Продукты для мозга и сосудов головного мозга: 20 продуктов для отличной работы мозга

ТОП 25 продуктов для работы мозга и улучшения памяти

Головной мозг для нас играет очень важную роль. Он контролирует и регулирует все процессы в нашем организме и является центром ума, памяти, мышления и многих других очень важных процессов. Для успешной и эффективной деятельности головного мозга необходимо полноценное питание. Существует ограниченное количество продуктов, которые наиболее благоприятно влияют на его деятельность. О них и пойдёт речь далее в этой статье. 

Пища для ума: 25 суперпродуктов. Как питание влияет на работу мозга? Как проложить путь к здоровому мозгу? Полезные для мозга продукты

Пища для ума: 25 суперпродуктов.

   Существуют 25 суперпродуктов, которые усиливают работу мозга. Среди них орехи (грецкие, миндаль, кешью), жирные сорта рыбы, вода, кофе, зелёный чай, мёд, лимон, шоколад, овсянка, яйца, лесные ягоды, розмарин, томаты, морковь, морская капуста, черника, креветки, мидии, курица, брокколи, свекла, авокадо, яблоки, чеснок, шпинат.

Как питание влияет на работу мозга?

   Питание оказывает прямое влияние на его деятельность. Память, внимание, мышление, концентрацию можно улучшить, употребляя определённые продукты. Правильное питание практически на 50 % снижает риск депрессии. При неправильном питании уменьшается гиппокамп (отдел центральной нервной системы, который отвечает за запоминание информации, обучаемость и психику человека).

Как проложить путь к здоровому мозгу?

   Путь к здоровому мозгу лежит через кишечник. Бактерии, которые населяют кишечник, принимают участие в синтезе многих химических веществ, необходимых для нормального функционирования всех систем организма человека. Поэтому очень важно поддерживать микрофлору кишечника, употребляя молочные продукты (кефир, йогурт), квашеной капусты, маринованных овощей. Из этого можно сделать вывод, что высокоэффективное и качественное функционирование центральной нервной системы очень тесно связано с нормальной деятельностью кишечника. Чтобы нормально ухаживать за работой человеческого мозга мы должны следить за функционированием кишечника.

Полезные для мозга продукты

Орехи (грецкие, миндаль, кешью)

   Грецкие орехи очень не зря очень похожи на головной мозг. Они состоят из омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты, глицин, а ещё из множества витаминов и микроэлементов. Омега-3 повышают умственную активность мозгового центра. Больше всего этих полиненасыщенных жирных кислот содержится в грецких орехах. Глицин благоприятно влияет на запоминание информации.

   Миндаль содержит очень много витамина Е. Он укрепляет сосуды мозговые сосуды и повышает его активность. Миндаль помогает сконцентрировать внимание, стимулирует запоминание информации и нормализует сон. Этот вид орехов содержит пробиотик и повышает функционирование кишечника и, соответственно, головного мозга.

   Орехи кешью содержат очень ценные антиоксидант селен и аминокислоту триптофан. Селен «омолаживает мозг», помогает ему функционировать до глубокой старости и усиливает процесс запоминания человеком информации. Триптофан способствует улучшению памяти и эмоционального фона человека.

Жирные сорта рыбы

   К жирным сортам рыбы относятся форель, палтус, осетр, лосось, скумбрия, толстолобик, семга и другие. Они содержат огромное количество омега-3 полиненасыщенных жирных кислот, улучшающих процесс запоминания и внимание человека. Большое содержание витаминов группы В и витамина D способствуют улучшению деятельности центральной нервной системы.

Вода

   Головной мозг около 80 % состоит из воды и является самым зависимым от неё органом. Человек должен выпивать 1,5 – 2 литра именно чистой питьевой воды, а не соки, чай, лимонад, минеральная вода и так далее. Вода влияет на обработку информации и её усвоение, скорость передачи нервных импульсов, быстроту процессов мышления, концентрацию внимания, творческие способности. Вода поднимает психоэмоциональный фон и повышает качество сна.

Кофе

   Основным действующим веществом, входящим в состав любого кофе, является кофеин. Он усиливает функционирование центральной нервной системы и ускоряет мыслительные процессы вследствие стимуляции выработки адреналина. Благодаря полифенолам, каких много содержится в кофе, повышается настроение, пропадают депрессивные состояния. Кофе развивает запоминание информации и повышает работоспособность человека.

Зелёный чай

   Зелёный чай употребляется в холодном и горячем виде. Входящий в его состав кофеин усиливает внимание, процесс запоминания и концентрацию. Зелёный чай очищает сосуды мозговые сосуды и не допускает отложение на их стенках холестериновых отложений. Вещества катехины, входящие в состав данного вида чая, препятствуют старению мозгового центра. Глютаминовая кислота хорошо восстанавливает нервную систему.

Мёд

   Мёд является очень ценным продуктом для всего организма человека. Он содержит ценные для функционирования мозгового центра холин, серотонин, различные аминокислоты, фитонциды, флавониды и множество микроэлементов. Благодаря серотонину (его еще называют «гормоном счастья»), усиливающему деятельность коры мозгового центра, усиливается функционирование центра памяти в целом повышается настроение. Холин способствует улучшению кратковременной памяти. Мёд благоприятно влияет на тонус мозговых сосудов. Углеводы мёда обеспечат его энергией, необходимой для мозгового центра. Этот ценный продукт очень богат железом, что способствует развитию логики и речи. Ещё мед обладает нейропротекторным действием (защищает нервные клетки от опасных внешних раздражителей).

Лимон

   Лимон является очень ценным продуктом для нормального функционирования мозгового центра. Этот фрукт из семейства цитрусовых очень насыщен витамином С, что благотворно влияет на процесс запоминания. Также лимон усиливает питание мозговых сосудов, поддерживает их тонус и эластичность, а также препятствует образованию тромбов и холестериновых отложений. Благодаря антиоксидантам, каких достаточно содержится в лимоне, уничтожаются свободные радикалы, что способствует омоложению тканей центральной нервной системы. Витамины группы В укрепляют центральную нервную систему, улучшают процесс запоминания и внимание.

Шоколад

   Горький шоколад полезнее всех видов шоколада для работы головного мозга. Он содержит в своём составе антиоксиданты, флаванол, магний, калий, теобромин, фенолы, стеариновую кислоту, фенилэтиламин, лецитин. Горький шоколад улучшает функционирование мозговых сосудов, препятствует образованию атеросклеротических бляшек. Он значительно усиливает память и ускоряет процесс запоминания, усиливает работоспособность и обучаемость новым видам деятельности, обостряет внимание человека. Благодаря лецитину становится лучше передача нервных импульсов от одной клетки к другой. Фенилэтиламин и теобромин повышают настроение. Для людей пожилого возраста горький шоколад особенно ценен, так как он предотвращает старческое слабоумие.

