий жир) 12000
    10,000 423,9 ± 161,6 511,4 ± 178,2

    То же исследование было проведено с методом HPH, в котором EFR оставался таким же, как и в предыдущем, но уровни давления гомогенизатора и уровни проходов были фиксированы вместо обороты и время, которое было сделано в UT.Как и в предыдущих исследованиях, размер частиц был меньше (182 нм) в EFR 1: 4, чем 1: 6 (таблица). Некоторые рабочие также сообщили об увеличении среднего диаметра жировых глобул с увеличением содержания масла для гомогенизации эмульсий масла в воде с помощью гомогенизатора APV Gaulin. Уменьшение диаметра капель наблюдалось с увеличением давления и количества проходов, что согласуется с предыдущими исследованиями (Qian and McClements 2011; Tan and Nakajima 2005; Tcholakova et al. 2003). Статистические данные показали, что влияние EFR и количества проходов очень существенно влияет на размер частиц.Это исследование также дополнило результаты предыдущего исследования EFR. Поэтому для образования эмульсии небольшого размера был необходим оптимальный уровень эмульгатора. Кроме того, по мере увеличения количества проходов в гомогенизаторе образец подвергался большему сдвигу, что приводило к гораздо меньшему размеру капли. Средний диаметр капель продолжал уменьшаться по мере того, как эмульсии пропускались через гомогенизатор все большее количество раз (Qian and McClements 2011), но дальнейшее уменьшение было довольно скромным. По данным Trotta et al.(2002), продолжительность обработки может повлиять на стабильность эмульсии. Опубликованные исследования показали, что количество проходов продукта через устройство влияет на средний размер частиц и распределение частиц по размерам. Статистический анализ показал, что капли, полученные после третьего и четвертого проходов, существенно не различались (таблица). Кроме того, более высокое давление и большее количество проходов привели к увеличению размера капель, что можно было наблюдать, когда образец с EFR 1: 6 прошел через HPH четыре раза при давлении 20 000 фунтов на квадратный дюйм.Было замечено, что повторение обработки или цикла приводило к уменьшению среднего размера частиц капли и сужению гранулометрического состава, после чего средний размер частиц и стандартное отклонение увеличивались по мере продолжения обработки, как указано выше. Это наблюдение согласуется с сообщениями, подтверждающими, что размер капель был результатом разрушения и коалесценции и что для систем, содержащих относительно высокий процент масла, повышение рабочего давления не всегда приводит к уменьшению размера капель эмульсии.Для мелкодисперсной эмульсии требовались оптимальное усилие сдвига и оптимальный эмульгатор. Оба исследования дали одинаковый результат об оптимальном уровне EFR 1: 4 для хорошей эмульсии. Когда и UT, и HPH сравнивали по размеру частиц, HPH давал гораздо более мелкие капли по сравнению с UT. Кроме того, PDI (индекс полидисперсности) эмульсии, полученной с помощью HPH, был довольно низким по сравнению с UT.

    Таблица 2

    Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсий, полученных с помощью гомогенизатора высокого давления

    8) Бюро по патентам и товарным знакам США. Вашингтон, округ Колумбия,
  • Schmitt C, Turgeon SL. Белковые / полисахаридные комплексы и коацерваты в пищевых системах.Adv Colloid Interface Sci. 2011; 167: 63–70. DOI: 10.1016 / j.cis.2010.10.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Шахиди Ф., Чжун Ю. Окисление липидов и повышение устойчивости к окислению. Chem Soc Rev.2010; 39: 4067-4079. DOI: 10,1039 / b

    3m. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

  • Sinchaipanid N, Junyaprasert V, Mitrevej A. Нанесение термоплавкого покрытия для контролируемого высвобождения гранул гидрохлорида пропранолола. Пудра Технол. 2004. 141: 203–209. DOI: 10.1016 / j.powtec.2004.02.008. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Subirade M, Hebrard G, Hoffart V, Beyssac E, Cardot JM, Alric M. Покрытые оболочкой микрочастицы сывороточного протеина / альгината в качестве пероральных систем контролируемой доставки пробиотических дрожжей. J Microencapsul. 2010. 27: 292–302. DOI: 10.3109 / 026520404529. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тамджиди Ф., Шахеди М., Варшосаз Дж., Насирпур А. Наноструктурированные липидные носители (НЖК): потенциальная система доставки для биоактивных молекул пищи. Innov Food Sci Emerg Technol.2013; 19: 29–43. DOI: 10.1016 / j.ifset.2013.03.002. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Tan CP, Накадзима М. Нанодисперсии бета-каротина: получение, характеристика и оценка стабильности. Food Chem. 2005. 92: 661–671. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2004.08.044. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Чолакова С., Денков Н.Д., Сиджакова Д., Иванов И.Б., Кэмпбелл Б. Взаимосвязь между размером капли и адсорбцией белка при различных условиях эмульгирования. Ленгмюра. 2003; 19: 5640–5649. DOI: 10.1021 / la034411f.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Tonon RV, Grosso CRF, Hubinger MD. Влияние состава эмульсии и температуры воздуха на входе на микрокапсулирование льняного масла методом распылительной сушки. Food Res Int. 2011; 44: 282–289. DOI: 10.1016 / j.foodres.2010.10.018. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тротта М., Паттарино Ф., Игнони Т. Стабильность эмульсий лекарственное средство-носитель, содержащих смеси фосфатидилхолина. Eur J Pharm Biopharm. 2002; 53: 203–208. DOI: 10.1016 / S0939-6411 (01) 00230-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ван Р., Тиан З., Чен Л.Новый процесс микрокапсулирования рыбьего жира с белком ячменя. Food Res Int. 2011; 44: 2735–2741. DOI: 10.1016 / j.foodres.2011.06.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Wichchukit S, Oztop MH, McCarthy MJ, McCarthy KL. Гранулы сывороточного протеина / альгината как носители биологически активного компонента. Пищевой Hydrocoll. 2013; 33: 66–73. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2013.02.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Xu J, Zhao W, Ning Y, Bashari M, Wu F, Chen H, Yang N, Jin Z, Xu B, Zhang L, Xu X. Повышенная стабильность и контролируемое высвобождение ω- 3 / ω-6 полиненасыщенные жирные кислоты путем инкапсуляции весеннего декстрина.Carbohydr Polym. 2013; 92: 1633–1640. DOI: 10.1016 / j.carbpol.2012.11.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Приготовление пероральной добавки, богатой омега-3, с использованием молочных и немолочных ингредиентов

    J Food Sci Technol. 2018 Фев; 55 (2): 760–766.

    1 и 2

    Gunvantsinh Rathod

    1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного животноводства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

    Нарсайя Кайрам

    2 Отдел сельскохозяйственного контроля ICAR — Центральный институт послеуборочной инженерии и технологии, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

    1 Отдел молочных технологий, ICAR-Национальный исследовательский институт молочного хозяйства, Карнал, Харьяна 132001 Индия

    2 Отдел сельскохозяйственных структур и контроля окружающей среды, ICAR-Центральный институт послеуборочной инженерии и технологий, Лудхиана, Пенджаб 141004 Индия

    Автор, ответственный за переписку.

    Пересмотрено 18 ноября 2017 г .; Принято 7 декабря 2017 г.

    Авторское право © Ассоциация ученых и технологов в области пищевых продуктов (Индия), 2017 г.

    Abstract

    Рыбий жир является богатым источником омега-3 жирных кислот, незаменимых жирных кислот, жизненно важных для функционирования человеческого организма. Но нежелательный привкус является естественным ограничением рыбьего жира, что снижает его приемлемость. Маскировка рыбного вкуса может повысить усвояемость рыбьего жира. Настоящее исследование было сосредоточено на двойной инкапсуляции рыбьего жира, чтобы замаскировать его особый вкус.Рыбий жир эмульгировали с использованием соевого лецитина, при этом соотношение эмульгатора к жиру составляло 1: 4. Размер капель эмульсии составлял от 172,9 ± 1,7 до 238,2 ± 33,8 нм. Эмульсию смешивали с раствором сывороточного протеина и альгината натрия и превращали в шарики путем экструзии по каплям в растворе хлорида кальция. Капли превращали в шарики мягкого геля, содержащие рыбий жир. Эффективность капсулирования составила 89,3%. От высушенных бусин ощущался аромат рыбьего жира. Следовательно, шарики дополнительно покрывали жиром с высокой температурой плавления, используя устройство для нанесения покрытия на сковороде, и ароматизировали, чтобы шарики были вкусными для использования в качестве пероральной добавки.Бусины были сыпучими, светло-желтоватого цвета. Гранулы, покрытые жиром с высокой температурой плавления и ароматом ванили, получили больше баллов при сенсорной оценке участниками комиссии. Гранулы хранили в герметичной упаковке в холодильнике.

    Ключевые слова: Инкапсуляция, жир с высокой температурой плавления, сывороточный протеин, альгинат натрия, рыбий жир

    Введение

    Спрос на функциональные продукты питания растет, поскольку они чрезвычайно важны для профилактики, контроля и лечения различных хронических заболеваний (Lee et al. al.2012). Омега-3 (ω-3) и омега-6 (ω-6) жирные кислоты, содержащиеся в рыбьем жире, являются одними из наиболее важных функциональных пищевых ингредиентов. Они улучшают сердечно-сосудистую деятельность, улучшают долговременную память и нормальную функцию мозга (Kralovec et al. 2012). Однако ω-3 жирные кислоты подвержены деградации с высвобождением вредных для здоровья продуктов, таких как вторичные продукты окисления полиненасыщенных жирных кислот, альдегидов, кетонов, спиртов, летучих органических кислот, углеводородов и эпоксидных соединений, о которых сообщили Shahidi и Zhong (2010).Инкапсуляция — отличный способ избежать вышеуказанных проблем, поскольку она может обеспечить стабильность и защиту, придать характеристики целевого и контролируемого высвобождения. Кроме того, он маскирует неприятный запах и вкус, продлевает срок хранения и улучшает биодоступность и вкусовые качества инкапсулированных материалов. Для эффективной доставки функциональных пищевых продуктов системы-носители должны обладать такими свойствами, как хорошее усвоение, увеличенное время циркуляции, отсутствие неприемлемых клинических побочных эффектов, высокая биосовместимость и низкая иммуногенность (McClements et al.2007). Разнообразные материалы, такие как циклодекстрин, весенний декстрин, хитозан, желатин и негелатиновые глобулярные белки, такие как бычий сывороточный альбумин, яичный альбумин, β-лакто-глобулин, соевые белки, гороховые белки и сывороточные белки, были использованы для разработки систем носителей для функциональных продукты питания (Schmitt and Turgeon 2011; Xu et al.2013).

    Среди всех биоразлагаемых полимеров альгинат является одним из многообещающих кандидатов в матрицу доставки, поскольку гелевые шарики можно очень легко приготовить в водном растворе при комнатной температуре без использования какого-либо органического растворителя (Kikuchi et al.1999). Чен и Субирад (2006) документально подтвердили, что альгинаты представляют собой природные полисахариды, экстрагированные из бурых водорослей, и имеют линейную цепь из 1 → f 4 связанных остатков β-d-маннуроновой кислоты (M) и R-1-гулуроновой кислоты (G). Инкапсулирование с использованием альгинатов чаще всего проводят путем капельной экструзии раствора альгината через иглу в гелеобразующую среду раствора хлорида кальция. Из-за замены иона натрия ионами кальция альгинат образует структуру «яичный ящик», и происходит сшивание для образования гидрогеля.Будучи пищевым, альгинат использовался для инкапсуляции белков, антиоксидантов, полифенолов, витаминов (Chen and Subirade 2007) и пробиотиков (Hansen et al. 2008; Subirade et al. 2010).

    Wichchukit et al. 2013 использовали гранулы сывороточного протеина / альгината в качестве носителя рибофлавина в качестве биологически активного компонента. Они также сообщили об использовании твин 80 для формирования круглых шариков. Чен и Субирад (2006) разработали гранулированные микросферы (шарики) на основе альгината и сывороточного протеина в качестве носителя биологически активного соединения, такого как рибофлавин.

    Технология инкапсуляции хорошо известна в пищевой, фармацевтической, химической и косметической промышленности. В пищевой промышленности он используется для ароматизации жиров, масел, витаминов, красителей и ферментов. Рыбий жир, являющийся богатым источником высоконенасыщенных длинноцепочечных жирных кислот омега-3, обладает сильным запахом из-за окисления ненасыщенных жирных кислот. Инкапсуляция защитит рыбий жир от автоокисления полиненасыщенных жирных кислот (Jafari et al. 2008). Chen et al. (2013) инкапсулировали рыбий жир сложными эфирами фитостерола и лимоненом в молочных белках.Их исследование дало некоторые полезные сведения о применении концепции совместной инкапсуляции для защиты высушенных распылением микрокапсул рыбьего жира от окисления путем введения других липофильных биоактивных компонентов, а именно сложных эфиров фитостерола и лимонена в качестве основных материалов. Совместное инкапсулирование рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола может эффективно предотвратить окисление полиненасыщенных жирных кислот, а включение лимонена показало хорошую способность маскировать нежелательный рыбный запах.

    Принимая во внимание преимущества и ограничения использования рыбьего жира, богатого омега-3, настоящая работа проводится с целью инкапсулирования рыбьего жира в альгинатные шарики и покрытия их жиром с высокой температурой плавления и ароматизатором для использования в качестве пероральных добавок.

    Материалы и методы

    Материалы

    Альгинат натрия и гуаровая камедь были получены от SD Fine Chemicals Limited, Индия. Соевый лецитин был закуплен у Sonic Biochem Extraction Limited, Индия. Концентрат сывороточного протеина 80 был закуплен у Mahaan Proteins Ltd, Индия. Хлорид кальция был получен от M / S SD Fine Chemicals Limited, Индия. Масло печени трески (рыбий жир, морская треска) было закуплено у компании Sanofi India Limited, Индия. Жир с высокой температурой плавления был закуплен у Mundra Enterprises, Индия, и Flavors (International Flavor and Fragrances India Private ltd) на местном рынке, Лудхиана, Индия.

    План экспериментов

    Исследование было разработано для разработки стабильной эмульсии рыбьего жира с использованием молочного белка и натурального эмульгатора и превращения стабильной эмульсии в приятные на вкус шарики. На основании предварительных испытаний были выбраны соевый лецитин и концентрат сывороточного белка (WPC) для приготовления стабильной эмульсии рыбьего жира. Грубую эмульсию готовили путем смешивания рыбьего жира, WPC и соевого лецитина с использованием подвесной мешалки. Мелкодисперсная эмульсия была приготовлена ​​двумя разными способами, а именно. Ultra Turrex (смесь с высокими сдвиговыми усилиями) и гомогенизатор высокого давления.Соотношение эмульгатора и жира (EFR) в обоих экспериментах поддерживалось 1: 4 и 1: 6, в то время как другие параметры менялись в зависимости от оборудования. Скорость вращения в минуту (об / мин) смеси с высоким усилием сдвига, а именно 10 000, 12 000 об / мин, и время сдвига, а именно 12, 8 мин, были сохранены в качестве переменных для Ultra Turrax, в то время как давление, а именно 10, 15, 20 Kpsi и количество проходов. а именно, 1–4 оставались переменными для гомогенизатора высокого давления. Экспериментальный диапазон переменной был определен на основе предварительных испытаний. Оба метода сравнивали на основе размера частиц (в мм), и для дальнейших экспериментов была выбрана лучшая комбинация.Эти разработанные эмульсии были преобразованы в шарики с использованием альгината натрия и хлорида кальция в соответствии с предыдущей работой. Для нанесения покрытия на шарики использовали воск и жир с высокой температурой плавления. В ароматизатор добавлен аромат ванили и апельсина для улучшения вкусовых качеств. Результаты всех экспериментов были получены в трех повторностях.