Овсянка

   Овсяная каша считается идеальным завтраком. Она содержит множество различных углеводов, которые так нужны для высокоэффективной деятельности нашей центральной нервной системы. Кроме углеводов в её состав входят белки, клетчатка, линолевая кислота, лецитин, витамины (А, группы В, Е, РР и К) и множество микроэлементов. Овсянка усиливает концентрацию внимания, поднимает настроение, сохраняет ясность ума. Овсяная каша также помогает быстрее уснуть и становится лучше качество сна.

Яйца

   Куриные яйца содержат в своём составе белки, лютеин, холин, фосфолипиды, витамины группы В, фолиевую кислоту, фосфор. Лютеин способствует повышению мозговой активности. Холин необходим для синтеза ацетилхолина – вещества, улучшающего процесс запоминания и настроение. Фосфолипиды укрепляют мембраны нервных клеток. Витамины группы В, каких достаточно много в куриных яйцах, укрепляют центральную нервную систему и улучшаю её деятельность в целом. Фосфор принимает участие в метаболизме нейронов и утрачивается в процессе умственной деятельности. Яйца предупреждают уменьшение объёма головного мозга у пожилых людей. Чтобы получить максимальную пользу от витаминов группы В рекомендуется комбинировать куриные яйца с орехами, молочными продуктами, рыбой.

Лесные ягоды

   Полезными лесными ягодами являются малина, ежевика, голубика, земляника, клюква. Все они содержат огромное количество витамина С, необходимого для усиления памяти и концентрации внимания. Антиоксиданты «омолаживают» мозг, замедляют его старение. Голубика укрепляет мозговые сосуды и является хорошим средством для профилактики атеросклероза. Клюква препятствует образованию тромбов в сосудах. Малина хорошо снимает нервное напряжение благодаря большому содержанию меди в ней. Земляника тонизирует и повышает работоспособность мозгового центра. О чернике будет написано далее.

Розмарин

   Розмарин – растение, произрастающее в странах, имеющих выход к Средиземному морю. Оно зелёное и ароматное с листьями игольчатой формы. Оно значительно усиливает процесс запоминания. Розмарин содержит карносовую кислоту, которая продлевает молодость мозгового центра. Полезные вещества этого растения усиливают синтез ацетилхолина, благоприятно влияющего на процесс запоминания (становится лучше долговременная и укрепляется рабочая память, увеличивается объём запоминания, скорость и точность мышления). Только следует очень осторожно употреблять розмарин людям с артериальной гипертензией, так как розмарин повышает артериальное давление.

Томаты

   Томаты содержат в своём составе ликопин, мелатонин, витамин С, множество микроэлементов. Мелатонин укрепляет мозговые сосуды и предотвращает старение мозговых клеток. Томаты помогают сохранить умственную и физическую работоспособность, предотвращают развитие атеросклероза. Благодаря серотонину (его называют гормоном счастья) томаты повышают настроение человека.

Морковь

   Морковь содержит очень ценное вещество лютеолин, который не допускает разрушение мозговых клеток и снижает риск воспалительных процессов, которые негативно влияют на процесс запоминания. Морковь препятствует развитию атеросклероза мозговых сосудов, инсультов и инфарктов. Витамины группы В и множество микроэлементов усиливают передачу нервных импульсов. Морковь усиливает запоминание информации и предотвращает появление болезни Альцгеймера.

Морская капуста

   Морская капуста (ламинария) имеет очень много йода и других микроэлементов, содержит антиоксиданты и практически все витамины. Благодаря йоду значительно усиливается концентрация внимания человека. Ламинария хорошо усиливает память и помогает избежать депрессии и повышает обмен веществ. Также морская капуста предотвращает развитие атеросклероза и тромбозов сосудов, в частности мозговых сосудов.

Черника

   Черника предотвращает появление слабоумия и болезни Альцгеймера, препятствует образованию тромбов в сосудах. Эта ягода совершенствует долговременную и рабочую память. Черника также усиливает передачу нервных импульсов и повышает интенсивность мыслительных процессов у человека.

Креветки

   Креветки очень богаты омега-3 полиненасыщенными жирными кислотами и тем самым повышают умственные способности, предотвращают от слабоумия и болезни Альцгеймера. Омега-3 кислоты и магний являются эффективным средством против депрессии и поднимают настроение. Богатое содержание железа в креветках помогает насытить клетки нервной системы кислородом и тем самым способствует улучшению внимания и памяти.

Мидии

   Кроме омега-3 кислот мидии богаты витаминами группы В, цинком, марганцем, йодом, медью и другими полезными микроэлементами. Цинк усиливает процесс запоминания, нормализует сон. В целом мидии улучшают процессы мышления и значительно повышают концентрацию внимания.

Курица

   Мясо курицы содержит достаточное большое количество витаминов группы В, которые оказывают благоприятное влияние на функционирование центральной нервной системы в целом. Также куриное мясо оказывает положительное воздействие на психоэмоциональный фон человека. При употреблении этого мяса снижается риск возникновения слабоумия и болезни Альцгеймера.

Брокколи

   Брокколи замедляет старение мозга и повышает его функционирование. Бор, магний и витамин К повышают активность мозгового центра. Большое количество витамина С усиливает процесс запоминания и внимание человека.

Свекла

   Плоды свеклы содержат бетаин, который отвечает за концентрацию внимания, настроение, реакцию. Свекольный сок усиливает кровоток в мозговых сосудах и увеличивает насыщение его тканями кислородом, препятствует развитию слабоумия у пожилых людей. Всё это благодаря оксиду азота, который образуется из находящих в свекле в большом количестве нитратов.

Авокадо

   Авокадо очень богато витаминами группы В, Е и калием. Все эти полезные вещества обязательно нужны для нормальной работы головного мозга и нервной системы в целом. Фолиевая кислота благоприятно влияет на психику человека и помогает при депрессии. Авокадо усиливает процесс запоминания и ускоряет мыслительные процессы.

Яблоки

   Яблоки содержат разнообразное количество витаминов и микроэлементов, антиоксидантов. Употребление яблок способствует образованию новых нейронов и улучшению памяти. Кожура этого фрукта также является очень полезной. Вследствие наличия антиоксидантов яблоки помогут долго сохранять ясность ума. Эти фрукты успешно помогают бороться со стрессовыми ситуациями.

Чеснок

   Чеснок содержит витамины, фитонциды, клетчатку, разнообразные микроэлементы. Фитонциды являются эффективным средством борьбы  с патогенной микрофлорой организма человека, предотвращают старение мозговых клеток и расширяют мозговые сосуды. Чеснок снижает риск возникновения дегенеративных заболеваний центральной нервной системы, помогает бороться с инсультами и атеросклерозом мозговых сосудов.

Шпинат

   Шпинат содержит лютеин, который затормаживает дегенеративные процессы в головном мозге. Фолиевая кислота благоприятно  влияет на процесс запоминания и внимание, ускорению мыслительных процессов. Шпинат участвует в восстановлении мозговых клеток, которые пострадали от инсульта, а также снимает стресс.

Способы укрепления сосудов головного мозга в домашних условиях.