    Приготовление шариков

    Рыбий жир (2 г) и лецитин (0,5 г) взвешивали и тщательно перемешивали. Добавляли 100 мл воды и перемешивали с помощью подвесной мешалки (EUROSTAR, IKA, USA) с 4-лопастной мешалкой пропеллерного типа (R 1342) диаметром 50 мм при 1700 об / мин в течение 15 минут с получением грубой эмульсии.Через 15 минут к эмульсии постепенно добавляли 2 г концентрата сывороточного белка и перемешивали еще 20 минут. Его оставляли на ночь для полной гидратации сывороточных белков. Грубую эмульсию четыре раза пропускали через гомогенизатор высокого давления (Constant Systems Limited, UK) при 15000 фунтов на квадратный дюйм для приготовления тонкой эмульсии. Эмульсию оставляли на ночь при комнатной температуре для образования комплекса белок-липосома. После хранения в течение ночи к тонкой эмульсии постепенно добавляли альгинат натрия при 2% мас. / Об..Затем смесь перемешивали при 1700 об / мин до полного перемешивания альгината натрия. Смесь переносили в перфорированный стакан и по каплям падали в 0,2 М раствор CaCl 2 (перемешивали при 500 об / мин с использованием магнитной мешалки) для быстрого образования шариков. После завершения формирования шариков шарики выдерживали для отверждения в 0,2 М CaCl 2 еще 30 мин. Гранулы отделяли с помощью муслиновой ткани и промывали дистиллированной водой для удаления избытка CaCl 2 , приставшего к гранулам.Промытые шарики сушили в сушильном шкафу при 50 ° C в течение 3–4 ч. Высушенные шарики хранили при температуре охлаждения для дальнейшего применения. Для покрытия шариков брали тугоплавкий жир (HMF) в соотношении 1 г HMF: 10 г шариков. К HMF добавляли ароматизатор в соотношении 1: 5 [Ванильный ароматизатор: (HMF)]. Для нанесения покрытия на шарики использовалась технология покрытия панелей. Высушенные шарики добавляли непосредственно к расплавленному и ароматизированному HMF и покрывали сковороду. После охлаждения гранулы покрывали ароматизированным HMF. Эти шарики были герметично упакованы и хранятся вдали от прямого света, чтобы проверить окисление жиров.Во время исследования эмульсии гомогенизатор Ultra Turrax [зонд S25 N-25G (IKA T-25, США)] также был использован для приготовления мелкодисперсной эмульсии вместо гомогенизатора высокого давления.

    Измерение размера частиц

    Размер частиц эмульсии анализировали методом динамического светорассеяния с использованием анализатора размера наночастиц (серия Zetasizer Nano, ZEN3600, Malvern Instruments, UK). Прибор содержит гелий-неоновый лазер мощностью 4 мВт, работающий на длине волны 633 нм. Измерение проводилось при угле обнаружения 173 ° и температуре 25 ° C.

    Общее содержание масла в инкапсулированных шариках

    Брали два грамма микрокапсулированных шариков (до покрытия HMF), измельчали ​​и экстрагировали рыбий жир с использованием аппарата Сокслета.

    Эффективность инкапсуляции

    Количество неинкапсулированного масла (свободного масла) измеряли для расчета эффективности инкапсуляции сразу после получения шариков. Для этого к точной навеске (2 г) порошка микрокапсул добавляли гексан (15 мл) с последующим встряхиванием смеси в течение 2 мин при комнатной температуре.Затем суспензию фильтровали через фильтровальную бумагу Whatman № 1 и остаток трижды промывали, пропуская каждый раз по 20 мл гексана. Затем раствор фильтрата, содержащий экстрагированное масло, переносили в печь при 70 ° C на 6 ч для полного испарения гексана. Количество масла на поверхности рассчитывалось по разнице в начальном и конечном весах контейнера для суспензии, а эффективность инкапсуляции рассчитывалась следующим образом (Тонон и др. 2011; Ван и др. 2011)

    Эффективность инкапсуляции = TotalOilContent-SurfaceOilContentTotalOilContent

    Цветовой анализ (L, a, b)

    Цветовой анализ выполняли с помощью Mini Scan ™ XE plus hunter color Lab, Вирджиния, США.

    Сенсорный анализ

    Сенсорный анализ был проведен девятью полуобученными экспертами из ICAR-Central Post Harvest Engineering and Technology. Возрастной диапазон составлял от 24 до 56 лет с участием мужчин и женщин. Образцы были идентифицированы с помощью алфавитного кода. Рейтинговый тест проводился по шкале от 1 до 5. Экспертам было предложено оценить образцы покрытых шариков на предмет запаха рыбьего жира по шкале интенсивности от 1 до 5. (Где 1. Отсутствие рыбного запаха 2. Сверхлегкий рыбный запах 3. Легкий рыбный запах 4.Слабый рыбный запах 5. Сильный рыбный запах.) Все образцы оценивали в закрытой камере при температуре 25 ± 2 ° C и освещении флуоресцентным светом.

    Статистический анализ

    Дисперсионный анализ (ANOVA) был выполнен с использованием программного обеспечения SPSS (версия 20) для оценки влияния трех различных параметров гомогенизатора высокого давления, а именно. EFR, давление и количество проходов, а также Ultra Turrax, а именно. EFR, об / мин и время от размера частиц. Среднее значение трехкратного анализа со стандартным отклонением было представлено в таблице и сравнивалось с использованием ANOVA.На основе критической разницы (КР) были выделены средние значения. Постфактум был использован Дункан. Сенсорный анализ сравнивали по рангу.

    Результаты и обсуждение

    Оптимизация приготовления эмульсии

    Была предпринята попытка эмульгирования рыбьего жира для получения эмульсии масло в воде с использованием различных эмульгаторов и натуральных эмульгаторов соевый лецитин был выбран для дальнейшего исследования. Клинкесорн и его сотрудники приготовили эмульсию с использованием тунцового масла и лецитина. Они сделали грубую эмульсию с помощью высокоскоростного смесителя и обработки ультразвуком в течение 2 минут при частоте 20 кГц, амплитуде 70% и скважности 0.5 (Клинкесорн и др., 2005).

    Эмульсии получали с UT и HP с использованием различных комбинаций и сравнивали по размеру частиц. В случае метода UT из таблицы видно, что средний размер частиц был ниже при EFR 1: 4 по сравнению с 1: 6, что указывает на то, что соотношение EFR 1: 4 было адекватным для обволакивания глобул рыбьего жира, образованных из-за сдвига в UT. . Более высокий процент масла в эмульсиях приводит к большему среднему диаметру капель при тех же условиях гомогенизации (Floury et al.2000). Размер частиц был меньше (248,5 нм), когда образец находился на UT в течение 12 минут, чем 8 минут. Кроме того, размер частиц был меньше, когда образцы подвергались 12000 об / мин, чем 10000 об / мин. Высокие обороты UT и более длительная продолжительность могли привести к более сильному сдвигу, что привело к уменьшению размера капель. Поскольку капли были меньше, общая площадь поверхности капли увеличивалась, и она была покрыта лецитином, эмульгатором. Следовательно, должно присутствовать достаточное количество эмульгатора, чтобы обволакивать вновь образованные капли, в противном случае эти маленькие капли объединяются друг с другом и образуют глобулы большего размера.Это может быть возможной причиной наличия капли большего размера в образцах с EFR 1: 6. Статистический анализ данных показал значительное влияние эмульгатора на средний размер частиц, в то время как другие параметры и эффект взаимодействия были незначительными, что указывает на то, что статистически частота вращения и время не оказывают какого-либо значительного влияния на средний размер частиц.

    Таблица 1

    Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсии, приготовленной с Ultra Turrax

    Соотношение эмульгатора Проходы гомогенизатора высокого давления Размер частиц (нм)
    Давление высокого -гомогенизатор давления
    10 Kpsi 15 Kpsi 20 Kpsi
    1: 4 (Лецитин: рыбий жир) 1-й проход 233.3 ± 13,0 a 226,2 ± 13,8 a 225,4 ± 10,7 a
    2-й проход 203,2 ± 7,2 b 214,8 ± 27,1 34 b b
    3-й проход 185,6 ± 6,5 c 183,8 ± 11,3 c 192,3 ± 23,2 c
    4-й проход 178 c.9 ± 1,7 c 191,8 ± 2,7 c
    1: 6 (лецитин: рыбий жир) 1-й проход 246,6 ± 11,8 a 251,5 ± 24,3 38,3 ± 10,6 a
    2-й проход 227,3 ± 8,1 b 214,9 ± 12,3 b 213,1 ± 7,6 b
    b
    9138 8,0 196.5 ± 10,5 c 200,3 ± 8,9 c
    4-й проход 201,3 ± 5,0 c 196,7 ± 17,1 c 216,6 ± 36,0 32 90 32 средний размер частиц и PDI влияют на физическую стабильность, растворимость, биологические характеристики, скорость высвобождения, мутность и химическую стабильность эмульсий (Tamjidi et al. 2013). Гомогенизация под высоким давлением дает более стабильные эмульсии, чем гомогенизация с высоким усилием сдвига (Trotta et al.2002). Исходя из этих соображений, для получения эмульсии был выбран метод HPH с наилучшим сочетанием давления и прохода, т.е. 15000 фунтов на квадратный дюйм и 4 прохода были выбраны, в которых были зарегистрированы глобулы рыбьего жира меньшего размера. Анализ размера частиц выбранной комбинации показал более низкие значения как для среднего размера частиц (163,6 нм), так и для PDI (0,157).

    Стандартизация метода производства альгинатных шариков, содержащих рыбий жир

    После оптимизации параметров процесса образования эмульсии, следующей задачей было оптимизировать процесс инкапсулирования наноэмульсии в матрицу из альгината с использованием системы альгинат натрия-хлорид кальция.В первой попытке альгинат натрия растворяли в уже образованной эмульсии, и шарики формировались путем экструзии по каплям в 0,2 М раствор хлорида кальция. Инкапсулированные шарики собирали и сушили. Видимый рыбий жир наблюдался на поверхности высушенных шариков, также ощущался запах рыбьего жира, который указывал на то, что рыбий жир выделялся из альгинатной матрицы. Снижение вязкости наблюдалось в растворе альгината натрия, содержащем рыбий жир. Из-за вышеупомянутого эффекта во время формирования шариков наблюдали образование хвостов.В растворе хлорида кальция были обнаружены мелкие капли рыбьего жира, оставшиеся после затвердевания шариков, и запах рыбьего жира ощущался от раствора хлорида кальция. Следовательно, для инкапсулирования рыбьего жира требуется дальнейшая модификация процесса.

    Капля альгината натрия превращается в гранулы альгината кальция путем замены иона натрия на ион кальция. При поперечном сшивании альгинатных цепей образуются гранулы альгината кальция и молекулы-мишени, захваченные в этой матрице. Когда шарики были высушены, объем шариков уменьшился из-за потери воды, и материал матрицы сузился.Поскольку капли рыбьего жира не связывались с альгинатом, они выходили и переносились на поверхность, когда шарики сдавливались из-за высыхания и сжатия связей. Следовательно, удерживание рыбьего жира на альгинатной связи было возможно только при наличии какой-либо связи между каплей рыбьего жира и альгинатной сеткой и / или при наличии некоторого наполнителя для уменьшения эффекта сжатия альгинатных связей. Молочные белковые продукты, а именно казеинат натрия и концентрат сывороточного белка, обладают превосходными эмульгирующими и обезвоживающими свойствами (Keogh and O’Kennedy 1999).Целью сывороточного протеина было эмульгирование и стабилизация вновь созданных границ раздела жир / вода. Поскольку сывороточные белки имеют глобулярную природу, любая адсорбция на границе раздела масло / вода приведет к разворачиванию молекулы белка, стабилизируя поверхность раздела, но денатурируя белок. Эксперименты проводились с использованием сывороточного протеина и сухого обезжиренного молока в качестве наполнителя на одном уровне (2%, выбранных из предварительных исследований). Было замечено, что образец, приготовленный из концентрата сывороточного белка, имел более низкое содержание поверхностного рыбьего жира и был более сыпучим, чем образец, приготовленный из сухого обезжиренного молока.Образцы проверяли на эффективность капсулирования, и она составила 89,3 ± 0,5%. Таким образом, концентрат сывороточного протеина был выбран для дальнейших исследований. Когда грубую эмульсию с раствором сывороточного протеина оставляли на ночь для гидратации, более сухие и сыпучие шарики получали, чем раньше. После внесения этих модификаций процесса была проведена процедура стандартизации во время следующего эксперимента по изготовлению гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир.

    Покрытие гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир

    Sinchaipanid и его сотрудники сообщили о нанесении покрытия из горячего расплава для контролируемого высвобождения гранул пропранолола гидрохлорида (Sinchaipanid et al.2004 г.). Гранулы пропранолола, содержащие 60% микрокристаллической целлюлозы, получали с использованием техники прямого гранулирования в роторном грануляторе с псевдоожиженным слоем. Гранулы с размером ячеек 16:18 собирали и покрывали расплавленным воском в различных соотношениях и толщинах в верхней распылительной установке с псевдоожиженным слоем. Гранулы альгината сывороточного протеина, содержащие рыбий жир (WAF), покрывали воском, а также жиром с высокой температурой плавления, используя технику нанесения покрытия на противень, в которой рассчитанное количество материала покрытия плавили и шарики непосредственно добавляли в поддон.Было обнаружено, что шарики, покрытые жиром с высокой температурой плавления, обладают большей текучестью, чем шарики, покрытые воском. Время затвердевания воска было намного быстрее, чем у высокоплавкого жира, поэтому покрытие трудно контролировать. Неровный налет и комки на шариках, покрытых воском. Кроме того, покрытые воском шарики имеют твердое покрытие и зернистую текстуру. С учетом всех наблюдений для дальнейшего применения был выбран тугоплавкий жир. Также было замечено, что соотношение материала покрытия и шариков (HMF: WAF) остается практически неизменным независимо от исходного количества материала покрытия.Оставшееся количество материала покрытия оставалось в поддоне как материал без покрытия. Таким образом, для нанесения покрытия было использовано на 10% больше HMF, так как некоторое количество жира также будет прилипать к сковороде.

    Ароматизатор WAF с покрытием

    Ароматизатор увеличивает вкусовые качества продукта. Рыбий жир был инкапсулирован, но все же присутствовал запах рыбьего жира и жира с высокой температурой плавления, что делало его менее приемлемым. Следовательно, жир с высоким содержанием кофеина при нанесении покрытия был ароматизирован двумя разными ароматизаторами, а именно. апельсин и ваниль в разной концентрации для улучшения вкусовых качеств и приемлемости.Идея маскировки аромата была взята из US 6235267 (Santi and Nelson 2001), в котором говорилось о маскировании вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Органолептическая оценка показала, что аромат ванили обладает более сильным маскирующим эффектом, чем аромат апельсина. Наконец, в высокоплавкий жир добавляли ванильный ароматизатор из расчета 20%.

    Цветовой анализ образцов

    Цветовой анализ приготовленных шариков показал значительную разницу в значениях L *, a * и b * для четырех типов шариков (таблица). Не было значительной разницы в значении L * гранул, покрытых HMF, независимо от того, содержат они рыбий жир или нет.Но разница была значительной в шариках без покрытия. Бусины с покрытием имеют HMF на своей внешней поверхности, поэтому они будут иметь почти такую ​​же легкость, в то время как легкость образцов без покрытия будет отличаться отражением из-за рыбьего жира. Все средние выборки значимо различались для значения *. В случае значения b * не было значительной разницы между гранулами, покрытыми HMF без рыбьего жира, и гранулами без покрытия HMF с рыбьим жиром, в то время как другие средства существенно различались. Вероятной причиной может быть совокупный эффект толщины покрытия, а также содержания рыбьего жира.

    Таблица 3

    Параметры цвета образцов, измеренные Hunter Color Lab и сенсорная оценка образцов на основе рыбного запаха по пятибалльной шкале оценок

    Образец Описание L * a * b * Среднее восприятие
    A Покрытие HMF и без рыбьего жира 47,09 ± 0,56 b 8,65 ± 0,09 c 32.20 ± 0,76 b 1,14 ± 0,44 a
    B Покрытие HMF и рыбьим жиром 48,22 ± 0,26 c 6,68 ± 0,19 34 a 2,43 ± 1,33 b
    C Покрытие без HMF и без рыбьего жира 43,51 ± 0,12 a 9,30 ± 0,17 d 34,69 1.29 ± 0,73 a
    D Покрытие без HMF и с рыбьим жиром 48,11 ± 0,59 c 7,04 ± 0,15 b 32,80 ± 0,22 38 1,30005 c

    Сенсорная оценка образцов альгинатных гранул

    Для сенсорной оценки четырех различных образцов гранул рыбьего жира была отобрана группа полуобразованных сенсорных экспертов. Таблица показывает, что меньше вкуса рыбьего жира ощущалось в шариках, содержащих рыбий жир, покрытых ароматизированным высокоплавким жиром (Образец B), чем у гранул без покрытия, содержащих рыбий жир без покрытия (Образец D).Приемлемость гранул увеличивалась за счет покрытия из высокоплавкого жира со вкусом ванили. Следовательно, можно сделать вывод, что использование ванильного ароматизатора может замаскировать вкус и улучшить общее восприятие.

    Заключение

    Рыбий жир, богатый источник ненасыщенных жирных кислот, склонен к окислению, что приводит к резкому запаху из-за продуктов окисления. Кроме того, рыбий жир имеет свой особый вкус, неприемлемый для большинства населения, что создает дополнительные проблемы при его использовании и применении.Следовательно, гранулы, содержащие рыбий жир, были составлены с использованием системы сывороточный белок-альгинат, и, кроме того, они были покрыты с использованием высокоплавкого жира и ароматизированы с использованием ванильного ароматизатора, чтобы сделать его более привлекательным. Сообщения о сенсорной оценке подтверждают, что они были сенсорно приемлемыми. Дальнейшая работа в этой области может быть продолжена с использованием другого материала для покрытия, техники инкапсуляции и исходного ингредиента для производства пероральных добавок, имеющих большую приемлемость и контролируемое высвобождение.

    Ссылки

    • Chen LY, Subirade M.Гранулированные микросферы альгинат-сывороточного протеина как пероральные средства доставки биоактивных соединений. Биоматериалы. 2006. 27: 4646–4654. DOI: 10.1016 / j.biomaterials.2006.04.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen LY, Subirade M. Влияние условий приготовления на свойства высвобождения питательных веществ гранулированными микросферами альгинат-сывороточного протеина. Eur J Pharm Biopharm. 2007. 65: 354–362. DOI: 10.1016 / j.ejpb.2006.10.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen Q, McGillivray D, Wen J, Zhong F, Quek SY.Совместная инкапсуляция рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола и лимоненом молочными белками. J Food Eng. 2013; 117: 505–512. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2013.01.011. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Floury J, Desrumaux A, Lardieres J. Влияние гомогенизации под высоким давлением на распределение капель по размеру и реологические свойства модельных эмульсий масло-в-воде. Innov Food Sci Emerg Technol. 2000; 1: 127–134. DOI: 10.1016 / S1466-8564 (00) 00012-6. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Hansen LT, Annan NT, Borza AD.Инкапсуляция в желатиновых микросферах, покрытых альгинатом, улучшает выживаемость пробиотика Bifidobacterium adolescentis 15703T во время воздействия моделируемых желудочно-кишечных условий. Food Res Int. 2008. 41: 184–193. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.001. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Джафари С.М., Ассадпур Э., Бхандари Б., Хе Ю. Инкапсуляция рыбьего жира с помощью наночастиц с помощью распылительной сушки. Food Res Int. 2008. 41: 172–183. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.002. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Keogh MK, O’Kennedy BT.Микрокапсулирование молочного жира с использованием сывороточных белков. Int Dairy J. 1999; 9: 657–663. DOI: 10.1016 / S0958-6946 (99) 00137-5. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Кикучи А., Кавабучи М., Ватанабе А., Сугихара М., Сакураи Ю., Окано Т. Влияние растворения геля Са2þ-альгината на высвобождение декстрана с разной молекулярной массой. J Control Release. 1999; 58: 21–28. DOI: 10.1016 / S0168-3659 (98) 00141-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Klinkesorn U, Sophanodora P, Chinachoti P, McClements DJ, Decker EA.Повышение окислительной стабильности жидких и сушеных эмульсий тунца в воде с помощью электростатического послойного осаждения. J. Agric Food Chem. 2005; 53: 4561–4566. DOI: 10,1021 / jf0479158. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Kralovec JA, Zhang S, Zhang W., Barrow CJ. Обзор прогресса в области ферментативной концентрации и микрокапсулирования масла, богатого омега-3, из рыбных и микробных источников. Food Chem. 2012; 131: 639–644. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2011.08.085. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Ли П.С., Йим С.Г., Чой Й, Ха ТВА, Ко С.Физиохимические свойства и поведение при пролонгированном высвобождении денатурированных хитозаном микрокапсул β-лактоглобулина для потенциальных пищевых продуктов. Food Chem. 2012; 134: 992–998. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2012.03.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • McClements DJ, Decker EA, Weiss J. Системы доставки липофильных биоактивных компонентов на основе эмульсии. J Food Sci. 2007. 72: 109–124. DOI: 10.1111 / j.1750-3841.2007.00507.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Цянь Ц., МакКлементс DJ.Образование наноэмульсий, стабилизированных модельными эмульгаторами пищевого качества с использованием гомогенизации под высоким давлением: факторы, влияющие на размер частиц. Пищевой Hydrocoll. 2011; 25: 1000–1008. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2010.09.017. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Santi PAD, Nelson DG (2001) Маскировка вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Патент № 6235267 (US5
    67139
    Соотношение эмульгатора Об / мин Ultra Turrax Размер частиц (нм)
    Время (в минутах) Ultra Turrax
    12 мин 8 мин
    1: 4 (лецитин: рыбий жир) 12000 248.5 ± 12,6 266,0 ± 30,4
    10,000 262,4 ± 35,1 277,8 ± 33,6
    1: 6 (Лецитин: Рыбий жир) 12000
    10,000 423,9 ± 161,6 511,4 ± 178,2

    То же исследование было проведено с методом HPH, в котором EFR оставался таким же, как и в предыдущем, но уровни давления гомогенизатора и уровни проходов были фиксированы вместо обороты и время, которое было сделано в UT.Как и в предыдущих исследованиях, размер частиц был меньше (182 нм) в EFR 1: 4, чем 1: 6 (таблица). Некоторые рабочие также сообщили об увеличении среднего диаметра жировых глобул с увеличением содержания масла для гомогенизации эмульсий масла в воде с помощью гомогенизатора APV Gaulin. Уменьшение диаметра капель наблюдалось с увеличением давления и количества проходов, что согласуется с предыдущими исследованиями (Qian and McClements 2011; Tan and Nakajima 2005; Tcholakova et al. 2003). Статистические данные показали, что влияние EFR и количества проходов очень существенно влияет на размер частиц.Это исследование также дополнило результаты предыдущего исследования EFR. Поэтому для образования эмульсии небольшого размера был необходим оптимальный уровень эмульгатора. Кроме того, по мере увеличения количества проходов в гомогенизаторе образец подвергался большему сдвигу, что приводило к гораздо меньшему размеру капли. Средний диаметр капель продолжал уменьшаться по мере того, как эмульсии пропускались через гомогенизатор все большее количество раз (Qian and McClements 2011), но дальнейшее уменьшение было довольно скромным. По данным Trotta et al.(2002), продолжительность обработки может повлиять на стабильность эмульсии. Опубликованные исследования показали, что количество проходов продукта через устройство влияет на средний размер частиц и распределение частиц по размерам. Статистический анализ показал, что капли, полученные после третьего и четвертого проходов, существенно не различались (таблица). Кроме того, более высокое давление и большее количество проходов привели к увеличению размера капель, что можно было наблюдать, когда образец с EFR 1: 6 прошел через HPH четыре раза при давлении 20 000 фунтов на квадратный дюйм.Было замечено, что повторение обработки или цикла приводило к уменьшению среднего размера частиц капли и сужению гранулометрического состава, после чего средний размер частиц и стандартное отклонение увеличивались по мере продолжения обработки, как указано выше. Это наблюдение согласуется с сообщениями, подтверждающими, что размер капель был результатом разрушения и коалесценции и что для систем, содержащих относительно высокий процент масла, повышение рабочего давления не всегда приводит к уменьшению размера капель эмульсии.Для мелкодисперсной эмульсии требовались оптимальное усилие сдвига и оптимальный эмульгатор. Оба исследования дали одинаковый результат об оптимальном уровне EFR 1: 4 для хорошей эмульсии. Когда и UT, и HPH сравнивали по размеру частиц, HPH давал гораздо более мелкие капли по сравнению с UT. Кроме того, PDI (индекс полидисперсности) эмульсии, полученной с помощью HPH, был довольно низким по сравнению с UT.

    Таблица 2

    Анализ размера частиц различных комбинаций эмульсий, полученных с помощью гомогенизатора высокого давления

    8) Бюро по патентам и товарным знакам США. Вашингтон, округ Колумбия,
  • Schmitt C, Turgeon SL. Белковые / полисахаридные комплексы и коацерваты в пищевых системах.Adv Colloid Interface Sci. 2011; 167: 63–70. DOI: 10.1016 / j.cis.2010.10.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Шахиди Ф., Чжун Ю. Окисление липидов и повышение устойчивости к окислению. Chem Soc Rev.2010; 39: 4067-4079. DOI: 10,1039 / b

    3m. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

  • Sinchaipanid N, Junyaprasert V, Mitrevej A. Нанесение термоплавкого покрытия для контролируемого высвобождения гранул гидрохлорида пропранолола. Пудра Технол. 2004. 141: 203–209. DOI: 10.1016 / j.powtec.2004.02.008. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Subirade M, Hebrard G, Hoffart V, Beyssac E, Cardot JM, Alric M. Покрытые оболочкой микрочастицы сывороточного протеина / альгината в качестве пероральных систем контролируемой доставки пробиотических дрожжей. J Microencapsul. 2010. 27: 292–302. DOI: 10.3109 / 026520404529. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тамджиди Ф., Шахеди М., Варшосаз Дж., Насирпур А. Наноструктурированные липидные носители (НЖК): потенциальная система доставки для биоактивных молекул пищи. Innov Food Sci Emerg Technol.2013; 19: 29–43. DOI: 10.1016 / j.ifset.2013.03.002. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Tan CP, Накадзима М. Нанодисперсии бета-каротина: получение, характеристика и оценка стабильности. Food Chem. 2005. 92: 661–671. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2004.08.044. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Чолакова С., Денков Н.Д., Сиджакова Д., Иванов И.Б., Кэмпбелл Б. Взаимосвязь между размером капли и адсорбцией белка при различных условиях эмульгирования. Ленгмюра. 2003; 19: 5640–5649. DOI: 10.1021 / la034411f.[CrossRef] [Google Scholar]
  • Tonon RV, Grosso CRF, Hubinger MD. Влияние состава эмульсии и температуры воздуха на входе на микрокапсулирование льняного масла методом распылительной сушки. Food Res Int. 2011; 44: 282–289. DOI: 10.1016 / j.foodres.2010.10.018. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Тротта М., Паттарино Ф., Игнони Т. Стабильность эмульсий лекарственное средство-носитель, содержащих смеси фосфатидилхолина. Eur J Pharm Biopharm. 2002; 53: 203–208. DOI: 10.1016 / S0939-6411 (01) 00230-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Ван Р., Тиан З., Чен Л.Новый процесс микрокапсулирования рыбьего жира с белком ячменя. Food Res Int. 2011; 44: 2735–2741. DOI: 10.1016 / j.foodres.2011.06.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Wichchukit S, Oztop MH, McCarthy MJ, McCarthy KL. Гранулы сывороточного протеина / альгината как носители биологически активного компонента. Пищевой Hydrocoll. 2013; 33: 66–73. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2013.02.013. [CrossRef] [Google Scholar]
  • Xu J, Zhao W, Ning Y, Bashari M, Wu F, Chen H, Yang N, Jin Z, Xu B, Zhang L, Xu X. Повышенная стабильность и контролируемое высвобождение ω- 3 / ω-6 полиненасыщенные жирные кислоты путем инкапсуляции весеннего декстрина.Carbohydr Polym. 2013; 92: 1633–1640. DOI: 10.1016 / j.carbpol.2012.11.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
  • Скользкие факты о рыбьем жире

    В последнее время рыбий жир стал очень популярной добавкой из-за его документально подтвержденных преимуществ для здоровья сердечно-сосудистой системы и глаз. Большая часть пользы для здоровья от употребления рыбьего жира связана с длинноцепочечными омега-3 жирными кислотами, эйкозапентаеновой кислотой (EPA) и докозагексаеновой кислотой (DHA). EPA и DHA имеют решающее значение для общего самочувствия, потому что они помогают модулировать воспалительную систему.

    Подсчитано, что средний американец потребляет от 100 до 200 мг омега-3 жирных кислот в день. 1-3 Люди не могут синтезировать омега-3 жирные кислоты естественным путем, поэтому диетическое потребление не требуется. 1,2

    Большая часть жирных кислот омега-3 поступает из источников альфа-линоленовой кислоты (ALA), таких как льняное масло. К сожалению, преобразование ALA в основные формы EPA и DHA очень неэффективно.4 Таким образом, потребление рыбы и рыбьего жира является наиболее эффективным способом достижения соответствующих уровней EPA и DHA в рационе.Несмотря на убедительные доказательства пользы для здоровья омега-3 из рыбьего жира, FDA официально не установило руководящих принципов в отношении рекомендуемой суточной нормы.

    За последние пять лет возникло несколько проблем, связанных со здоровьем, связанных с регулярным потреблением рыбы, включая употребление рыбы, пойманной в загрязненных ручьях, озерах и заливах. Прибрежные рыбы, питающиеся снизу, более восприимчивы к загрязнению химическими веществами и токсинами, чем рыбы, питающиеся при более высоких уровнях воды.Итак, открытая или пелагическая рыба является наиболее идеальной для употребления в пищу человеком.

    Из-за нескольких основных факторов, включая географическое положение, уровень дохода или нетрадиционные диетические предпочтения, частое потребление рыбы не является реальным вариантом для всех.

    К счастью, добавки с рыбьим жиром стали разумной альтернативой диетическому потреблению рыбы.

    Общие рекомендации
    Американская кардиологическая ассоциация (AHA) признает преимущества жирных кислот омега-3.AHA рекомендует: 5

    • Все взрослые едят рыбу (особенно жирную) не реже двух раз в неделю. Рыба является хорошим источником белка и отличается низким содержанием насыщенных жиров. Рыба, особенно жирные виды, такие как скумбрия, озерная форель, сельдь, сардины, тунец и лосось, содержат значительное количество ЭПК и ДГК.

    • Пациенты с подтвержденной ишемической болезнью сердца должны получать один грамм ЭПК и ДГК в день. Его можно получить в результате употребления жирной рыбы или капсул с омега-3 жирными кислотами.

    • Добавки EPA / DHA могут быть полезны пациентам с гипертриглицеридемией. Два-четыре грамма EPA / DHA в день могут снизить уровень триглицеридов человека на 20-40%.

    Просто помните, что пациенты, которые принимают более трех комбинированных граммов EPA и DHA в день, должны проконсультироваться с врачом о возможных побочных эффектах, таких как желудочно-кишечные расстройства.

    Основы рыбьего жира
    Рыбий жир может подвергаться дистилляции и пастеризации из-за потенциального загрязнения загрязнителями.Вот общий обзор процесса дистилляции: 6

    1. Сырой рыбий жир (много различных вариантов) заменяется этанолом.
    2. Затем эту смесь подвергают тепловой перегонке в вакууме для удаления загрязнений.
    3. Полученная жидкость содержит концентрированные молекулы омега-3 в упаковке этилового эфира.
    4. Затем жидкость обрабатывают для более точного моделирования состава натуральных длинноцепочечных омега-3 жирных кислот.

    В процессе дистилляции сырой рыбий жир расщепляется, очищается, а затем переформулируется в два основных продукта — этиловый эфир (ЭЭ) и триглицерид (ТГ).Организм распознает оба продукта и использует определенные ферменты для создания усвояемой формы жирной кислоты омега-3. Элементарная цель процесса дистилляции — создать добавку, которая демонстрирует:

    • Безопасность и переносимость.
    • Высокие концентрации EPA и DHA с минимальными побочными эффектами.
    • Оптимальная биодоступность.
    • Общая стабильность.
    • Доступность.

    Триглицериды и этиловые эфиры
    • Триглицериды.ТГ — это молекулярная форма пищевых жиров, которые содержатся в большинстве пищевых продуктов. Фактически, жиры омега-3, содержащиеся во всех видах рыб, являются исключительно ТГ. 7 ТГ состоят из трех жирных кислот, связанных с молекулой глицерина. Поскольку жирные кислоты быстро окисляются или очень нестабильны, основная цепь глицерина помогает стабилизировать молекулы жира и предотвращать распад и окисление. 8

    • Этиловые эфиры. ЭЭ получают синтетическим путем путем реакции жирных кислот с этанолом с образованием альтернативной формы жира.9 Эти альтернативные жиры образуются при переработке некоторых рыбьих жиров. В этом случае природные жирные кислоты отщепляются от своей глицериновой основы и связываются с молекулой этанола — процесс, известный как этерификация. 10 После этерификации жиры содержат более высокие концентрации EPA и DHA, чем до обработки. Полученный полусинтетический продукт ЭЭ затем обычно продается как концентрат омега-3 рыбьего жира. 9

    Однако для эффективного создания рыбьего жира TG дистиллированные ЭЭ должны быть повторно этерифицированы, чтобы удалить основу этанола и восстановить основу глицерина, что увеличивает стоимость производства.К счастью, в большинстве случаев производители указывают, являются ли их капсулы с рыбьим жиром на основе TG или EE.

    Метаболизм жирных кислот
    Итак, какая форма рыбьего жира обеспечивает самый высокий уровень биодоступности? Чтобы ответить на этот вопрос, мы должны сначала оценить физиологию абсорбции и метаболизма ТГ и ЭЭ.