От кровоснабжения головного мозга зависят процессы, протекающие в организме человека. Здоровье сосудов является залогом долгой, полноценной жизни.

Есть несколько способов улучшить кровоснабжение мозга. Они включают правильное питание и определенные физические упражнения.

Кому необходимо укреплять сосуды?

Ишемическая болезнь сердца и инсульты являются наиболее частыми причинами смерти на планете. Есть несколько категорий людей, которые входят в группу риска по этим болезням:

1. Малоподвижные люди. Возникают тромбозы, поскольку при отсутствии движения капилляры практически не работают, кровь в них застаивается.
2. Спортсмены. Когда увеличивается физическая нагрузка, повышается давление. Если стенки сосудов будут слабыми, могут развиться осложнения.
3. Лица с проблемной наследственностью. Если в роду есть пострадавшие от инсульта или ишемии, необходимо обратить очень пристальное внимание на данные аспекты здоровья.
4. Наличие сахарного диабета, лишнего веса, эндокринных заболеваний.

Все эти факторы и наличие вредных привычек ухудшают состояние сосудов головного мозга. Первыми симптомами появления проблемы являются:

• постоянная усталость и сниженная работоспособность;
• шум в ушах;
• слабость в ногах по вечерам;
• одышка;
• сонливость и вялость;
• плохое самочувствие при смене погоды.

Представляем вам ннновационную комплексную программу для активной работы мозга и поддержания острого зрения — Neurovision — Siberian Super Natural Nutrition. Входящие в состав ингредиенты от ведущих европейских производителей с гарантированным уровнем качества и стандартизованным количеством активных веществ помогут активизировать мозговую активность, повысить внимание и защитить зрение от вредного излучения электронных устройств.

Растительный комплекс Гинкго билоба и байкальский шлемник — Essential Botanics, усиленный витаминами A, E и С нормализует мозговое кровообращение, способствует укреплению памяти и активизации мозговой деятельности. Входящие в состав витамины обеспечивают дополнительную антиоксидантную защиту.

Внимание! Если не обращать внимания на эти симптомы, можно довести организм до инсульта. Поэтому лучше заняться укреплением своего здоровья.

Несколько способов для укрепления сосудов

Есть несколько эффективных методов, помогающих в домашних условиях укрепить сосуды головного мозга. Важно использовать их регулярно и начать как можно раньше, чтобы не допустить предынсультного состояния.

Правильное питание

Соблюдение правильного рациона и режима дня способствует оздоровлению организма. Есть список продуктов, которые необходимо включить в ежедневное меню, чтобы укрепить сосуды головного мозга:

1. Виноградный сок. Он помогает улучшить краткосрочную память.
2. Капуста. Значительно снижает риск развития болезни Альцгеймера.
3. Орехи. Повышают эластичность сосудов, а также предупреждают риск развития атеросклероза.
4. Рыба. Поставляет серотонин, который активно стимулирует работу головного мозга.
5. Оливковое масло. Снижает «вредный» холестерин, который может привести к атеросклерозу.
6. Зелень. Способствует повышению интеллекта, активизирует кровообращение мозга.
7. Чай. Помогает расширить сосуды, а вещество танин способствует развитию их эластичности.

Отличный вариант полезного перекуса — Питательный коктейль Ванильная лукума — Yoo Gо, богатый витаминами, аминокислотами и полезными жирами. Каждая порция наполнена пищевыми волокнами, омега-3 ПНЖК, белком и L-карнитином. Сбалансированный состав обеспечивает организм жизненно важными нутриентами и помогает сохранить ощущение сытости долгое время.




Также полезен темный шоколад с большим количеством какао в составе. Если правильно питаться, то риск проблем с сосудами значительно снижается.

Из рациона следует исключить:

• сладости;
• выпечку;
• фастфуд;
• жареную и острую пищу;
• алкоголь и кофеиносодержащие напитки.

Внимание! Желательно заменить в рационе сливочные жиры на растительные, а также снизить количество потребляемой соли.

Физические упражнения

Чтобы сосуды головного мозга укрепились, необходимо вести активный образ жизни. Некоторые упражнения, если их выполнять ежедневно, способствуют улучшенному кровоснабжению головного мозга, а также расслабляют и укрепляют мышцы и сосуды шеи:

1. Дрожащий на ветру лист. Необходимо лечь на спину, а ноги и руки поднять вверх, чтобы они находились под прямым углом к остальному телу. Ладони и ступни расположить параллельно спине. 4 минуты потрясти руками и ногами в таком положении утром и 6 минут вечером.
2. Золотая рыбка. Необходимо делать с утра, еще лежа в постели. Лежать на спине, руки сомкнуть на затылке. Всем телом потрясти из стороны в сторону.
3. Наклоны головы. Выполнять в положении стоя. Сначала наклонить голову вперед, при этом подбородок должен коснуться груди, а потом медленно опрокинуть голову назад. Затем сделать наклоны головы в сторону, чтобы уши касались плеч. Повторить 3-4 раза.
4. Вращения головой. Производятся медленно. Помогают расслабить мышцы шеи. Необходимо выполнять по 3-4 вращения в каждую сторону.

Внимание! Такая помощь головному мозгу не только позволит укрепить сосуды, но и улучшит умственную деятельность.

Для поддержки сердечно-сосудистой системы также рекомендуем гипоаллергенный Витамин D3 от Siderian Wellness. Он защищает сосуды, повышает иммунитет, обладает anti-age эффектом, поддерживает здоровье и красоту кожу, а также является незаменимым помощником в укреплении костной системы детей и взрослых.

Контрастный душ

Также специалисты рекомендуют принимать контрастный душ. Для начала нужно просто принять душ. Затем постепенно сделать воду горячей и постоять под ней 30 секунд. Поменять воду на холодную на 20 секунд. Затем сделать душ теплым и можно выходить. Этот простой метод закаливания положительно сказывается на сосудах.





Внимание! В любом случае быстрого результата ожидать не стоит. Для здоровой и полноценной жизни все правила лучше соблюдать постоянно, а не только до момента хорошего самочувствия.

Влияние гинкго двулопастного на мозговой кровоток, оцениваемое с помощью количественной МРТ перфузии: пилотное исследование

Нейрорадиология. Авторская рукопись; доступно в PMC 2012 1 марта. 2011 март; 53(3): 185–191.

DOI: 10.1007/S00234-010-0790-6

PMCID: PMC3163160

NIHMSID: NIHMS315931

PMID: 21061003

Ameneh Mashayekhhhhhhhhhh. и Дорис Д.М. Лин

Информация об авторе Информация об авторских правах и лицензии Отказ от ответственности

Введение

Экстракт Ginkgo biloba (EGb), пищевая добавка, используемая при ряде состояний, включая деменцию, была предложена для увеличения мозгового кровотока (CBF). Цель этого исследования состояла в том, чтобы определить, могут ли изменения в CBF быть обнаружены с помощью магнитно-резонансной томографии с контрастным усилением динамической чувствительности (DSC-MRI) у пожилых людей, принимающих EGb.