    • Рыбий жир ТГ. Реэтерифицированный TG (rTG) рыбий жир переваривается в тонком кишечнике за счет эмульгирующего действия солей желчных кислот и гидролитической активности липазы поджелудочной железы.В результате этого процесса в кишечной жидкости остаются две жирные кислоты и моноглицерид, которые абсорбируются в сочетании с желчными кислотами. Жирные кислоты и моноглицериды образуют комплексы с солями желчных кислот, называемые мицеллами. Поглощенные энтероцитами (клетками кишечника) тонкого кишечника, мицеллы упакованы холестерином и липопротеинами с образованием хиломикронов. Затем хиломикроны перемещаются в лимфатическую систему, где они попадают в кровоток и передаются в печень. Из печени хиломикроны превращаются в липопротеины очень низкой плотности (ЛПОНП) и липопротеины низкой плотности (ЛПНП) для доставки тканей через систему кровообращения. 7,11,12

    • Рыбий жир EE. Переваривание рыбьего жира EE немного отличается, поскольку у него отсутствует глицериновая основа. 7 В тонком кишечнике липаза поджелудочной железы гидролизует жирные кислоты из основной цепи этанола; однако эта связь жирная кислота-этанол до 50 раз более устойчива к липазе поджелудочной железы, чем связь кислота-глицерин, обнаруженная в рыбьем жире rTG. В результате человеческий метаболизм EE рыбьего жира несколько неэффективен. 7,13

    При метаболизме EE рыбий жир производит свободные жирные кислоты (FFA), а также этанол. Жирные кислоты поглощаются энтероцитами и должны снова превращаться в триглицериды, чтобы эффективно транспортироваться в крови. Таким образом, рыбий жир EE требует субстрата моноглицерида из другого природного источника, тогда как форма rTG содержит свой собственный субстрат.

    Исследование биодоступности
    В многочисленных исследованиях оценивалась абсорбция и биодоступность как ТГ, так и ЭЭ рыбьего жира путем измерения количества ЭПК и ДГК в плазме крови после приема внутрь.Многие из этих исследований дали противоречивую, несколько противоречивую информацию.

    Два исследования, опубликованные в начале 1990-х годов, показали, что скорости абсорбции EPA и DHA из природных источников TG и EE рыбьего жира практически идентичны. 14,15 Затем, в 1993 году, аналогичное исследование показало, что абсорбция EPA и DHA из рыбьего жира EE была сопоставима с абсорбцией из природного триглицерида; однако варианты TG обеспечивали лучшую биодоступность при более низкой концентрации жирных кислот. 16

    Более интенсивное исследование, опубликованное в 1990 году, представило противоречивые данные рандомизированного тройного перекрестного исследования, в котором изучалась биодоступность EPA и DHA из TG рыбьего жира, EE рыбьего жира и FFA. 17 По сравнению с формой TG, средняя относительная биодоступность EPA / DHA составила 186% / 136% от свободных жирных кислот и 40% / 48% от EE. По сравнению с формой TG максимальные уровни в плазме были на 50% выше для свободных жирных кислот и на 50% ниже для EE.

    Кроме того, данные аналогичного исследования, опубликованного в 2003 году, подтвердили, что EPA и DHA, абсорбированные из rTG лососевого жира, более эффективно включаются в липиды плазмы, чем EPA и DHA из капсул с рыбьим жиром EE. 18 В целом, оба исследования показали, что рыбий жир TG продемонстрировал почти вдвое большую биодоступность, чем рыбий жир EE. 17,18

    В крупном двойном слепом рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании, опубликованном в 1995 г., оценивалась биодоступность пяти наиболее распространенных концентратов рыбьего жира — rTG, EE, FFA, рыбьего жира (FBO) и жира печени трески (CLO) .19 В этом исследовании 72 здоровых субъекта получали ежедневные дозы одного из пяти препаратов рыбьего жира или контрольной добавки кукурузного масла в течение двух недель.Исследователи подсчитали, что все субъекты получали в среднем 3,34 г EPA и DHA в день. (См. «Статистика дозировки и состава пяти концентратов рыбьего жира» ниже.)

    Пациенты были обследованы утром после ночного голодания как на исходном уровне, так и через две недели наблюдения.

    В этих условиях тестирования натощак концентрация EPA + DHA была самой высокой в ​​группе rTG и самой низкой в ​​контрольной группе кукурузного масла.Результаты показали, что нескорректированная средняя относительная биодоступность EPA + DHA составляла 73% от EE, 91% от FFA и 124% от rTG. После корректировки факторов дозировки средняя относительная биодоступность составила 76% для EE, 86% для FFA и 134% для rTG.

    Эти результаты показывают, что абсорбция EPA + DHA из rTG в 1,763 раза выше, чем из EE. Что еще более интересно, rTG показал себя лучше, чем естественный TG из добавок FBO и CLO. 19

    Рекомендации по оптимальному поглощению
    Другая проблема биодоступности связана с тем, как и когда употребляется рыбий жир.Например, одно исследование показало, что только 20% доступных EPA и DHA абсорбируются из добавок EE с рыбьим жиром — если они не принимаются с пищей с высоким содержанием жиров (еда с высоким содержанием жира увеличивает абсорбцию до 60%). 18

    Аналогичным образом, рыбий жир rTG демонстрирует различную скорость всасывания при употреблении с пищей с высоким содержанием жира. В одном исследовании абсорбция EPA из добавок rTG увеличилась с базового уровня 69% до 90% при употреблении с пищей с высоким содержанием жиров; На всасывание DHA это не повлияло. 20

    Хотя это убедительное исследование, не рекомендуется регулярно употреблять жирную пищу просто для увеличения усвоения омега-3.Тем не менее, эти исследования подчеркивают важность приема добавки с рыбьим жиром во время еды, а не индивидуально между приемами пищи.

    Стабильность продукта
    Имейте в виду, что весь рыбий жир особенно подвержен окислению, что снижает стабильность и биодоступность продукта. Из-за этого витамин Е часто добавляют в качестве натурального консерванта. 21

    Обычно рыбий жир хранится шесть месяцев. Фактически, чрезмерно рыбный вкус — один из признаков возрастного окисления.Иногда этот рыбный вкус может маскировать энтеросолюбильное покрытие.

    Согласно одному отчету, DHA из рыбьего жира EE была намного менее стабильной, чем DHA из рыбьего жира rTG. 22 В частности, исследование показало, что DHA из рыбьего жира EE была более реактивной и быстро окислялась, предполагая, что рыбий жир EE с истекшим сроком годности может более легко производить вредные продукты окисления. 22

    В другом исследовании сравнивалась стабильность DHA в фосфолипидах, триацилглицерине и рыбьем жире EE.После 10-недельного периода окисления DHA из рыбьего жира EE разлагалась на 33% быстрее, чем DHA из двух других рыбьих жиров. 23

    Экономика добавок рыбьего жира
    Многие врачи и пациенты поднимали вопрос о том, что рыбий жир rTG дороже, чем рыбий жир EE. Это может быть связано с дополнительными затратами, связанными с повторной этерификацией EE рыбьего жира обратно в TG. Хотя это может быть правдой, мы должны учитывать абсолютные затраты, потому что рыбий жир rTG усваивается значительно лучше, чем рыбий жир EE.

    Предположим, что мы хотим, чтобы пациент принял 1000 мг EPA. Если мы воспользуемся ранее изложенной статистикой абсорбции у человека, этот пациент испытает 134% биодоступности из рыбьего жира rTG и 76% биодоступности из рыбьего жира EE. Другими словами, рыбий жир rTG имеет коэффициент биодоступности в 1,7 раза выше, чем рыбий жир EE.

    Итак, нашему пациенту на самом деле пришлось бы потреблять 1700 мг EPA из добавок EE с рыбьим жиром, чтобы достичь целевого уровня потребления в 1000 мг.

    С экономической точки зрения вы можете легко сравнить цены на несколько имеющихся в продаже продуктов из рыбьего жира. (См. «Стоимость 1000 мг EPA с коэффициентом биодоступности 1,7» и «Стоимость 1000 мг EPA без использования фактора биодоступности 1,7», слева.)

    С поправкой на коэффициент биодоступности 1,7 нет большой разницы в стоимости между продуктами 1, 3 и 4. Без сомнения, наиболее экономичной добавкой в ​​обеих оценках является продукт 2 — оптимальные уровни абсорбции при минимальных общих затратах.

    Итог — с поправкой на коэффициент биодоступности или без нее, вы должны взять на себя определенную роль в определении наивысшего уровня биодоступности по наиболее доступной цене для ваших пациентов.

    Незаменимые жирные кислоты, такие как EPA и DHA, имеют решающее значение для поддержания здоровья. Однако в большинстве диет крайне мало длинноцепочечных жирных кислот омега-3. Таким образом, многие люди могут получить огромную пользу от употребления большего количества продуктов, богатых омега-3, или приема добавок с рыбьим жиром в капсулах.

    Просто помните, что не все добавки с рыбьим жиром одинаковы. По большому счету, литература предполагает, что природные TG или rTG рыбы обеспечивают более высокие концентрации EPA и DHA, чем EE рыбий жир.Однако при выборе добавки с рыбьим жиром также следует учитывать ряд других факторов, таких как безопасность пациента, стабильность продукта и доступность.

    Доктор Александр — старший директор по развитию образования в Optovue, Inc., офтальмологической компании, занимающейся цифровым воображением. Он не является оплачиваемым консультантом каких-либо фармацевтических или нутрицевтических компаний.

    1. Эрвин РБ, Райт Дж. Д., Ван С. Ю., Кеннеди-Стивенсон Дж.Потребление жиров и жирных кислот с пищей для населения США: 1999-2000 гг. Рекламные данные. 2004 8 ноября; (348): 1-6.
    2. Wang CM, Lichtenstein A, Balk E, et al. Отчет о доказательствах / оценка технологии № 94. Влияние омега-3 жирных кислот на сердечно-сосудистые заболевания. Роквилл, штат Мэриленд: Агентство медицинских исследований и качества; 2004 г.
    3. Совет по пищевым продуктам и питанию, Институт медицины. Пищевые жиры: общее количество жиров и жирных кислот: рекомендуемые нормы потребления энергии, углеводов, клетчатки, жиров, жирных кислот, холестерина, белков и аминокислот.Вашингтон: Национальная академия прессы; 2002: 422-541.
    4. Акман Р.Г. Всасывание рыбьего жира и концентратов. Липиды. 1992 ноябрь; 27 (11): 858-62.
    5. Крис-Этертон П.М., Харрис В.С., Аппель Л.Дж. Омега-3 жирные кислоты и сердечно-сосудистые заболевания: новые рекомендации Американской кардиологической ассоциации. Артериосклер Thromb Vasc Biol. 2003 1 февраля; 23 (2): 151-2.
    6. Дерберг Дж., Банг Х.О., Стофферсен Э. и др. Эйкозапентаеновая кислота и профилактика тромбозов и атеросклероза? Ланцет. 15 июля 1978 г .; 2 (8081): 117-9.
    7. Карлье Х, Бернар А., Казелли С. Переваривание и абсорбция полиненасыщенных жирных кислот. Reprod Nutr Dev. 1991; 31 (5): 475-500.
    8. Сегура Р. Получение метиловых эфиров жирных кислот прямой реэтерификацией липидов хлоридом алюминия и метанолом. J Chromatogr. 1988 27 мая; 441 (1): 99-113.
    9. Сагир М., Вернер Дж., Лапосата М. Быстрый гидролиз этиловых эфиров жирных кислот, токсичных неокислительных метаболитов этанола in vivo. Am J Physiol. 1997 июл; 273 (1, часть 1): G184-90.
    10.Могельсон С., Пипер С.Дж., Ланге Л.Г. Термодинамические основы для синтазы этилового эфира жирных кислот, катализируемой этерификацией свободной жирной кислоты этанолом и накоплением этиловых эфиров жирных кислот. Биохимия. 1984, 28 августа; 23 (18): 4082-7.
    11. Favé G, Coste TC, Armand M. Физико-химические свойства липидов: новые стратегии управления биодоступностью жирных кислот. Клетка Мол Биол (Шум-ле-Гран). 2004 ноя; 50 (7): 815-31.
    12. Lambert MS, Botham KM, Mayes PA. Модификация жирнокислотного состава пищевых масел и жиров при включении в хиломикроны и остатки хиломикронов.Br J Nutr 1997; 76: 435-445.
    13. Ян Л. Я., Куксис А., Майер Дж. Дж. Липолиз триацилглицеринов менхаденового масла и соответствующих алкиловых эфиров жирных кислот липазой поджелудочной железы in vitro: повторное исследование. Br J Nutr. 1996 сентябрь; 76 (3): 435-45.
    14. Luley C, Wieland H, Gruwald J. Биодоступность омега-3 жирных кислот: препараты этилового эфира так же подходят, как и препараты триглицеридов. Акт Ernaehr-Med 1990; 15: 122-125.
    15. Nordøy A, Barstad L, Connor WE, Hatcher L. Абсорбция n-3 эйкозапентаеновой и докозагексаеновой кислот в виде этиловых эфиров и триглицеридов человеком.Am J Clin Nutr. 1991 Май; 53 (5): 1185-90.
    16. Krokan HE, Bjerve KS, Mørk E. Энтеральная биодоступность эйкозапентаеновой кислоты и докозагексаеновой кислоты так же хороша как из этиловых эфиров, так и из сложных эфиров глицерина, несмотря на более низкие скорости гидролиза липазой поджелудочной железы in vitro. Biochim Biophys Acta. 1993 20 мая; 1168 (1): 59-67.
    17. Beckermann B, Beneke M, Seitz I. Сравнительная биодоступность эйкозапентаеновой кислоты и докозагексаеновой кислоты из триглицеридов, свободных жирных кислот и этиловых эфиров у добровольцев.Arzneimittelforschung. 1990 июн; 40 (6): 700-4.
    18. Visioli F, Rise P, Barassi MC и др., Диетическое потребление рыбы по сравнению с составами приводит к более высоким концентрациям n-3 жирных кислот в плазме. Липиды. 2003 Апрель; 38 (4): 415-8.
    19. Dyerberg J, Madsen P, Moller J, et al. Биодоступность составов n-3 жирных кислот. В: N-3 жирные кислоты: профилактика и лечение сосудистых заболеваний. Лондон: Bi & Gi Publishers; 1995: 217-26.
    20. Лоусон Л.Д., Хьюз Б.Г. Абсорбция эйкозапентаеновой кислоты и докозагексаеновой кислоты из триацилглицеринов рыбьего жира или этиловых эфиров рыбьего жира при одновременном приеме пищи с высоким содержанием жира.Biochem Biophys Res Commun. 15 апреля 1988 г .; 152 (1): 328-35.
    21. Валк Е.Е., Хорнстра Г. Взаимосвязь между потребностью в витамине Е и потреблением полиненасыщенных жирных кислот у человека: обзор. Int J Vitam Nutr Res. 2000 Март; 70 (2): 31-42.
    22. Yoshii H, Furuta T., Siga H, et al. Кинетический анализ автоокисления этилового эфира докозагексаеновой кислоты и триглицерида докозагексаеновой кислоты с кислородным датчиком. Biosci Biotechnol Biochem. 2002 Апрель; 66 (4): 749-53.
    23. Song JH, Inoue Y, Miyazawa T. Окислительная стабильность масел, содержащих докозагексаеновую кислоту, в форме фосфолипидов, триацилглицеринов и этиловых эфиров.Biosci Biotechnol Biochem. 1997 декабрь; 61 (12): 2085-8.

    Сравнительный анализ EPA и DHA в пищевых капсулах с рыбьим жиром с помощью ГХ-МС | Липиды в здоровье и болезнях

    Материалы

    Источники образцов капсул с рыбьим жиром перечислены в таблице 1. Соответствующие ваучерные образцы были депонированы в Школе китайской медицины при Баптистском университете Гонконга.

    Реагенты и химикаты

    Стандартные соединения метилового эфира эйкозапентаеновой кислоты, метилового эфира докозагексаеновой кислоты и 37-компонентной смеси компонентов Supelco® были закуплены у Sigma-Aldrich (St.Луис, Миссури, США). Чистота этих химических стандартов составила более 98% по данным ГХ-МС.

    N -гексан использовали в качестве растворителя в анализе ГХ-МС, который был приобретен у RCI Lab-Scan Limited (Бангкок, Таиланд). Гидроксид калия и хлорид натрия аналитической чистоты были закуплены у Uni-Chem (Шанхай, Китай). Раствор метанольного комплекса трифторида бора (13-15% BF 3 на основе), используемый для проведения метилэтерификации, был приобретен у Sigma-Aldrich (Сент-Луис, Миссури, США).Воду очищали с использованием водной системы Milli-Q (Millipore; Бедфорд, Массачусетс, США).

    Приборы и условия для ГХ-МС

    Система ГХ-МС Shimadzu QP2010 (Киото, Япония) использовалась для качественного и количественного анализа рыбьего жира. Для разделения образцов использовали капиллярную колонку высокого разрешения DB-5 мс (Dikma Technologies. Толщина: 0,25 мкм, длина: 30 м, диаметр: 0,25 мм).

    Для программирования температуры печь поддерживали при 80 ° C в течение одной минуты, а затем повышали со скоростью 10 ° C в минуту до 250 ° C, затем скорость снижали до 8 ° C в минуту до 280 ° C. достигнуто и поддерживается в течение 5 мин.Разделенная инъекция проводилась с коэффициентом разделения 10: 1, а в качестве газа-носителя использовался гелий со скоростью 0,8 мл / мин с объемом инъекции 1 мкл. Масс-спектрометр работал в режиме электронного удара (ЭУ). Давление перед колонной: 70 кПа. Температура впрыска: 250 ° C. Источник ионов: EI (200 ° C). Температура интерфейса: 280 ° C. Энергия электронов: 70 эВ. Задержка растворителя: 5,5 мин. Для качественного анализа использовался режим полного сканирования, диапазон сканирования составлял 40–400 m / z. Для количественного анализа использовали селективный ионный режим, и m / z 79 был выбран в качестве ионного фрагмента EPA и DHA.

    Приготовление стандартных растворов и растворов образцов

    Исходные растворы метилового эфира EPA (5 мг / л) и метилового эфира DHA (2,5 мг / л) готовили в n -гексане и хранили в холодильнике. Рабочие растворы готовили путем соответствующего разбавления исходных растворов н -гексаном, и конечные концентрации составляли 1, 2,5, 5, 10, 20, 25 и 30 мг / л. DHA получали в серийных разведениях 2, 5, 10, 20, 40, 50 и 60 мг / л. Для анализа методом ГХ-МС вводили калибровочный стандартный раствор (1 мкл).

    Приготовление растворов образцов выполняли, как описано ранее, с изменениями [19]. Образцы получали из капсул рыбьего жира путем прокалывания капсулы игольчатым шприцем. Каждый образец приблизительно 60 мг был точно взвешен и помещен в центрифужную пробирку с притертой пробкой. Добавляли 3 мл метанольного раствора гидроксида калия (0,5 М). Содержимое тщательно перемешивали, затем трубку заполняли азотом, нагревали на водяной бане при 60 ° C, встряхивали трижды в течение 20 мин.Когда масляные капли полностью исчезли и раствор стал прозрачным, добавляли 3 мл раствора метанольного комплекса трифторида бора и смесь охлаждали. Затем каждую пробирку наполняли азотом и помещали в водяную баню при 60 ° C на 5 мин. Добавляли 2 мл насыщенного раствора хлорида натрия и 2 мл n -гексана и хорошо перемешивали. После центрифугирования (4000 об / мин) в течение 10 минут супернатант был удален для использования в качестве раствора образца. Разбавление надосадочной жидкости необходимо в случае, если ее концентрация выходит за пределы линейного диапазона.Аликвоту 1 мкл супернатанта вводили для анализа ГХ-МС.

    Проверка анализа и определение образца

    Линейность для стандартов определялась по пяти точкам данных в диапазоне концентраций рабочих растворов. Прецизионность оценивалась шестью инъекциями раствора образца (партия 1) в течение одного дня. Повторяемость оценивалась во внутри-дневных и межсуточных анализах образца FO1 рыбьего жира. Тест стабильности был проведен путем анализа раствора образца (партия 1) в течение 24 часов.Относительное стандартное отклонение (RSD) было принято как меры точности, повторяемости и стабильности. Извлечение всех количественно определенных компонентов определяли по образцам с различными уровнями концентрации с использованием смеси стандартов с 50, 100 и 200% количественно определенных уровней компонентов в образцах. Все образцы рыбьего жира были проанализированы с использованием этого метода, и коэффициент преобразования кислоты / сложного эфира был установлен на 0,96.

    Сравнение влияния рыбьего жира и капсул с рыбьим жиром на содержание n – 3 жирных кислот в клетках крови и фосфолипидов плазмы | Американский журнал клинического питания

    РЕФЕРАТ

    Предпосылки: n – 3 Жирные кислоты (ЖК) оказались полезными для здоровья сердечно-сосудистой системы.Являются ли n – 3 ЖК из жирной рыбы, потребляемой еженедельно, или из капсул рыбьего жира, принимаемых ежедневно, одинаково биодоступными, не ясно.

    Цель: Целью данного исследования было сравнить скорость и степень обогащения мембран клеток крови [т.е. эритроцитов (эритроцитов)] и фосфолипидов плазмы n – 3 ЖК из этих двух источников.

    Дизайн: Здоровые женщины-добровольцы в пременопаузе были случайным образом распределены для потребления в среднем 485 мг эйкозапентаеновой (EPA) и докозагексаеновой (DHA) кислот либо из 2 порций жирной рыбы (например, лосося и тунца) в неделю, либо из 1-2 капсулы в день.

    Результаты: Через 16 недель EPA + DHA в эритроцитах в группе рыб ( n = 11) увеличилось с 4,0 ± 0,6% от общего количества ЖК до 6,2 ± 1,4%, тогда как оно увеличилось с 4,3 ± 1,0% до 6,2 ± 1,4% в группе капсул ( P <0,0001 для обоих; NS для группового эффекта). Аналогичные результаты наблюдались в отношении фосфолипидов плазмы. ЭПК + ДГК стабилизировались в последнем через 4 недели, но продолжали расти до 16 недели в эритроцитах. EPA в эритроцитах увеличивалось значительно ( P = 0,01) быстрее в группе рыб, чем в группе, получавшей капсулы, в течение первых 4 недель, но в дальнейшем показатели существенно не различались между группами.Общая дисперсия FA была меньше в эритроцитах, чем в фосфолипидах плазмы ( P = 0,04).

    Заключение: Эти результаты показывают, что потребление равных количеств EPA и DHA из жирной рыбы еженедельно или из капсул рыбьего жира на ежедневной основе одинаково эффективно для обогащения липидов крови n – 3 ЖК.

    ВВЕДЕНИЕ

    Большое количество длинноцепочечных n – 3 жирных кислот (ЖК), эйкозапентаеновой кислоты (ЭПК) и докозагексаеновой кислоты (ДГК) рекомендовано различными научными и регулирующими органами для снижения риска развития ишемической болезни сердца (ИБС) среди населения. (1).Американская кардиологическая ассоциация разделила свои рекомендации на 3 категории: лица без известной ИБС, пациенты с ИБС и пациенты с повышенными концентрациями триацилглицерина в сыворотке (2). Рекомендуемая доза для лиц в этих категориях составляет, соответственно, ≥2 рыбной муки в неделю (предпочтительно жирной рыбы), ≈1 г EPA + DHA / день (из жирной рыбы или капсул) и 2–4 г EPA + DHA / г из капсул. Предположение об эквивалентности жирной рыбы и капсул с рыбьим жиром является неотъемлемой частью этих рекомендаций, и, тем не менее, мало исследований изучали, одинаково ли биодоступны n – 3 ЖК из этих двух очень разных матриц.В пилотном исследовании с участием 4-8 добровольцев, которые принимали добавки либо с лососем, либо с рыбьим жиром, Visioli et al (3) обнаружили аналогичное повышение уровня фосфолипидов в сыворотке крови (на мг потребляемого EPA) из любого источника, но в 3 раза большее увеличение уровня концентрации DHA в сыворотке, когда DHA поступала из лосося, чем когда она поступала из капсул с рыбьим жиром. Это исследование было небольшим и ретроспективным; кроме того, потребление EPA и DHA из этих двух источников не было сопоставлено, и исследование не было рандомизированным. В более крупном исследовании сравнивалось влияние употребления в пищу лосося и жира печени трески на n – 3 ЖК в сыворотке крови; было установлено, что первое было более эффективным транспортным средством (4).Однако ни в одном из этих исследований не было проспективно сопоставлено потребление EPA и DHA. В настоящем исследовании мы стремились сравнить влияние эквивалентного, релевантного для питания потребления морских n – 3 ЖК из жирной рыбы, принимаемой 2 раза в неделю, и ежедневного приема капсул с рыбьим жиром на содержание EPA и DHA в мембранах клеток крови [ (т.е. эритроциты, эритроциты или индекс омега-3, предлагаемый маркер риска сердечно-сосудистой смертности (5)] и фракции фосфолипидов плазмы (PPL). Мы также сравнили переносимость каждого подхода.

    ПРЕДМЕТЫ И МЕТОДЫ

    Субъекты

    Были набраны женщины в возрасте от 21 до 49 лет, преклимактерические, не беременные и не кормящие грудью, с индексом массы тела (в кг / м 2 ) <30. Исключение составляли желудочно-кишечные расстройства, которые могли помешать всасыванию жиров, намерению похудеть, потреблению> 2 алкогольных напитков в день и регулярному (> 2 раза в месяц) потреблению тунца или лосося с добавлением рыбьего жира или капсул с льняным маслом.

    Письменное информированное согласие было получено от всех участников. Протокол был одобрен Наблюдательным советом больницы Святого Луки.

    Дизайн исследования

    После отбора для участия в испытании женщины были случайным образом распределены либо в группу рыб ( n = 11), либо в группу капсул ( n = 12). Участникам первой группы было предложено каждые 2 недели съедать три банки по 171 г (6 унций) тунца альбакора (StarKist; Del Monte Foods, Сан-Франциско, Калифорния) и одну 171 г филе норвежского атлантического лосося ( American Seafood International, Нью-Бедфорд, Массачусетс).Банки тунца и замороженного филе лосося были предоставлены (вместе с рецептами) для домашнего потребления. Рыбу можно было съесть более одного раза, но все порции нужно было съесть в течение 24 часов. Тунец и лосось нельзя есть в один день. Была подчеркнута важность полного потребления, но прямой мониторинг не проводился.

    Этим женщинам, случайным образом отнесенным к группе капсул, было предложено принимать 17 капсул n – 3 FA (Omega-3; CardioTabs, Канзас-Сити, Миссури) со скоростью 1-2 раза в день в соответствии с предоставленным графиком.Эта конкретная добавка с n – 3 ЖК была выбрана потому, что ее состав ЖК более отражает состав лосося и тунца (т.е. он богат DHA), чем состав большинства добавок, которые обычно богаты EPA.

    Чтобы определить количество назначаемых капсул, мы проанализировали 3 капсулы, 3 филе лосося и 3 банки тунца альбакора — каждую в трех экземплярах. Для капсул отбирали аликвоту масла и взвешивали. Добавляли внутренний стандарт (17: 0), образец метилировали и анализировали с помощью газовой хроматографии (ГХ), как описано ниже.Что касается рыбы, полностью приготовленное филе лосося и содержимое всей банки тунца альбакора взвешивали и гомогенизировали, и 3 аликвоты экстрагировали в соответствии с методом Блая и Дайера (6). В среднем тунец альбакора содержал 185 ± 29 мг EPA и 1010 ± 150 мг DHA (1195 мг EPA + DHA) на банку. Лосось в среднем содержал 777 ± 222 мг EPA и 2429 ± 797 мг DHA на филе. Соответственно, 3 банки тунца альбакора и одно филе лосося содержали 1333 мг ЭПК и 5460 мг ДГК в течение 2 недель, что в среднем составляет 485 мг ЭПК + ДГК (95 мг + 390 мг соответственно).Каждая капсула содержала 86 ± 2 мг EPA и 311 ± 12 мг DHA. Семнадцать капсул, принимаемых в течение 2 недель, в среднем обеспечивали 482 мг EPA + DHA / день (104 мг + 378 мг, соответственно). Среднее количество линолевой кислоты и арахидоновой кислоты (АК), обеспечиваемое рыбой и капсулами, составляло 22 и 44 мг / день и 8 и 8 мг / день соответственно. Продолжительность исследования составляла 16 недель, визиты в клинику планировались каждые 2 недели.

    Переносимость рыбы и капсул с рыбьим жиром сравнивалась с помощью анкеты.В конце исследования испытуемым задавали 3 вопроса: 1) Испытывали ли вы какое-либо рыбное послевкусие (например, «отрыжку») во время исследования? 2) Если да, то насколько часто была «отрыжка»? 3) Если да, то насколько они были неприятными?

    Анализ липидов и липопротеинов

    Для измерения липидов и липопротеинов плазмы натощак кровь брали после голодания ≥10 ч в пробирки, содержащие 1 мг ЭДТА / мл. Концентрации триацилглицерина и холестерина в цельной плазме измеряли ферментативно (холестерин / HP; Roche Diagnostics, Индианаполис, штат Индиана) и с использованием реагента триацилглицерина (GPO-Trinder; Bayer Diagnostics, Tarrytown, NY) на анализаторе Cobas Fara (Roche Analytic Instruments Inc., Nutley, NJ) в соответствии с инструкциями производителя.Холестерин ЛПВП в плазме измеряли после преципитации липопротеинов, содержащих аполипопротеин B (7). Концентрации холестерина ЛПНП рассчитывали с использованием уравнения Фридевальда (8). Если концентрация триацилглицерина была> 400 мг / дл (как было обнаружено в <5% проб крови), не сообщалось о значениях холестерина ЛПНП. CV для всех этих анализов составляет <3%.

    Анализ n – 3 жирных кислот

    Мембраны клеток крови

    Замороженную цельную кровь размораживали, гемолизировали в воде (1:14) и центрифугировали в течение 5 минут при 4 ° C при 2800 × г в ультрацентрифуге (TL100, оборудованный TLA-100.3 ротора; Beckman Instruments, Фуллертон, Калифорния). Надосадочную жидкость (содержащую гемоглобин и липиды сыворотки) отбрасывали, а осадок (почти полностью состоящий из мембран эритроцитов) суспендировали в 1 мл трифторид бора метанола (BF 3 ; Sigma, Сент-Луис, Миссури) и переносили в пробирка с завинчивающейся крышкой. Пробирки нагревали 10 мин при 100 ° C для гидролиза и метилирования ЖК мембранных глицерофосфолипидов (9). После охлаждения пробирок добавляли воду и гексан (1: 1), пробирку недолго встряхивали, а затем центрифугировали в течение 3 мин при 1500 × g и при комнатной температуре для разделения слоев.Верхний (гексановый) слой удаляли, растворитель выпаривали в атмосфере азота, образец крови ресуспендировали в декане и переносили во флакон для анализа методом газовой хроматографии с ионизацией пламени.

    Фосфолипиды плазмы

    Липиды плазмы экстрагировали по методу Карлсона (10) с использованием метанола, метиленхлорида и физиологического раствора, а фракцию фосфолипидов выделяли с помощью тонкослойной хроматографии на силикагеле G (Analtech Inc, Ньюарк, Делавэр). с гептаном: диэтиловым эфиром: муравьиной кислотой (80: 20: 2).Полосу фосфолипидов собирали и нагревали в течение 10 мин при 100 ° C в BF 3 с получением метиловых эфиров FA, которые выделяли и готовили для ГХ-анализа, как описано ниже.

    Газовая хроматография

    Капиллярные колонки из плавленого кварца (длина 100 м, внутренний диаметр 0,25 мм, толщина пленки 0,25 мкм; SP-2560; Supelco, Bellefonte, PA) были использованы для определения состава ЖК. Метиловые эфиры анализировали на газовых хроматографах (GC14Al; Shimadzu Scientific Instruments, Колумбия, Мэриленд для тех, которые получены из PPL; GC9A; Shimadzu Scientific Instruments для тех, которые получены из мембран эритроцитов).Включение взвешенной смеси внешнего стандарта FA (GLC673b; NuCheck Prep, Elysian, MN) позволило контролировать различия в факторах отклика между инструментами (фактор отклика для пальмитиновой кислоты был принят равным 1,0).

    Статистический анализ

    Данные с нестандартным распределением (т.е. EPA, AA, общий холестерин, триацилглицерин) были преобразованы логарифмически для анализа. Профиль среднего ответа был исследован во времени по группе лечения с использованием сглаживания по минимуму, что позволило предположить ( см. Результаты ), что кусочная общая линейная модель хорошо подходит как для типов образцов RBC, так и для PPL.Информационный критерий Акаике использовался для сравнения моделей с разными временными точками, и узел (то есть точка перегиба) через 4 недели дал наилучшее соответствие. После того, как мы изучили все остаточные попарные корреляции из обычной модели наименьших квадратов, мы реализовали структуру корреляции Теплица для повторяющихся измерений. Расчетные общие различия между ЖК RBC и PPL сравнивали с использованием распределения F (21, 21). Апостериорный анализ мощности, основанный на наблюдаемых вариациях, показал, что мы не смогли бы обнаружить межгрупповое различие в RBC EPA + DHA ≤1.5. Данные представлены в виде средних значений ± стандартное отклонение, а значение P <0,05 считалось статистически значимым. Анализы выполняли с использованием программного обеспечения SAS (версия 9.1; SAS Institute Inc, Кэри, Северная Каролина).