Методы

ДСК-МРТ была проведена у девяти здоровых мужчин (средний возраст 61±10 лет) до и после 4 недель приема 60 мг EGb два раза в день. Один субъект прошел шесть последовательных сканирований для оценки внутрисубъектной воспроизводимости. Значения CBF были рассчитаны до и после EGb и проанализированы на трех различных уровнях пространственного разрешения с использованием статистического параметрического картирования на основе вокселей (SPM) и областей интереса в разных долях и всех областей вместе взятых.

Результаты

Нормализованные внутрисубъектные измерения CBF (nCBF) имели стандартное отклонение 7% и 4% в областях серого и белого вещества (БВ) соответственно. СЗМ с использованием нескорректированного порога на уровне вокселов P ≤0,001 показало небольшое увеличение CBF в левой теменно-затылочной области. CBF в отдельных долевых областях не показал каких-либо существенных изменений после EGb, но все области вместе показали значительное увеличение ненормализованного CBF после EGb (15% в белом и 13% в сером веществе, соответственно, P ≤0,0001).

Заключение

nCBF, измеренный с помощью DSC-MRI, имеет хорошую внутрисубъектную воспроизводимость. В этой небольшой когорте нормальных пожилых людей обнаружено умеренное увеличение CBF в левой теменно-затылочной БВ после EGb, а также небольшое, но статистически значимое увеличение глобального CBF.

Ключевые слова: Гинкго, Церебральный кровоток, МР-перфузия, Деменция

Экстракт Гинкго двулопастного (EGb) широко используется в качестве растительного лекарственного средства для предотвращения снижения когнитивных функций, а также других расстройств. По оценкам, на EGb ежегодно тратится более 250 миллионов долларов [1]. EGb представляет собой стандартизированный экстракт 9Листья 0005 G. biloba содержат примерно 24 % флавоновых гликозидов (преимущественно кверцетин, кемпферол и изорамнетин) и 6 % терпеновых лактонов (гинкголиды А, В и С и билобалид) [2, 3].

Несколько исследований на животных моделях субарахноидального кровоизлияния и преходящей очаговой ишемии у мышей показали, что введение EGb приводило к увеличению мозгового кровотока (CBF) по сравнению с плацебо [4-10]. Было высказано предположение, что EGb, противодействуя перепроизводству эндотелина-1, частично устраняет церебральный вазоспазм, улучшает микроциркуляцию и, таким образом, облегчает вторичное ишемическое повреждение головного мозга после экспериментального субарахноидального кровоизлияния [5]. В качестве альтернативы, в другом исследовании было высказано предположение, что EGb снимает церебральный вазоспазм и церебральное ишемическое повреждение, обращая вспять патологическое изменение оксида азота [6]. Показано, что ЭГб защищает от транзиторной и перманентной очаговой ишемии головного мозга и эффективен после длительного периода реперфузии, что авторы связывают с усилением коркового кровотока [7]. Кроме того, сообщалось, что флавоноидные компоненты EGb обладают свойствами поглощения свободных радикалов; терпеноидные компоненты ингибируют фактор активации тромбоцитов и уменьшают высвобождение свободных радикалов [2, 9]., 10].

В то время как исследования EGb на животных моделях указывают на терапевтический эффект, результаты клинических испытаний EGb более вариабельны. Одно многоцентровое исследование показало, что лечение EGb значительно улучшило когнитивный дефицит у субъектов с деменцией от легкой до тяжелой степени с болезнью Альцгеймера (БА) или деменцией с множественными инфарктами [11]. Другое исследование показало значительное увеличение CBF [с помощью однофотонной эмиссионной компьютерной томографии (ОФЭКТ)], снижение вязкости крови и улучшение когнитивных функций после хронического использования EGb у пожилых добровольцев, что свидетельствует о положительном эффекте для пациентов с деменцией [12]. Тем не менее, результаты недавно завершенного исследования Ginkgo Evaluation of Memory (GEM) [1], многоцентрового рандомизированного контролируемого исследования с участием 3069участников старше 75 лет продемонстрировали, что EGb не снижает заболеваемость деменцией или атопическим дерматитом у пожилых людей с нормальным когнитивным процессом или минимальным когнитивным дефицитом. Однако было также обнаружено, что частота сосудистой деменции была нечастой в группе EGb по сравнению с плацебо (отношение рисков 1,56 [95% ДИ, 1,14-2,15], P =0,05) [3].

Настоящее исследование было предпринято, чтобы определить, можно ли использовать МР-перфузионную визуализацию (MRPI) для выявления влияния EGb на CBF у небольшого числа нормальных пожилых людей, а также для оценки размеров выборки, если CBF (измеряемый с помощью MRPI) должен быть используется в качестве биомаркера исхода в потенциальных будущих клинических испытаниях EGb.

Дизайн исследования

Девять здоровых мужчин-добровольцев (средний возраст 61±10 лет) были набраны с помощью рекламы в местных клубах здоровья. Участники были проверены на наличие основных заболеваний и не имели в анамнезе психических расстройств, неврологических заболеваний, серьезных сердечных заболеваний, диабета, сосудистых заболеваний, эпилепсии или травм головы. Кроме того, нейрорадиолог оценивал обычные МРТ-изображения каждого субъекта, чтобы определить, что у исследуемых субъектов не было признаков опухоли, предшествующего инфаркта или какой-либо другой аномалии визуализации.

Это исследование было одобрено наблюдательным советом местного учреждения, и перед оценкой от всех участников было получено письменное информированное согласие. Каждый субъект прошел исследование магнитно-резонансной томографии (МРТ) в начале исследования и второе исследование после 4 недель приема 60 мг капсул EGb [DaVinci Laboratories, Discovery Company, Vermont, NY; 14,4 мг (24%) флавоновых гликозидов гинкго на капсулу] два раза в день. У одного из субъектов было проведено шесть исследований перфузии MR в разные дни в течение 2-недельного периода на исходном уровне до введения гинкго для оценки воспроизводимости измерений перфузии.

Получение и обработка изображений

Все исследования проводились на сканере GE SIGNA мощностью 1,5 Тл (GE Medical Systems, Милуоки, Висконсин) с использованием квадратурной приемно-передающей катушки с птичьей клеткой. Традиционная МРТ включала сагиттальное Т1-взвешенное спиновое эхо, аксиальное быстрое восстановление инверсии с ослаблением жидкости и аксиальное диффузионно-взвешенное сканирование. Градиент-эхо, эхо-планарная перфузионно-взвешенная последовательность изображений (TR 2000 мс, TE 60 мс, угол поворота 90°, 30 фаз) была получена динамически во время болюсной инъекции 20 мл гадолиний-диэтилентриаминпентауксусной кислоты в локтевую вену. Было собрано семнадцать срезов толщиной 5 мм с зазором 2,5 мм с полем зрения 24 см и размером матрицы 128 мм × 64 мм.