    РЕЗУЛЬТАТЫ

    Субъекты

    Все женщины были в пременопаузе. Две группы (группа рыб, n = 11; группа капсул, n = 12) не различались по индексу массы тела (26,1 ± 2,1 и 25,5 ± 2,1 соответственно) или расовому происхождению (n = 9, 2, а также 0 и 9, 2 и 1 для белых, черных и азиатов соответственно в группах рыб и капсул соответственно).Однако они достоверно различались ( P = 0,01) по возрасту (35 ± 8,7 и 43 ± 3,8 года соответственно), но возраст не был значимым предиктором ответа ни в одном из продольных анализов. Во время исследования не было значительного изменения веса ни в одной из групп (прибавка на 0,1 кг и 0,7 кг соответственно). Соблюдение протокола капсул с рыбьим жиром составило 97 ± 8%, и участники всегда сообщали о полном потреблении предоставленной рыбы.

    Базовое содержание эритроцитов и фосфолипидных жирных кислот в плазме

    Исходное содержание EPA в мембранах эритроцитов было на 20% ниже в группе рыб, чем в группе капсул ( P = 0.03), но содержание EPA в PPL существенно не различалось между группами (, таблица 1, ). Базовых различий между группами с образцами RBC или PPL не было.

    ТАБЛИЦА 1

    Влияние кормления рыб по сравнению с добавлением капсул на долю общих жирных кислот, присутствующих в виде эйкозапентаеновой кислоты (EPA), докозагексаеновой кислоты (DHA) и арахидоновой кислоты (AA) в мембранах клеток крови и фосфолипидах плазмы 1

    Соотношение эмульгатора Проходы гомогенизатора высокого давления Размер частиц (нм)
    Давление высокого -гомогенизатор давления
    10 Kpsi 15 Kpsi 20 Kpsi
    1: 4 (Лецитин: рыбий жир) 1-й проход 233.3 ± 13,0 a 226,2 ± 13,8 a 225,4 ± 10,7 a
    2-й проход 203,2 ± 7,2 b 214,8 ± 27,1 34 b b
    3-й проход 185,6 ± 6,5 c 183,8 ± 11,3 c 192,3 ± 23,2 c
    4-й проход 178 c.9 ± 1,7 c 191,8 ± 2,7 c
    1: 6 (лецитин: рыбий жир) 1-й проход 246,6 ± 11,8 a 251,5 ± 24,3 38,3 ± 10,6 a
    2-й проход 227,3 ± 8,1 b 214,9 ± 12,3 b 213,1 ± 7,6 b
    b
    9138 8,0 196.5 ± 10,5 c 200,3 ± 8,9 c
    4-й проход 201,3 ± 5,0 c 196,7 ± 17,1 c 216,6 ± 36,0 32 90 32 средний размер частиц и PDI влияют на физическую стабильность, растворимость, биологические характеристики, скорость высвобождения, мутность и химическую стабильность эмульсий (Tamjidi et al. 2013). Гомогенизация под высоким давлением дает более стабильные эмульсии, чем гомогенизация с высоким усилием сдвига (Trotta et al.2002). Исходя из этих соображений, для получения эмульсии был выбран метод HPH с наилучшим сочетанием давления и прохода, т.е. 15000 фунтов на квадратный дюйм и 4 прохода были выбраны, в которых были зарегистрированы глобулы рыбьего жира меньшего размера. Анализ размера частиц выбранной комбинации показал более низкие значения как для среднего размера частиц (163,6 нм), так и для PDI (0,157).

    Стандартизация метода производства альгинатных шариков, содержащих рыбий жир

    После оптимизации параметров процесса образования эмульсии, следующей задачей было оптимизировать процесс инкапсулирования наноэмульсии в матрицу из альгината с использованием системы альгинат натрия-хлорид кальция.В первой попытке альгинат натрия растворяли в уже образованной эмульсии, и шарики формировались путем экструзии по каплям в 0,2 М раствор хлорида кальция. Инкапсулированные шарики собирали и сушили. Видимый рыбий жир наблюдался на поверхности высушенных шариков, также ощущался запах рыбьего жира, который указывал на то, что рыбий жир выделялся из альгинатной матрицы. Снижение вязкости наблюдалось в растворе альгината натрия, содержащем рыбий жир. Из-за вышеупомянутого эффекта во время формирования шариков наблюдали образование хвостов.В растворе хлорида кальция были обнаружены мелкие капли рыбьего жира, оставшиеся после затвердевания шариков, и запах рыбьего жира ощущался от раствора хлорида кальция. Следовательно, для инкапсулирования рыбьего жира требуется дальнейшая модификация процесса.

    Капля альгината натрия превращается в гранулы альгината кальция путем замены иона натрия на ион кальция. При поперечном сшивании альгинатных цепей образуются гранулы альгината кальция и молекулы-мишени, захваченные в этой матрице. Когда шарики были высушены, объем шариков уменьшился из-за потери воды, и материал матрицы сузился.Поскольку капли рыбьего жира не связывались с альгинатом, они выходили и переносились на поверхность, когда шарики сдавливались из-за высыхания и сжатия связей. Следовательно, удерживание рыбьего жира на альгинатной связи было возможно только при наличии какой-либо связи между каплей рыбьего жира и альгинатной сеткой и / или при наличии некоторого наполнителя для уменьшения эффекта сжатия альгинатных связей. Молочные белковые продукты, а именно казеинат натрия и концентрат сывороточного белка, обладают превосходными эмульгирующими и обезвоживающими свойствами (Keogh and O’Kennedy 1999).Целью сывороточного протеина было эмульгирование и стабилизация вновь созданных границ раздела жир / вода. Поскольку сывороточные белки имеют глобулярную природу, любая адсорбция на границе раздела масло / вода приведет к разворачиванию молекулы белка, стабилизируя поверхность раздела, но денатурируя белок. Эксперименты проводились с использованием сывороточного протеина и сухого обезжиренного молока в качестве наполнителя на одном уровне (2%, выбранных из предварительных исследований). Было замечено, что образец, приготовленный из концентрата сывороточного белка, имел более низкое содержание поверхностного рыбьего жира и был более сыпучим, чем образец, приготовленный из сухого обезжиренного молока.Образцы проверяли на эффективность капсулирования, и она составила 89,3 ± 0,5%. Таким образом, концентрат сывороточного протеина был выбран для дальнейших исследований. Когда грубую эмульсию с раствором сывороточного протеина оставляли на ночь для гидратации, более сухие и сыпучие шарики получали, чем раньше. После внесения этих модификаций процесса была проведена процедура стандартизации во время следующего эксперимента по изготовлению гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир.

    Покрытие гранул сывороточного протеина-альгината, содержащих рыбий жир

    Sinchaipanid и его сотрудники сообщили о нанесении покрытия из горячего расплава для контролируемого высвобождения гранул пропранолола гидрохлорида (Sinchaipanid et al.2004 г.). Гранулы пропранолола, содержащие 60% микрокристаллической целлюлозы, получали с использованием техники прямого гранулирования в роторном грануляторе с псевдоожиженным слоем. Гранулы с размером ячеек 16:18 собирали и покрывали расплавленным воском в различных соотношениях и толщинах в верхней распылительной установке с псевдоожиженным слоем. Гранулы альгината сывороточного протеина, содержащие рыбий жир (WAF), покрывали воском, а также жиром с высокой температурой плавления, используя технику нанесения покрытия на противень, в которой рассчитанное количество материала покрытия плавили и шарики непосредственно добавляли в поддон.Было обнаружено, что шарики, покрытые жиром с высокой температурой плавления, обладают большей текучестью, чем шарики, покрытые воском. Время затвердевания воска было намного быстрее, чем у высокоплавкого жира, поэтому покрытие трудно контролировать. Неровный налет и комки на шариках, покрытых воском. Кроме того, покрытые воском шарики имеют твердое покрытие и зернистую текстуру. С учетом всех наблюдений для дальнейшего применения был выбран тугоплавкий жир. Также было замечено, что соотношение материала покрытия и шариков (HMF: WAF) остается практически неизменным независимо от исходного количества материала покрытия.Оставшееся количество материала покрытия оставалось в поддоне как материал без покрытия. Таким образом, для нанесения покрытия было использовано на 10% больше HMF, так как некоторое количество жира также будет прилипать к сковороде.

    Ароматизатор WAF с покрытием

    Ароматизатор увеличивает вкусовые качества продукта. Рыбий жир был инкапсулирован, но все же присутствовал запах рыбьего жира и жира с высокой температурой плавления, что делало его менее приемлемым. Следовательно, жир с высоким содержанием кофеина при нанесении покрытия был ароматизирован двумя разными ароматизаторами, а именно. апельсин и ваниль в разной концентрации для улучшения вкусовых качеств и приемлемости.Идея маскировки аромата была взята из US 6235267 (Santi and Nelson 2001), в котором говорилось о маскировании вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Органолептическая оценка показала, что аромат ванили обладает более сильным маскирующим эффектом, чем аромат апельсина. Наконец, в высокоплавкий жир добавляли ванильный ароматизатор из расчета 20%.

    Цветовой анализ образцов

    Цветовой анализ приготовленных шариков показал значительную разницу в значениях L *, a * и b * для четырех типов шариков (таблица). Не было значительной разницы в значении L * гранул, покрытых HMF, независимо от того, содержат они рыбий жир или нет.Но разница была значительной в шариках без покрытия. Бусины с покрытием имеют HMF на своей внешней поверхности, поэтому они будут иметь почти такую ​​же легкость, в то время как легкость образцов без покрытия будет отличаться отражением из-за рыбьего жира. Все средние выборки значимо различались для значения *. В случае значения b * не было значительной разницы между гранулами, покрытыми HMF без рыбьего жира, и гранулами без покрытия HMF с рыбьим жиром, в то время как другие средства существенно различались. Вероятной причиной может быть совокупный эффект толщины покрытия, а также содержания рыбьего жира.

    Таблица 3

    Параметры цвета образцов, измеренные Hunter Color Lab и сенсорная оценка образцов на основе рыбного запаха по пятибалльной шкале оценок

    Образец Описание L * a * b * Среднее восприятие
    A Покрытие HMF и без рыбьего жира 47,09 ± 0,56 b 8,65 ± 0,09 c 32.20 ± 0,76 b 1,14 ± 0,44 a
    B Покрытие HMF и рыбьим жиром 48,22 ± 0,26 c 6,68 ± 0,19 34 a 2,43 ± 1,33 b
    C Покрытие без HMF и без рыбьего жира 43,51 ± 0,12 a 9,30 ± 0,17 d 34,69 1.29 ± 0,73 a
    D Покрытие без HMF и с рыбьим жиром 48,11 ± 0,59 c 7,04 ± 0,15 b 32,80 ± 0,22 38 1,30005 c

    Сенсорная оценка образцов альгинатных гранул

    Для сенсорной оценки четырех различных образцов гранул рыбьего жира была отобрана группа полуобразованных сенсорных экспертов. Таблица показывает, что меньше вкуса рыбьего жира ощущалось в шариках, содержащих рыбий жир, покрытых ароматизированным высокоплавким жиром (Образец B), чем у гранул без покрытия, содержащих рыбий жир без покрытия (Образец D).Приемлемость гранул увеличивалась за счет покрытия из высокоплавкого жира со вкусом ванили. Следовательно, можно сделать вывод, что использование ванильного ароматизатора может замаскировать вкус и улучшить общее восприятие.

    Заключение

    Рыбий жир, богатый источник ненасыщенных жирных кислот, склонен к окислению, что приводит к резкому запаху из-за продуктов окисления. Кроме того, рыбий жир имеет свой особый вкус, неприемлемый для большинства населения, что создает дополнительные проблемы при его использовании и применении.Следовательно, гранулы, содержащие рыбий жир, были составлены с использованием системы сывороточный белок-альгинат, и, кроме того, они были покрыты с использованием высокоплавкого жира и ароматизированы с использованием ванильного ароматизатора, чтобы сделать его более привлекательным. Сообщения о сенсорной оценке подтверждают, что они были сенсорно приемлемыми. Дальнейшая работа в этой области может быть продолжена с использованием другого материала для покрытия, техники инкапсуляции и исходного ингредиента для производства пероральных добавок, имеющих большую приемлемость и контролируемое высвобождение.

    Ссылки

    • Chen LY, Subirade M.Гранулированные микросферы альгинат-сывороточного протеина как пероральные средства доставки биоактивных соединений. Биоматериалы. 2006. 27: 4646–4654. DOI: 10.1016 / j.biomaterials.2006.04.037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen LY, Subirade M. Влияние условий приготовления на свойства высвобождения питательных веществ гранулированными микросферами альгинат-сывороточного протеина. Eur J Pharm Biopharm. 2007. 65: 354–362. DOI: 10.1016 / j.ejpb.2006.10.012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Chen Q, McGillivray D, Wen J, Zhong F, Quek SY.Совместная инкапсуляция рыбьего жира со сложными эфирами фитостерола и лимоненом молочными белками. J Food Eng. 2013; 117: 505–512. DOI: 10.1016 / j.jfoodeng.2013.01.011. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Floury J, Desrumaux A, Lardieres J. Влияние гомогенизации под высоким давлением на распределение капель по размеру и реологические свойства модельных эмульсий масло-в-воде. Innov Food Sci Emerg Technol. 2000; 1: 127–134. DOI: 10.1016 / S1466-8564 (00) 00012-6. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Hansen LT, Annan NT, Borza AD.Инкапсуляция в желатиновых микросферах, покрытых альгинатом, улучшает выживаемость пробиотика Bifidobacterium adolescentis 15703T во время воздействия моделируемых желудочно-кишечных условий. Food Res Int. 2008. 41: 184–193. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.001. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Джафари С.М., Ассадпур Э., Бхандари Б., Хе Ю. Инкапсуляция рыбьего жира с помощью наночастиц с помощью распылительной сушки. Food Res Int. 2008. 41: 172–183. DOI: 10.1016 / j.foodres.2007.11.002. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Keogh MK, O’Kennedy BT.Микрокапсулирование молочного жира с использованием сывороточных белков. Int Dairy J. 1999; 9: 657–663. DOI: 10.1016 / S0958-6946 (99) 00137-5. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Кикучи А., Кавабучи М., Ватанабе А., Сугихара М., Сакураи Ю., Окано Т. Влияние растворения геля Са2þ-альгината на высвобождение декстрана с разной молекулярной массой. J Control Release. 1999; 58: 21–28. DOI: 10.1016 / S0168-3659 (98) 00141-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Klinkesorn U, Sophanodora P, Chinachoti P, McClements DJ, Decker EA.Повышение окислительной стабильности жидких и сушеных эмульсий тунца в воде с помощью электростатического послойного осаждения. J. Agric Food Chem. 2005; 53: 4561–4566. DOI: 10,1021 / jf0479158. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Kralovec JA, Zhang S, Zhang W., Barrow CJ. Обзор прогресса в области ферментативной концентрации и микрокапсулирования масла, богатого омега-3, из рыбных и микробных источников. Food Chem. 2012; 131: 639–644. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2011.08.085. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Ли П.С., Йим С.Г., Чой Й, Ха ТВА, Ко С.Физиохимические свойства и поведение при пролонгированном высвобождении денатурированных хитозаном микрокапсул β-лактоглобулина для потенциальных пищевых продуктов. Food Chem. 2012; 134: 992–998. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2012.03.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • McClements DJ, Decker EA, Weiss J. Системы доставки липофильных биоактивных компонентов на основе эмульсии. J Food Sci. 2007. 72: 109–124. DOI: 10.1111 / j.1750-3841.2007.00507.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
    • Цянь Ц., МакКлементс DJ.Образование наноэмульсий, стабилизированных модельными эмульгаторами пищевого качества с использованием гомогенизации под высоким давлением: факторы, влияющие на размер частиц. Пищевой Hydrocoll. 2011; 25: 1000–1008. DOI: 10.1016 / j.foodhyd.2010.09.017. [CrossRef] [Google Scholar]
    • Santi PAD, Nelson DG (2001) Маскировка вкуса фенольных соединений с использованием цитрусовых ароматизаторов. Патент № 6235267 (US5
    39 925 39 925 4,61 ± 1,06 65 15,0 ± 1,9 65 15.5 ± 1,4 65 14,7 ± 1,9
    . мембраны эритроцитов . Фосфолипиды плазмы .
    Рыба . Капсулы . Рыба . Капсулы .
    EPA
    Неделя
    0 0.80 ± 0,12 0,99 ± 0,17 2 0,53 ± 0,25 0,57 ± 0,11
    2 1,04 ± 0,27 1,22 ± 0,14 0,98 ± 0,49
    1,008
    4 1,43 ± 0,35 1,27 ± 0,21 1,83 ± 1,09 1,00 ± 0,17
    6 1,21 ± 0,17 1,26 ± 0,30 1.25 ± 1,10 1,09 ± 0,32
    8 1,39 ± 0,34 1,20 ± 0,25 1,30 ± 0,81 1,10 ± 0,38
    10 1,26 ± 0,44 1,32 ± 1,32 1,10 ± 0,83 1,12 ± 0,38
    12 1,15 ± 0,36 1,21 ± 0,18 1,09 ± 0,67 1,04 ± 0,39
    14 1.39 ± 0,41 1,29 ± 0,26 1,93 ± 1,05 0,90 ± 0,29
    16 1,34 ± 0,35 1,30 ± 0,40 1,52 ± 0,88 1,02 ± 0,35 DH
    Неделя
    0 3,22 ± 0,58 3,34 ± 0.79 3,22 ± 0,55 2,84 ± 0,80
    2 3,72 ± 0,52 3,86 ± 0,73 4,54 ± 0,91 4,03 ± 0,78
    4 9065 4,13 ± 0,84
    4 9065 4,13 ± 0,84 90,02 0,78 5,18 ± 1,36 4,31 ± 0,86
    6 4,13 ± 0,67 4,20 ± 0,86 5,33 ± 1,23 5,31 ± 1,76
    8 4.52 ± 0,61 4,33 ± 0,94 5,79 ± 1,88 4,92 ± 1,74
    10 4,50 ± 0,83 4,54 ± 0,95 4,65 ± 1,12 4,73 ± 1,20
    4,60 ± 0,99 5,12 ± 1,06 4,52 ± 1,15
    14 4,81 ± 1,17 4,66 ± 1,00 5,17 ± 0,94 4.70 ± 1,81
    16 4,83 ± 1,16 4,86 ​​± 1,10 5,28 ± 1,04 4,53 ± 1,35
    AA
    0 15,5 ± 1,9 16,0 ± 1,4 13,0 ± 2,5 12,2 ± 2,6
    2 15.3 ± 1,6 16,2 ± 1,5 11,9 ± 1,4 11,5 ± 2,0
    4 15,1 ± 2,1 16,1 ± 2,1 12,2 ± 2,3 11,3 ± 2,4
    6 15,8 ± 1,9 11,3 ± 2,2 11,3 ± 2,6
    8 15,7 ± 1,1 16,0 ± 2,5 11,6 ± 1,7 11,0 ± 2,3
    10 15,4 ± 2,5 11,1 ± 1,9 11,4 ± 1,9
    12 15,4 ± 1,7 15,8 ± 3,0 11,6 ± 1,9 11,5 ± 2,2
    14 15,6 ± 1,7 11,8 ± 1,6 11,1 ± 2,0
    16 14,8 ± 1,5 15,7 ± 1,3 11,7 ± 1,6 11,1 ± 2,1
    39 925 39 925 4,61 ± 1,06 65 15,0 ± 1,9 65 15.5 ± 1,4 65 14,7 ± 1,9
    . мембраны эритроцитов . Фосфолипиды плазмы .
    Рыба . Капсулы . Рыба . Капсулы .
    EPA
    Неделя
    0 0.80 ± 0,12 0,99 ± 0,17 2 0,53 ± 0,25 0,57 ± 0,11
    2 1,04 ± 0,27 1,22 ± 0,14 0,98 ± 0,49
    1,008
    4 1,43 ± 0,35 1,27 ± 0,21 1,83 ± 1,09 1,00 ± 0,17
    6 1,21 ± 0,17 1,26 ± 0,30 1.25 ± 1,10 1,09 ± 0,32
    8 1,39 ± 0,34 1,20 ± 0,25 1,30 ± 0,81 1,10 ± 0,38
    10 1,26 ± 0,44 1,32 ± 1,32 1,10 ± 0,83 1,12 ± 0,38
    12 1,15 ± 0,36 1,21 ± 0,18 1,09 ± 0,67 1,04 ± 0,39
    14 1.39 ± 0,41 1,29 ± 0,26 1,93 ± 1,05 0,90 ± 0,29
    16 1,34 ± 0,35 1,30 ± 0,40 1,52 ± 0,88 1,02 ± 0,35 DH
    Неделя
    0 3,22 ± 0,58 3,34 ± 0.79 3,22 ± 0,55 2,84 ± 0,80
    2 3,72 ± 0,52 3,86 ± 0,73 4,54 ± 0,91 4,03 ± 0,78
    4 9065 4,13 ± 0,84
    4 9065 4,13 ± 0,84 90,02 0,78 5,18 ± 1,36 4,31 ± 0,86
    6 4,13 ± 0,67 4,20 ± 0,86 5,33 ± 1,23 5,31 ± 1,76
    8 4.52 ± 0,61 4,33 ± 0,94 5,79 ± 1,88 4,92 ± 1,74
    10 4,50 ± 0,83 4,54 ± 0,95 4,65 ± 1,12 4,73 ± 1,20
    4,60 ± 0,99 5,12 ± 1,06 4,52 ± 1,15
    14 4,81 ± 1,17 4,66 ± 1,00 5,17 ± 0,94 4.70 ± 1,81
    16 4,83 ± 1,16 4,86 ​​± 1,10 5,28 ± 1,04 4,53 ± 1,35
    AA
    0 15,5 ± 1,9 16,0 ± 1,4 13,0 ± 2,5 12,2 ± 2,6
    2 15.3 ± 1,6 16,2 ± 1,5 11,9 ± 1,4 11,5 ± 2,0
    4 15,1 ± 2,1 16,1 ± 2,1 12,2 ± 2,3 11,3 ± 2,4
    6 15,8 ± 1,9 11,3 ± 2,2 11,3 ± 2,6
    8 15,7 ± 1,1 16,0 ± 2,5 11,6 ± 1,7 11,0 ± 2,3
    10 15,4 ± 2,5 11,1 ± 1,9 11,4 ± 1,9
    12 15,4 ± 1,7 15,8 ± 3,0 11,6 ± 1,9 11,5 ± 2,2
    14 15,6 ± 1,7 11,8 ± 1,6 11,1 ± 2,0
    16 14,8 ± 1,5 15,7 ± 1,3 11,7 ± 1,6 11,1 ± 2,1
    ТАБЛИЦА 1 9000 Влияние кормления рыб по сравнению с добавлением капсул на долю общих жирных кислот, присутствующих в виде эйкозапентаеновой кислоты (EPA), докозагексаеновой кислоты (DHA) и арахидоновой кислоты (AA) в мембранах клеток крови и фосфолипидах плазмы 1

    90 39 925 39 925 4,61 ± 1,06 65 15,0 ± 1,9 65 15.5 ± 1,4 65 14,7 ± 1,9
    . мембраны эритроцитов . Фосфолипиды плазмы .
    Рыба . Капсулы . Рыба . Капсулы .
    EPA
    Неделя
    0 0.80 ± 0,12 0,99 ± 0,17 2 0,53 ± 0,25 0,57 ± 0,11
    2 1,04 ± 0,27 1,22 ± 0,14 0,98 ± 0,49
    1,008
    4 1,43 ± 0,35 1,27 ± 0,21 1,83 ± 1,09 1,00 ± 0,17
    6 1,21 ± 0,17 1,26 ± 0,30 1.25 ± 1,10 1,09 ± 0,32
    8 1,39 ± 0,34 1,20 ± 0,25 1,30 ± 0,81 1,10 ± 0,38
    10 1,26 ± 0,44 1,32 ± 1,32 1,10 ± 0,83 1,12 ± 0,38
    12 1,15 ± 0,36 1,21 ± 0,18 1,09 ± 0,67 1,04 ± 0,39
    14 1.39 ± 0,41 1,29 ± 0,26 1,93 ± 1,05 0,90 ± 0,29
    16 1,34 ± 0,35 1,30 ± 0,40 1,52 ± 0,88 1,02 ± 0,35 DH
    Неделя
    0 3,22 ± 0,58 3,34 ± 0.79 3,22 ± 0,55 2,84 ± 0,80
    2 3,72 ± 0,52 3,86 ± 0,73 4,54 ± 0,91 4,03 ± 0,78
    4 9065 4,13 ± 0,84
    4 9065 4,13 ± 0,84 90,02 0,78 5,18 ± 1,36 4,31 ± 0,86
    6 4,13 ± 0,67 4,20 ± 0,86 5,33 ± 1,23 5,31 ± 1,76
    8 4.52 ± 0,61 4,33 ± 0,94 5,79 ± 1,88 4,92 ± 1,74
    10 4,50 ± 0,83 4,54 ± 0,95 4,65 ± 1,12 4,73 ± 1,20
    4,60 ± 0,99 5,12 ± 1,06 4,52 ± 1,15
    14 4,81 ± 1,17 4,66 ± 1,00 5,17 ± 0,94 4.70 ± 1,81
    16 4,83 ± 1,16 4,86 ​​± 1,10 5,28 ± 1,04 4,53 ± 1,35
    AA
    0 15,5 ± 1,9 16,0 ± 1,4 13,0 ± 2,5 12,2 ± 2,6
    2 15.3 ± 1,6 16,2 ± 1,5 11,9 ± 1,4 11,5 ± 2,0
    4 15,1 ± 2,1 16,1 ± 2,1 12,2 ± 2,3 11,3 ± 2,4
    6 15,8 ± 1,9 11,3 ± 2,2 11,3 ± 2,6
    8 15,7 ± 1,1 16,0 ± 2,5 11,6 ± 1,7 11,0 ± 2,3
    10 15,4 ± 2,5 11,1 ± 1,9 11,4 ± 1,9
    12 15,4 ± 1,7 15,8 ± 3,0 11,6 ± 1,9 11,5 ± 2,2
    14 15,6 ± 1,7 11,8 ± 1,6 11,1 ± 2,0
    16 14,8 ± 1,5 15,7 ± 1,3 11,7 ± 1,6 11,1 ± 2,1
    39 925 39 925 4,61 ± 1,06 65 15,0 ± 1,9 65 15.5 ± 1,4 65 14,7 ± 1,9
    . мембраны эритроцитов . Фосфолипиды плазмы .
    Рыба . Капсулы . Рыба . Капсулы .
    EPA
    Неделя
    0 0.80 ± 0,12 0,99 ± 0,17 2 0,53 ± 0,25 0,57 ± 0,11
    2 1,04 ± 0,27 1,22 ± 0,14 0,98 ± 0,49
    1,008
    4 1,43 ± 0,35 1,27 ± 0,21 1,83 ± 1,09 1,00 ± 0,17
    6 1,21 ± 0,17 1,26 ± 0,30 1.25 ± 1,10 1,09 ± 0,32
    8 1,39 ± 0,34 1,20 ± 0,25 1,30 ± 0,81 1,10 ± 0,38
    10 1,26 ± 0,44 1,32 ± 1,32 1,10 ± 0,83 1,12 ± 0,38
    12 1,15 ± 0,36 1,21 ± 0,18 1,09 ± 0,67 1,04 ± 0,39
    14 1.39 ± 0,41 1,29 ± 0,26 1,93 ± 1,05 0,90 ± 0,29
    16 1,34 ± 0,35 1,30 ± 0,40 1,52 ± 0,88 1,02 ± 0,35 DH
    Неделя
    0 3,22 ± 0,58 3,34 ± 0.79 3,22 ± 0,55 2,84 ± 0,80
    2 3,72 ± 0,52 3,86 ± 0,73 4,54 ± 0,91 4,03 ± 0,78
    4 9065 4,13 ± 0,84
    4 9065 4,13 ± 0,84 90,02 0,78 5,18 ± 1,36 4,31 ± 0,86
    6 4,13 ± 0,67 4,20 ± 0,86 5,33 ± 1,23 5,31 ± 1,76
    8 4.52 ± 0,61 4,33 ± 0,94 5,79 ± 1,88 4,92 ± 1,74
    10 4,50 ± 0,83 4,54 ± 0,95 4,65 ± 1,12 4,73 ± 1,20
    4,60 ± 0,99 5,12 ± 1,06 4,52 ± 1,15
    14 4,81 ± 1,17 4,66 ± 1,00 5,17 ± 0,94 4.70 ± 1,81
    16 4,83 ± 1,16 4,86 ​​± 1,10 5,28 ± 1,04 4,53 ± 1,35
    AA
    0 15,5 ± 1,9 16,0 ± 1,4 13,0 ± 2,5 12,2 ± 2,6
    2 15.3 ± 1,6 16,2 ± 1,5 11,9 ± 1,4 11,5 ± 2,0
    4 15,1 ± 2,1 16,1 ± 2,1 12,2 ± 2,3 11,3 ± 2,4
    6 15,8 ± 1,9 11,3 ± 2,2 11,3 ± 2,6
    8 15,7 ± 1,1 16,0 ± 2,5 11,6 ± 1,7 11,0 ± 2,3
    10 15,4 ± 2,5 11,1 ± 1,9 11,4 ± 1,9
    12 15,4 ± 1,7 15,8 ± 3,0 11,6 ± 1,9 11,5 ± 2,2
    14 15,6 ± 1,7 11,8 ± 1,6 11,1 ± 2,0
    16 14,8 ± 1,5 15,7 ± 1,3 11,7 ± 1,6 11,1 ± 2,1

    Скорость увеличение содержания жирных кислот в фосфолипидах плазмы и эритроцитах: капсулы по сравнению с рыбой

    Скорости (т. Е. Наклоны) сравнивались между типами образцов PPL и RBC, а также между группами в 2 фазы: первые 4 недели и последние 12 недель ( Таблица 2 ).Единственным значимым взаимодействием группа × время для любой интересующей FA в любом типе образца в любой период было взаимодействие EPA в эритроцитах в течение первых 4 недель: скорость увеличения EPA в эритроцитах была на ≈7% быстрее в группе рыб, чем в группе рыб. капсульная группа ( P = 0,01). Поскольку других значимых групповых взаимодействий не было, данные всех 23 женщин (как из рыбной, так и из капсульной) были объединены, и были оценены ответы с течением времени между типами образцов PPL и RBC.

    ТАБЛИЦА 2

    Прогнозируемое изменение представляющих интерес жирных кислот с течением времени 1

    , 5 39 NS 5 39 NS 5 39 Plas 4 4 . , 5 39 NS 5 39 5 39 Plas 4 4 изменение представляющих интерес жирных кислот с течением времени 1

    . EPA 2 . DHA . ЭПК + ДГК . AA 2 .
    0–4 недели . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель .
    % % % %
    Красные кровяные тельца Взаимодействие 000 3 05 2 4 , 5 7.6 4 , 5 1,6 4 , 5 NS 5 NS 15,3 4 NS 15,1 4 NS −2,2 4 EPA 2 . DHA . ЭПК + ДГК . AA 2 .
    0–4 недели . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель .
    % % % %
    Красные кровяные тельца Взаимодействие 000 3 05 2 4 , 5 7.6 4 , 5 1,6 4 , 5 NS 5 NS 15,3 4 NS 15,1 4 NS −2,2 4
    , 5 39 NS 5 39 NS 5 39 Plas 4 4 . , 5 39 NS 5 39 5 39 Plas 4 4 EPA увеличивалось на 19% в неделю в течение первого месяца, что было значительно больше, чем наклон RBC EPA в группе капсул ( P = 0.0003), но существенно не отличается от такового в группе рыб (таблица 2). EPA не увеличивалось дальше в течение следующих 3 мес. Ни в одном типе образцов. Для DHA в течение первого месяца концентрации в PPL увеличивались более чем в два раза быстрее, чем в RBC (Таблица 2), но RBC DHA продолжал расти в течение следующих 3 месяцев, тогда как PPL DHA — нет. Суммарный показатель EPA + DHA имел тот же образец ответа, что и только DHA. Концентрации АК значительно снизились (P = 0,004) в PPL (но не в эритроцитах) во время первой фазы, и ни один наклон не отличался от нуля во второй фазе.

    Различия жирных кислот в фосфолипидах плазмы и эритроцитах

    Расчетные общие дисперсии для всех 4 переменных FA (EPA, DHA, EPA + DHA и AA) в PPL и RBC были проанализированы, чтобы определить, был ли один маркер более биологически стабильным, чем другой. Различия (% от общего количества ЖК) были следующими: 0,24 против 0,6 ( P = 0,001) для EPA, 1,66 против 0,9 ( P = 0,09) для DHA; 2,62 против 1,31 ( P = 0,06) для EPA + DHA; и 0.03 по сравнению с 0,01 ( P = 0,04) для AA. Следовательно, дисперсия для ЖК эритроцитов составляла 25–50% от дисперсии для ЖК PPL.

    Липиды и липопротеины сыворотки

    Влияние капсул и рыбы на липиды сыворотки сначала оценивалось для взаимодействия группы × время (, рис. 1, ). Не было взаимодействий для общего холестерина, холестерина ЛПНП или ЛПВП; следовательно, группы объединяли и оценивали влияние времени на каждый липид. Были временные эффекты для общего холестерина и холестерина ЛПНП (таблица 2).Среднее значение холестерина ЛПНП увеличилось с 106 до 115 мг / дл ( P = 0,01). Не было никаких эффектов на холестерин ЛПВП. Для триацилглицерина было значимое взаимодействие группа × время ( P = 0,01). Среднее содержание триацилглицеринов в плазме увеличилось с 68 до 85 мг / дл ( P = 0,03) в группе, получавшей капсулы, но снизилось с 104 до 94 мг / дл ( P = 0,22) в группе рыб в течение 16 недель.

    РИСУНОК 1.