Обработка необработанных изображений перфузии МРТ для создания карт CBF была выполнена с использованием программы «Penguin» [13], программного обеспечения графического интерфейса пользователя для перфузии на основе MATLAB (Mathworks, Natick, MA) (Центр функционально интегративной нейронауки, Орхусский университет). Госпиталь, Дания). Функция артериального входа выбиралась автоматически с использованием одного среза на уровне проксимального круга Виллиса у всех пациентов, а разложение по сингулярным числам использовалось для создания карт CBF (1).

Открыть в отдельном окне

Образец карты CBF (без нормализации), созданный с помощью программы Penguin у 69-летнего мужчины

Анализ данных

Данные анализировались на трех уровнях пространственного разрешения. Первоначально анализ выполнялся на уровне вокселей с использованием программного статистического параметрического картирования (SPM), затем в сегментированных областях интереса (ROI) в десяти различных долевых областях и, наконец, «глобальное» измерение всех областей вместе взятых. Во всех анализах старались избегать измерений внутри крупных сосудов. Эффекты EGb анализировали путем сравнения как абсолютного CBF, определенного с помощью программы Penguin, так и нормализованного CBF (nCBF), где CBF каждой супратенториальной области мозга выражается относительно значений CBF белого вещества мозжечка (WM). Статистическая значимость была установлена ​​на уровне Р = 0,05.

Анализ на уровне вокселов

Для анализа на основе вокселов использовался SPM8 (Wellcome Trust Center for Neuroimaging, Лондон, Англия), реализованный в MATLAB. Затем были зарегистрированы базовые и пост-гинкго (ненормализованные) изображения CBF каждого субъекта на основе исходных изображений перфузии, полученных до инъекции GdDTPA. Изображения перфузии были пространственно нормализованы с помощью 12-параметрической аффинной деформации и трилинейной интерполяции по шаблону 2×2×2 мм ³ Монреальского неврологического института. Полученные изображения были пространственно сглажены с использованием 8-миллиметрового ядра Гаусса по всей ширине на половине максимума. В SPM анализ на основе вокселей, состоящий из парных 9Тесты 0005 t использовались для сравнения CBF между пре- и пост-EGb. Когда сравнения с исправленной ошибкой семейства P ≤0,05 не дали статистически значимых кластеров, также использовались более либеральные нескорректированные пороги на уровне вокселов P ≤0,001 и P ≤0,005.

CBF (без нормализации и с нормализацией по отношению к WM мозжечка) из одной области интереса, соответствующей кластеру, определенному SPM, затем сравнивали между до и после EGb с использованием парного т тест.

Сегментированный долевой анализ ROI

Долевой анализ ROI был выполнен на картах CBF с использованием программного обеспечения для обработки, анализа и визуализации медицинских изображений (MIPAV), разработанного Секцией исследований биомедицинских изображений в Национальных институтах здравоохранения (NIH, http: //mipav.cit.nih.gov/) [14]. Для полуавтоматического извлечения мозга из немозговой ткани, включая крупные сосуды, на изображениях, взвешенных по перфузии, использовался инструмент «Нарисовать интересующий объем уровня» с последующим ручным уточнением. Мозг был сегментирован на БВ, серое вещество (СМ) и спинномозговую жидкость (ЦСЖ) с использованием алгоритмов классификации тканей, основанных на методе нечеткой и шумоустойчивой адаптивной сегментации [15]. Корковая GM отличалась от базальных ганглиев полуавтоматическим разграничением. Маркировка различных долей была выполнена путем преобразования изображений перфузии в атлас Talairach с помощью инструмента преобразования Talairach, интегрированного в MIPAV [16, 17]. Для каждого сканирования рассчитывали средний CBF левой и правой лобных, затылочных, теменных и височных долей и лимбических областей. Эффекты EGb анализировали путем сравнения абсолютного значения и nCBF для каждой области до и после лечения с использованием парных t критерий с апостериорной коррекцией Бонферрони для множественных сравнений.

Для проверки внутрисубъектной изменчивости значения CBF и nCBF в сегментах долей из шести сканирований у одного субъекта сравнивались с использованием того же подхода. Были рассчитаны средние значения и стандартные отклонения CBF и nCBF для каждой области мозга по шести сканированиям.

Общий анализ

Средние значения долевого CBF (нормализованные и ненормализованные) из всех областей головного мозга были объединены и сравнены между лечением до и после EGb с использованием одного двустороннего парного анализа т тест.

Измерения CBF из шести сеансов MR перфузии у одного и того же субъекта в разные дни показали большие различия (). Значения CBF были сопоставимы в различных долевых областях, при этом средний CBF корковой GM составлял 57,67 ± 18,68 (32%) и WM 21,24 ± 5,95 (28%). При нормализации по отношению к мозжечковой WM дисперсия уменьшалась (). Средний nCBF GM составил 2,54±0,18 (7%) и WM 0,94±0,04 (4%).

Открыть в отдельном окне

Блочные диаграммы, показывающие внутрисубъектную изменчивость измерений CBF в различных долевых отделах каждого полушария головного мозга после регистрации с использованием атласа Talairach, a без и b с нормализацией относительно среднего CBF WM мозжечка. Каждая ячейка охватывает от первого до третьего квартилей, с планками погрешностей, обозначающими весь диапазон значений, горизонтальная полоса представляет собой медиану, а x обозначает среднее значение. GM изображен в сером , а WM в белом . Из всех областей абсолютное среднее значение CBF корковой GM составляет 57,67 ± 18,68 и WM 21,24 ± 5,95. Средний nCBF GM составляет 2,54±0,18 и WM 0,9.4±0,04

Анализ на основе вокселей с использованием SPM8 продемонстрировал кластер умеренного увеличения перфузии в БВ, локализованный в левой теменно-затылочной области (размер кластера 14 вокселей) после введения гинкго ( P ≤0,001). Дальнейшее увеличение значения P до 0,005 и установка порога уровня кластера на 300 увеличили размер кластера (327 вокселей; см. и ). Тестовый анализ с обратной парой t (при условии, что CBF pre-EGb>post-EGb) с тем же значением P не продемонстрировал какого-либо значимого эффекта.