    Среднее (± стандартное отклонение) влияние потребления рыбы два раза в неделю ( n = 11) и ежедневного приема капсул с рыбьим жиром ( n = 12) на липиды и липопротеины сыворотки на исходном уровне (▪) и неделя 16 (□).Значимые ( P = 0,01) неделя × групповые взаимодействия наблюдались только для триацилглицеринов. Недельные эффекты были значительными для общего холестерина и холестерина ЛПНП. Для анализа влияния на общий холестерин, холестерин ЛПНП и ЛПВП группы были объединены. В целом, общий холестерин и холестерин ЛПНП значительно увеличились с течением времени ( P = 0,01). * P = 0,025 по сравнению с исходным уровнем.

    РИСУНОК 1.

    Среднее (± стандартное отклонение) влияние потребления рыбы два раза в неделю ( n = 11) и ежедневного приема капсул с рыбьим жиром ( n = 12) на липиды и липопротеины сыворотки на исходном уровне (▪) и неделя 16 (□).Значимые ( P = 0,01) неделя × групповые взаимодействия наблюдались только для триацилглицеринов. Недельные эффекты были значительными для общего холестерина и холестерина ЛПНП. Для анализа влияния на общий холестерин, холестерин ЛПНП и ЛПВП группы были объединены. В целом, общий холестерин и холестерин ЛПНП значительно увеличились с течением времени ( P = 0,01). * P = 0,025 по сравнению с исходным уровнем.

    Побочные эффекты

    Частота рыбного послевкусия была значительной ( P <0.001) выше в группе капсул, чем в группе рыб (10/12 и 1/11 соответственно). Для 7 субъектов в группе капсул это произошло ≥1 раз в неделю и чаще всего считалось «умеренно неприятным».

    ОБСУЖДЕНИЕ

    Это исследование показало, что независимо от того, потребляются ли n – 3 ЖК из богатой жиром рыбы или капсул с рыбьим жиром, после 16 недель лечения не было никакой разницы во влиянии на главную длинноцепочечную n – 6 или n – 3 ЖК, измеренные в эритроцитах или PPL.За этот период потребление ≈485 мг EPA + DHA в день из рыбы или капсул привело к увеличению на 40–50% уровней EPA + DHA в эритроцитах и ​​60–80% роста PPL EPA + DHA. Мы обнаружили, что концентрации EPA + DHA в PPL увеличивались быстрее, чем в RBC; первая стабилизировалась к 4 неделям, а вторая продолжала расти в течение 4-месячного периода тестирования. Этот результат подтверждает предыдущие исследования, показывающие, что обмен EPA и DHA в плазме происходит быстрее, чем в эритроцитах (11). Содержание EPA в эритроцитах в течение 0–4 недель было единственным компартментом FA (и единственным временным интервалом), в котором было обнаружено различие между рыбой и капсулами; Концентрации EPA росли на 7% быстрее в первом случае, чем во втором, но только в течение первого месяца, после чего концентрации существенно не различались между группами.Это говорит о том, что, по крайней мере, в краткосрочной перспективе, EPA может быть более биодоступным из рыбы, чем из капсул. Концентрации АК снизились на ≈2% в неделю в PPL в течение первого месяца, но они не изменились значительно после этого или в эритроцитах в любое время. Наконец, биологическая изменчивость ЖК в эритроцитах составила ≈50% от наблюдаемой в PPL. Такое различие в вариациях не является неожиданным, потому что последние (транспортируемые в липопротеинах плазмы) с большей вероятностью будут подвергаться ежедневным изменениям в составе, чем мембрана эритроцитов.

    Известно, что незаменимые ЖК переносятся непосредственно из плазмы на мембраны эритроцитов (12) и, по крайней мере, для линолевой кислоты, достигают нового устойчивого состояния в течение ≈2 недель (13). Сообщалось, что DHA в дозе 1 г / сут достигает устойчивого состояния в PPL в течение 4 недель и в эритроцитах в течение 4–6 месяцев (14). Исследования с меченой DHA показали, что связанная с альбумином неэтерифицированная DHA плохо переносится в эритроциты, тогда как DHA, этерифицированная лизофосфатидилхолином, включается в мембраны эритроцитов (и тромбоцитов) в течение нескольких часов после приема (15).Факторы, которые влияют на скорость включения EPA и DHA как в плазму, так и в ткани, заслуживают дальнейшего изучения.

    AHA рекомендует употреблять ≈2 рыбной муки (предпочтительно жирной рыбы) в неделю для первичной профилактики ИБС. В настоящем исследовании это потребление обеспечивало ≈485 мг EPA + DHA в день, что примерно соответствует потреблению, которое в настоящее время рекомендовано государственными учреждениями здравоохранения Великобритании (16), Австралии и Новой Зеландии (17). AHA также рекомендует ≈1 г EPA + DHA в день для пациентов с сердечно-сосудистыми заболеваниями (2).Это количество примерно вдвое превышает дозу, указанную здесь, и, следовательно, можно ожидать, что это приведет к двукратному увеличению содержания ЭПК + ДГК в эритроцитах (т.е. увеличение до 8% вместо 6%). Такой эффект наблюдался ранее (5). Первая концентрация была предложена в качестве «кардиозащитного целевого значения» (5).

    Ожидается минимальное воздействие этого приема EPA + DHA на липиды и липопротеины плазмы. Мы обнаружили, однако, что капсулы производили небольшое повышение уровня триацилглицеринов (которое оставалось в пределах нормы), а у рыб — нет.Общий холестерин и холестерин ЛПНП незначительно повысились в комбинированных группах. Тем не менее, концентрации холестерина ЛПНП и триацилглиерола оставались в пределах нормы в обеих группах. В прошлых исследованиях кормления рыб это небольшое количество n – 3 ЖК было редко, но при исследовании ни триацилглицерин, ни холестерин ЛПНП не были затронуты (18). Более высокие дозы n – 3 ЖК снижают уровень триацилглицерина и, у некоторых субъектов, повышают уровень холестерина ЛПНП (19).

    Употребление рыбы было связано с меньшим количеством эпизодов рыбного послевкусия, чем употребление капсул, что предполагает повышенную переносимость первого.Рыба также содержит высококачественный белок и микроэлементы (особенно селен и йод), которых нет в добавках. Напротив, капсулы удобнее употреблять, и они не содержат ртути или химических загрязнителей (20), которые можно найти в рыбе (21). Однако недавний анализ соотношения риска и пользы показал, что польза для сердечно-сосудистой системы от употребления рыбы (например, лосося) намного перевешивает (≈400: 1) любые риски, связанные с потенциальным присутствием этих загрязнителей (21).

    Настоящее исследование в нескольких отношениях отличается от предыдущих исследований, изучающих вопрос биодоступности (3, 22–24).Он изучил достижимое с точки зрения питания потребление n – 3 ЖК (т.е. ≈500 мг / сут), которое в настоящее время рекомендовано несколькими организациями и агентствами здравоохранения. Было проведено сравнение ежедневных капсул с потреблением рыбы дважды в неделю, и были использованы 2 формы n – 3 FA (т.е. этиловые эфиры в капсулах и ЖК, содержащиеся в триацилглицеринах и фосфолипидах в рыбе). Исследование было рандомизировано и проспективно разработано для сравнения эффектов этих 2 источников n – 3 FA на 2 обычно используемых показателя статуса n – 3: эритроциты и PPL.Важно, чтобы потребление EPA и DHA (а не только общее количество n – 3 ЖК) было одинаковым в двух группах. Наконец, образцы крови были взяты с частотой, которая позволяла отслеживать скорость роста, и (учитывая, что продолжительность жизни эритроцитов составляет ≈16 недель) исследование планировалось быть достаточно продолжительным, чтобы достичь нового устойчивого состояния в обоих случаях n – 3. маркеры. Однако этого устойчивого состояния достичь не удалось: содержание EPA + DHA все еще увеличивалось через 16 недель.

    Это было небольшое исследование, и мы не смогли бы обнаружить относительно небольшие различия в ответах между группами.Потребление рыбы и капсул напрямую не контролировалось, поэтому мы не можем быть уверены в суточном потреблении. Будущие исследования должны включать больший размер выборки, как мужчин, так и женщин, более широкий диапазон возрастов и различные дозы n – 3 ЖК; они должны длиться> 4 мес .; и они могут также включать фазу вымывания для отслеживания скорости выведения этих ЖК из плазмы и мембран эритроцитов.

    В заключение, содержание EPA + DHA в эритроцитах или PPL существенно не отличалось, когда эквивалентные дозы n – 3 ЖК вводились дважды в неделю из рыбы или ежедневно из капсул в течение 4 месяцев.Соответственно, любой источник может быть использован для увеличения концентрации n – 3 в тканях, и данные прошлых рандомизированных исследований предполагают, что оба источника, как ожидается, приведут к снижению риска ИБС.

    Мы ценим критический вклад в проект Кэрри Робинсон (координатор исследования), Шерил Виндзор (руководитель исследовательского подразделения) и Алан Форкер (врач-исследователь).

    Обязанности авторов заключались в следующем: WSH: разработал проект, написал протокол, получил финансирование и одобрение институционального наблюдательного совета и внес значительный вклад в рукопись; SAS: провела лабораторные анализы и написала первый черновик рукописи; и JVP и PJG: провели статистический анализ.WSH является научным консультантом Monsanto и Reliant Pharmaceuticals, а SAS работает в OmegaMetrix, LLC (компания, которая предлагала анализ крови n – 3 FA и в настоящее время не существует). У других авторов не было личного или финансового конфликта интересов.

    ССЫЛКИ

    1

    Харрис

    WS

    .

    Международные рекомендации по длинноцепочечным омега-3 жирным кислотам

    .

    J Cardiovasc Med

    ,2

    Kris-Etherton

    PM

    ,

    Harris

    WS

    ,

    Appel

    LJ

    .

    Употребление рыбы, рыбий жир, омега-3 жирные кислоты и сердечно-сосудистые заболевания

    .

    Тираж

    2002

    ;

    106

    :

    2747

    57

    ,3

    Visioli

    F

    ,

    Rise

    P

    ,

    Barassi

    MC

    ,

    Marangoni

    F

    Диетическое потребление рыбы по сравнению с рецептурой приводит к более высоким концентрациям n – 3 жирных кислот в плазме

    .

    Липиды

    2003

    ;

    38

    :

    415

    8

    .4

    Elvevoll

    EO

    ,

    Barstad

    H

    ,

    Breimo

    ES

    и др. .

    Повышенное включение n – 3 жирных кислот из рыбы по сравнению с рыбьим жиром

    .

    Липиды

    2006

    ;

    41

    :

    1109

    14

    ,5

    Харрис

    WS

    ,

    фон Шаки

    C

    .

    Индекс омега-3: новый фактор риска смерти от ишемической болезни сердца?

    Предыдущая Med

    2004

    ;

    39

    :

    212

    20

    ,6

    Bligh

    EG

    ,

    Dyer

    WJ

    .

    Экспресс-метод экстракции и очистки общих липидов

    .

    Can J Biochem Physiol

    1959

    ;

    37

    :

    911

    7

    ,7

    Warnick

    GR

    ,

    Benderson

    J

    ,

    Albers

    JJ

    .

    Декстрансульфат-Mg +2 Процедура осаждения для количественного определения холестерина липопротеинов высокой плотности

    .

    Clin Chem

    1982

    ;

    28

    :

    1379

    88

    ,8

    Friedewald

    WT

    ,

    Levy

    RI

    ,

    Fredrickson

    DS

    .

    Оценка концентрации холестерина липопротеидов низкой плотности в плазме без использования препаративной ультрацентрифуги

    .

    Clin Chem

    1972

    ;

    19

    :

    499

    502

    ,9

    Моррисон

    WR

    ,

    Smith

    LM

    .

    Получение метиловых эфиров жирных кислот и диметилацеталей из липидов с помощью фтористого бора и метанола

    .

    J Lipid Res

    1964

    ;

    5

    :

    600

    8

    .10

    Carlson

    LA

    .

    Экстракция липидов из цельной сыворотки и липопротеинов человека и из ткани печени крысы смесью метиленхлорид-метанол: сравнение с экстракцией смесью хлороформ-метанол

    .

    Clin Chim Acta

    1985

    ;

    149

    :

    89

    93

    .11

    Катан

    MB

    ,

    Deslypere

    JP

    ,

    фургон Birgelen

    AP

    ,

    Penders

    9000 9000 9000 M

    Zegard

    M

    Кинетика включения пищевых жирных кислот в сывороточные холестериловые эфиры, мембраны эритроцитов и жировую ткань: 18-месячное контролируемое исследование

    .

    J Lipid Res

    1997

    ;

    38

    :

    2012

    22

    .12

    Рид

    CF

    .

    Обмен фосфолипидов между плазмой и эритроцитами у человека и собаки

    .

    J Clin Invest

    1968

    ;

    47

    :

    749

    60

    ,13

    Skeaff

    CM

    ,

    Hodson

    L

    ,

    McKenzie

    JE

    .

    Изменения жирнокислотного состава плазмы, тромбоцитов и липидов эритроцитов человека, вызванные диетой, происходят схожим образом

    .

    J Nutr

    2006

    ;

    136

    :

    565

    9

    ,14

    Артерберн

    LM

    ,

    Холл

    EB

    ,

    Окен

    H

    .

    Распределение, взаимопревращение и дозозависимость n – 3 жирных кислот у людей

    .

    Am J Clin Nutr

    2006

    ;

    83

    (

    доп.

    ):

    1467S

    76S

    ,15

    Brossard

    N

    ,

    Croset

    M

    ,

    Normand

    S

    и др..

    Альбумин плазмы человека транспортирует [13C] докозагексаеновую кислоту в двух липидных формах к клеткам крови

    .

    J Lipid Res

    1997

    ;

    38

    :

    1571

    82

    ,18

    Jacques

    H

    ,

    Noreau

    L

    ,

    Moorjani

    S

    .

    Влияние на липопротеины плазмы и эндогенные половые гормоны замены нежирной белой рыбы другими источниками животного белка в рационах женщин в постменопаузе

    .

    Am J Clin Nutr

    1992

    ;

    55

    :

    896

    901

    ,19

    Харрис

    WS

    .

    N – 3 Жирные кислоты и липопротеины сыворотки: исследования на людях

    .

    Am J Clin Nutr

    1997

    ;

    65

    (

    доп.

    ):

    1645S

    54S

    .20

    Foran

    SE

    ,

    Flood

    JG

    ,

    Lewandrowski

    KB

    .

    Измерение уровня ртути в концентрированных безрецептурных препаратах рыбьего жира: рыбий жир полезнее рыбьего?

    Arch Pathol Lab Med

    2003

    ;

    127

    :

    1603

    5

    .21

    Mozaffarian

    D

    ,

    Rimm

    EB

    .

    Потребление рыбы, загрязнители и здоровье человека: оценка рисков и преимуществ

    .

    JAMA

    2006

    ;

    296

    :

    1885

    99

    .22

    Видгрен

    HM

    ,

    Agren

    JJ

    ,

    Schwab

    U

    ,

    Risk3000 Han30003

    T Uusitupa

    MIJ

    .

    Включение n – 3 жирных кислот в липидные фракции плазмы, мембраны эритроцитов и тромбоциты во время приема пищевых добавок с рыбой, рыбьим жиром и маслом, богатым докозагексаеновой кислотой, среди здоровых молодых мужчин

    .

    Липиды

    1997

    ;

    32

    :

    697

    705

    .23

    Fahrer

    H

    ,

    Hoeflin

    F

    ,

    Lauterburg

    BH

    ,

    Peheim

    9000

    E

    0003 Vischer

    TL

    .

    Диета и жирные кислоты: может ли рыба заменить рыбий жир?

    Clin Exper Rheum

    1991

    ;

    9

    :

    403

    6

    .24

    Agren

    JJ

    ,

    Hanninen

    O

    ,

    Julkunen

    A

    и др. .

    Рыбная диета, рыбий жир и масло, богатое докозагексаеновой кислотой, снижают уровни липидов в плазме натощак и после приема пищи

    .

    евро J Clin Nutr

    1996

    ;

    50

    :

    765

    71

    .

    © 2007 Американское общество клинического питания

    .

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.

    *
    *

    . EPA 2 . DHA . ЭПК + ДГК . AA 2 .
    0–4 недели . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель .
    % % % %
    Красные кровяные тельца Взаимодействие 000 3 05 2 4 , 5 7.6 4 , 5 1,6 4 , 5 NS 5 NS 15,3 4 NS 15,1 4 NS −2,2 4 EPA 2 . DHA . ЭПК + ДГК . AA 2 .
    0–4 недели . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель . 0–4 недель . 4–16 недель .
    % % % %
    Красные кровяные тельца Взаимодействие 000 3 05 2 4 , 5 7.6 4 , 5 1,6 4 , 5 NS 5 NS 15,3 4 NS 15,1 4 NS −2,2 4