Открыть в отдельном окне

Статистическая параметрическая карта регионарного повышения перфузии после введения гинкго ( без поправки P ≤0,005). Красная область, представляющая гиперперфузию, локализована в левой теменно-затылочной БВ. Этот результат был продемонстрирован только в матрице дизайна «до≤пост», основанной на парном тесте t . Интенсивность цветового кодирования в 3D-рендеринге представляет собой взвешенную сумму t значений, где веса пропорциональны глубине мозга; то есть более глубокие области будут показаны с меньшей интенсивностью

Table 1

Regions with increased CBF after 4 weeks Gingko consumption

Value	Z score	P value (uncorrected)	MNI a coordinates ( x , y , z )
5. 24	3.36	0.000	−26	−70	24
4.72	3.17	0.001	−26	−82	−6
4.69	3.16	0.001	−22	−68	32

Open in отдельное окно

В таблице показаны три локальных максимума на расстоянии более 8,0 мм друг от друга. Порог высоты: T =3,36, P =0,005 (с поправкой на 1,000). Порог экстента: k = 300 вокселей, P = 0,004 (0,291 исправлено)

MNI Монреальский неврологический институт

Результаты СЗМ на основе вокселей в левой теменно-затылочной БВ были подтверждены однопарным тестом t после сегментации мозга под контролем кластера СЗМ. Основываясь на априорных знаниях, парный тест t для среднего nCBF подтвердил умеренное увеличение в той же левой теменно-затылочной области БВ (среднее значение nCBF до EGb 0,904 ± 0,075 и среднее значение nCBF после EGb 0,939 ± 0,068, ). Р =0,022). Без нормализации средний CBF также значительно выше после EGb (средний CBF до EGb 15,11 ± 4,68 по сравнению со средним CBF после EGb 17,81 ± 6,34, P =0,0047). Никакие другие долевые области, ни в GM, ни в WM, не показали каких-либо существенных различий после поправки на множественные сравнения. Однако общая тенденция к более высоким средним и медианным значениям CBF наблюдалась во всех долевых отделах (включая мозжечок) без нормализации (2) и более чем в 50% отделов после нормализации на фоне WM мозжечка (3). При объединении всех ROI головного мозга CBF был выше после EGb, чем до EGb (16,47 ± 1,37 против 14,21 ± 1,07, P ≤0,0001 в WM; 42,37 ± 1,82 против 37,20 ± 1,77, P ≤0,0001 в GM) с использованием одного двустороннего парного теста t . Точно так же nCBF был немного выше после EGb, чем до EGb, но статистическая значимость была намного ниже или потеряна (0,85 ± 0,05 против 0,84 ± 0,05, P = 0,03 в WM; 2,22 ± 0,08 против 2,20 ±). 0,10, P =0,08 в GM).

Открыть в отдельном окне

Диаграммы, показывающие значения CBF в различных сегментированных долевых областях WM до и после введения гинкго: ( a ) ненормализованные значения CBF, ( b ) значения CBF, нормализованные к CBF WM мозжечка (nCBF). Во всех долевых областях (включая мозжечок) наблюдается общая тенденция к более высоким средним и медианным абсолютным значениям CBF после введения гинкго; однако это не является статистически значимым, когда выполняются поправки на множественные сравнения. Эта тенденция не наблюдается стабильно после нормализации, но сохраняется более чем в 50% регионов. Если коррекция для множественных сравнений не выполняется, одна ROI левой затылочной и теменной области WM показывает значительно увеличенный CBF и nCBF после гинкго (см. текст)

В этом исследовании девяти здоровых пожилых людей анализ СЗМ показал умеренное увеличение nCBF в левой теменно-затылочной БВ после введения EGb, хотя только при использовании нескорректированного P ≤0,001. Поскольку теменно-затылочная область участвует в зрительной памяти и познании, это интересное открытие в отношении возможного благотворного влияния EGb на эти функции [18-20]. Однако взаимосвязь между nCBF и нейрокогнитивной функцией требует дальнейшего изучения, и в целом это изменение CBF было незначительным и не было обнаружено на 9-м этапе исследования.0005 P Уровень ≤0,05, если проводилась поправка на множественные сравнения. Только при объединении результатов всех ROI были обнаружены значимые результаты; результаты SPM следует считать в лучшем случае пограничной значимостью, поскольку при выполнении поправки на множественные сравнения значимых кластеров обнаружено не было. То, что обнаружены только очень незначительные изменения CBF, может согласовываться с результатами исследования GEM, которое не показало каких-либо значительных клинических преимуществ EGb в предотвращении возникновения деменции в аналогичной группе субъектов [1]. Тем не менее, EGb, вероятно, оказывает некоторые физиологические эффекты, как показано в предыдущих исследованиях in vitro и на животных моделях [2, 4–10], и возможно, что он может оказывать большее влияние на CBF у субъектов с когнитивными нарушениями или другими нарушениями работы головного мозга. патология.

Текущие результаты не дублируют результаты предыдущего исследования ОФЭКТ [12], в котором сообщалось о значительном увеличении мозгового кровотока во многих различных областях мозга, включая левую лобную, лобно-теменную и теменную, а также правую лобную и теменную доли. Это может быть связано с рядом методологических различий, включая дозу и продолжительность введения EGb, сегментацию долей и выбор ROI, критерии включения субъектов и методы визуализации.

Количественные измерения церебральной перфузии традиционно выполняются методами ядерной медицины, такими как 99 м оксим технеция-гексаметилпропиленамина (99mTc-HMPAO-SPECT) или позитронно-эмиссионная томография с кислородом-15 (15O-PET). Преимущество MRPI заключается в отсутствии ионизирующего излучения, гораздо более высоком пространственном разрешении и превосходном анатомическом изображении, обеспечиваемом обычными MR-изображениями, полученными в том же исследовании. С помощью оценки входной артериальной функции и разложения по сингулярным числам было показано, что CBF может быть определен с достаточной надежностью, например, в исследованиях острого ишемического инсульта [21, 22]. В текущем исследовании была продемонстрирована хорошая воспроизводимость nCBF у одного и того же человека, участвовавшего несколько раз, с низкими стандартными отклонениями нормализованных значений исходных исследований (4% для WM и 7% для GM). Как и ожидалось, абсолютные значения CBF показали гораздо большую дисперсию со стандартным отклонением примерно 30% как для WM, так и для GM. Вариации CBF от сканирования к скану могут возникать по многим техническим причинам [23], но, возможно, наибольшее влияние на них оказывают парциальные объемные эффекты функции артериального входа. Однако нормализация потенциально может привести к ошибкам; поскольку EGb, по-видимому, оказывает общее влияние, хотя и не являющееся статистически значимым, на CBF во всех областях мозга (включая мозжечок), эта процедура нормализации может скрыть такое изменение. Тем не менее, это вряд ли объясняет различия между текущими результатами и ранее опубликованными исследованиями ядерной медицины, поскольку нормализация по мозжечку также широко используется в исследованиях ПЭТ и ОФЭКТ. В будущем можно будет рассмотреть другие подходы к нормализации, например, с использованием количественных показателей объема мозговой крови [23], для оценки абсолютного мозгового кровотока, не требуя допущения неизменности мозжечкового кровотока.

Текущее исследование ограничено небольшим размером выборки, и наши предварительные данные, показывающие небольшое увеличение CBF в левой теменно-затылочной БВ после EGb, хотя и являются значительными, не имеют статистической достоверности (0,2). Тем не менее данные позволяют планировать будущие исследования; используя текущий количественный метод перфузии MR без использования нормализации, чтобы получить мощность 0,8 при значении α 0,05, мы оцениваем, что требуется размер выборки 41.

Динамическая чувствительность МРТ с контрастным усилением может быть полезна для оценки гемодинамических изменений после фармацевтического вмешательства. В этом пилотном исследовании, состоящем из небольшой когорты здоровых пожилых людей, было обнаружено легкое увеличение CBF в левой теменно-затылочной БВ после введения EGb. Для подтверждения этого вывода со статистической мощностью 0,8 требуется дальнейшее исследование, включающее более крупную выборку, состоящую как минимум из 41 пациента. Вопрос о том, оказывает ли EGb аналогичный или, возможно, больший эффект на регионарный мозговой кровоток у пожилых людей с когнитивными нарушениями, а также взаимосвязь между мозговым кровотоком и нейрокогнитивной функцией, требует дальнейшего изучения.

Мы благодарим Рену Гекле за поддержку исследования и набор пациентов. Это исследование было частично поддержано грантом NIH P41RR015241.

Заявление о конфликте интересов Мы заявляем об отсутствии конфликта интересов.

1. ДеКоски С.Т., Уильямсон Д.Д., Кронмал Ф.А.Л., РЕЙДГ, Сакстон Д.А., Лопес О.Л., Берк Г., Карлсон М.К., Фрид Л.П., Куллер Л.Х., Роббинс Д.А., Трейси Р.П., Вулард Н.Ф., Данн Л., Сниц Б.Е., Нахин Р.Л. , компакт-диск Фурберг. Ginkgo biloba для профилактики деменции: рандомизированное контролируемое исследование. ДЖАМА. 2008; 300: 2253–2262. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

2. Ahlemeyer B, Krieglstein J. Нейропротекторные эффекты экстракта Ginkgo biloba . Cell Mol Life Sci. 2003; 60: 1779–1792. [PubMed] [Google Scholar]

3. Schneider LS. Экстракт Ginkgo biloba и профилактика болезни Альцгеймера. ДЖАМА. 2008; 300:2306–2308. [PubMed] [Google Scholar]

4. Sun BL, Yuan H, Xia YMF, ZLZSM, Wang LX. Влияние экстракта Ginkgo biloba на внутричерепное давление, церебральное перфузионное давление и мозговой кровоток в модели субарахноидального кровоизлияния у крыс. Int J Neurosci. 2007; 117: 655–665. [PubMed] [Академия Google]

5. Sun BL, Zhang J, Xia WXC, ZLYMF, Zhang SM, Ye WJ, Yuan H. Влияние экстракта Ginkgo biloba на спазмы основной артерии и церебральную микроциркуляторную перфузию у крыс с субарахноидальным кровоизлиянием. Clin Hemorheol Microcirc. 2003; 29: 231–238. [PubMed] [Google Scholar]

6. Сунь Б.Л., Ся З.Л., Ян М.Ф., Цю П.М. Влияние экстракта Ginkgo biloba на соматосенсорный вызванный потенциал, уровни оксида азота в сыворотке и ткани головного мозга у крыс с церебральным вазоспазмом после субарахноидального кровоизлияния. Clin Hemorheol Microcirc. 2000;23:139–144. [PubMed] [Google Scholar]

7. Lee EJ, Chen HY, Wu TS, Chen TY, Ayoub IA, Maynard KI. Немедленное введение экстракта Ginkgo biloba (EGb 761) обеспечивает нейропротекцию против постоянной и преходящей фокальной ишемии головного мозга у крыс Sprague-Dawley. J Neurosci Res. 2002; 68: 636–645. [PubMed] [Google Scholar]

8. Zhang J, Fu S, Liu S, Mao T, Xiu R. Терапевтический эффект экстракта Ginkgo biloba у крыс SHR и его возможные механизмы, основанные на мозговом микрососудистом потоке и вазомотории. Clin Hemorheol Microcirc. 2000; 23: 133–138. [PubMed] [Академия Google]

9. Кларк В.М., Ринкер Л.Г., Лессов Н.С., Лоури С.Л., Чиполла М.Дж. Эффективность антиоксидантной терапии при транзиторной очаговой ишемии у мышей. Инсульт. 2001;32:1000–1004. [PubMed] [Google Scholar]

10. Pietri S, Maurelli E, Drieu K, Culcasi M. Кардиозащитное и антиоксидантное действие терпеноидных компонентов экстракта Ginkgo biloba (EGb 761) J Mol Cell Cardiol. 1997; 29: 733–742. [PubMed] [Google Scholar]

11. Le Bars PL, Katz MM, Berman N, Itil TM, Freedman AM, Schatzberg AF. В плацебо-контролируемом двойном слепом рандомизированном исследовании экстракта Гинкго билоба для деменции. Североамериканская исследовательская группа EGb. ДЖАМА. 1997; 278:1327–1332. [PubMed] [Google Scholar]

12. Сантос Р.Ф., Гальдурос Дж.К., Барбьери А., Кастильони М.Л., Итая Л.И., Буэно О.Ф. Когнитивные способности, SPECT и вязкость крови у пожилых людей без деменции, использующих Ginkgo biloba . Фармакопсихиатрия. 2003; 36: 127–133. [PubMed] [Google Scholar]

13. Østergaard L. Принципы визуализации церебральной перфузии с помощью отслеживания болюса. J Magn Reson Imaging. 2005; 22: 710–717. [PubMed] [Академия Google]

14. McAuliffe M, Lalonde E, McGarry D, Gandler W, Csaky K, Trus B. Медицинская обработка изображений, анализ и визуализация в клинических исследованиях. Материалы 14-го симпозиума IEEE по компьютерным медицинским системам; Пискатауэй, Нью-Джерси. 2001. С. 381–386. [Google Scholar]

15. Фам Д.Л. Надежная нечеткая сегментация магнитно-резонансных изображений. Материалы 14-го симпозиума IEEE по компьютерным медицинским системам; Бетесда, Мэриленд. 2001. стр. 127–131. [Google Scholar]

16. Базен П.Л., Куццокрео Дж.Л., Ясса М.А., Гандлер В., Маколифф М.Дж., Бассет С.С., Фам Д.Л. Расширения объемного нейроизображения для программного пакета MIPAV. J Neurosci Методы. 2007; 165:111–121. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

17. Фам Д.Л., Сюй С., Принц Дж.Л. Современные методы сегментации медицинских изображений. Анну Рев Биомед Инж. 2000;2:315–237. [PubMed] [Google Scholar]

18. Стенсет В., Хофосс Д., Берстад А.Е., Негаард А., Гьерстад Л., Флэдби Т. Подтипы поражения белого вещества и когнитивные нарушения у пациентов с нарушением памяти. Дементное гериатрическое когнитивное расстройство. 2008; 26: 424–431. [PubMed] [Google Scholar]

19. Ота М., Немото К., Сато Н., Ямасита Ф., Асада Т. Связь между изменениями белого вещества и когнитивными функциями у здоровых пожилых людей. Int J Geriatr Psychiatry. 2009 г.;24:1463–1469. [PubMed] [Google Scholar]

20. Sepulcre J, Masdeu JC, Sastre-Garriga J, Goñi J, Vélez-de-Mendizábal N, Duque B, Pastor MA, Bejarano B, Villoslada P. Картирование мозговых путей декларативного вербальная память: свидетельство поражений белого вещества головного мозга живого человека. Нейроизображение. 2008;42:1237–1243. [PubMed] [Google Scholar]

21. Wu O, Østergaard L, Weisskoff RM, Benner T, Rosen BR, Sorensen AG. Метод, нечувствительный ко времени прибытия трассера, для оценки потока в МР-перфузионно-взвешенной визуализации с использованием разложения по сингулярным числам с матрицей блочно-циркулирующей деконволюции. Магн Резон Мед. 2003; 50: 164–174. [PubMed] [Академия Google]

22. Christensen S, Mouridsen K, Wu O, Hjort N, Karstoft H, Thomalla G, Röther J, Fiehler J, Kucinski T, Østergaard L. Сравнение 10 параметров перфузионной МРТ у 97 пациентов с инсультом менее 6 часов с использованием анализ рабочих характеристик воксельного приемника. Инсульт. 2009;40:2055–2061. [PubMed] [Google Scholar]

23. Шин В., Горовиц С., Рагин А., Чен И., Уокер М., Кэрролл Т.Дж. Количественная церебральная перфузия с использованием динамической контрастной МРТ восприимчивости: оценка воспроизводимости и зависимости от возраста и пола с полностью автоматическим алгоритмом постобработки изображения. Магн Резон Мед. 2007;58(6):1232–1241. [PubMed] [Академия Google]

Сосуды головного мозга: обзор анатомии, физиологии и роли в дренаже жидкостей и растворенных веществ

1. Iadecola C, Nedergaard M. Глиальная регуляция мозгового микроциркуляторного русла. Нат Нейроски. (2007) 10:1369–76. 10.1038/nn2003 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Агарвал Н., Контарино С., Торо Э.Ф. Нейрожидкости: целостный подход к их физиологии, интерактивной динамике и клиническим последствиям для неврологических заболеваний. Лимфатические вены. (2019) 8:49–58. 10.4081/вл.2019.8470 [CrossRef] [Google Scholar]

3. Beggs CB. Церебральный венозный отток и ликвородинамика. Лимфатические вены. (2014) 3:1–8. 10.4081/vl.2014.1867 [CrossRef] [Google Scholar]

4. Zhang ET, Inman CBE, Weller RO. Взаимоотношения мягкой мозговой оболочки и периваскулярных пространств (Вирхова-Робена) в головном мозге человека. Дж Анат. (1990) 170:111–23. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

5. Марин-Падилья М. Внутримозговая микрососудистая система головного мозга человека: развитие и строение. Нейроанат. (2012) 6:38. 10.3389/fnana.2012.00038 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Carare RO, Bernardes-Silva M, Newman TA, Page AM, Nicoll JAR, Perry VH, et al. Растворенные вещества, но не клетки, дренируются из паренхимы головного мозга вдоль базальных мембран капилляров и артерий: значение для церебральной амилоидной ангиопатии и нейроиммунологии. Приложение Нейропатол Нейробиол. (2008) 34:131–44. 10.1111/j.1365-2990.2007.00926.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Louveau A, Smirnov I, Keyes TJ, Eccles JD, Rouhani SJ, Peske JD, et al.. Структурные и функциональные особенности лимфатических сосудов центральной нервной системы. Природа. (2015) 523:337–41. 10.1038/nature14432 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Aspelund A, Antila S, Proulx ST, Karlsen TV, Karaman S, Detmar M, et al. Твердая лимфатическая сосудистая система, дренирующая мозговую интерстициальную жидкость и макромолекулы.

J Эксперт Мед. (2015) 212:991–9. 10.1084/jem.20142290 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Agarwal N, Port JD. Нейровизуализация: анатомия и функция. Швейцария: Springer International; (2017). [Google Scholar]

10. Хилл М.А., Нуриан З., Хо И.Л., Клиффорд П.С., Мартинес-Лемус Л., Майнингер Г.А. Распределение и архитектура эластина мелких артерий — внимание к трехмерной организации. Микроциркуляция. (2016) 23:614–20. 10.1111/мик.12294 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Blinder P, Tsai PS, Kaufhold JP, Knutsen PM, Suhl H, Kleinfeld D. Кортикальный ангиом: взаимосвязанная сосудистая сеть с нестолбчатыми паттернами кровотока. Нат Нейроски. (2013) 16:889–97. 10.1038/nn.3426 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Tsai PS, Kaufhold JP, Blinder P, Friedman B, Drew PJ, Karten HJ, et al. плотности микрососудов в коре головного мозга мышей, выявленные путем прямого подсчета и колокализации ядер и сосудов.

Дж. Нейроски. (2009 г.) 29:14553–70. 10.1523/JNEUROSCI.3287-09.2009 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. MacGregor Sharp M, Bulters D, Brandner S, Holton J, Verma A, Werring DJ и др.. тонкая анатомия периваскулярного компартмента головного мозга человека: отношение к расширенным периваскулярным пространствам при церебральной амилоидной ангиопатии. Приложение Нейропатол Нейробиол. (2018) 45:305–8. 10.1111/nan.12480 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Хатчингс М., Веллер Р.О. Анатомические взаимоотношения мягкой мозговой оболочки с сосудами головного мозга у человека. Дж Нейрохирург. (1986) 65:316–25. 10.3171/jns.1986.65.3.0316 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Wardlaw JM, Smith EE, Biessels GJ, Cordonnier C, Fazekas F, Frayne R, et al.. Стандарты нейровизуализации для исследования малых сосудов болезнь и ее роль в старении и нейродегенерации. Ланцет Нейрол. (2013) 12:822–38. 10.1016/S1474-4422(13)70124-8 [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Hase Y, Polvikoski TM, Firbank MJ, Craggs LJL, Hawthorne E, Platten C, et al. .. Патологические изменения при заболеваниях мелких сосудов при нейродегенеративных и сосудистых деменциях в сочетании с вегетативной дисфункцией. Мозговой патол. (2020) 30:191–202. 10.1111/bpa.12769 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Horsburgh K, Wardlaw JM, Van Agtmael T, Allan SM, Ashford MLJ, Bath PM, et al.. Малые суда, деменция и хронические заболевания — молекулярные механизмы и патофизиология. Клин науч. (2018) 132:851–68. 10.1042/CS20171620 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Hamel E. Периваскулярные нервы и регуляция цереброваскулярного тонуса. J Appl Physiol. (2006) 100:1059–64. 10.1152/japplphysiol.00954.2005 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Fantini S, Sassaroli A, Tgavalekos KT, Kornbluth J. Мозговой кровоток и ауторегуляция: современные методы измерения и перспективы неинвазивных оптических методов. Нейрофотоника. (2016) 3:031411. 10.1117/1.NPh.3.3.031411 [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

увеличивает перфузию коры. Дж. Нейроски. (2013) 33:3390–401. 10.1523/JNEUROSCI.3346-12.2013 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Rayshubskiy A, Wojtasiewicz TJ, Mikell CB, Bouchard MB, Timerman D, Youngerman BE, et al.. Direct, интраоперационное наблюдение гемодинамических колебаний ~ 0,1 Гц в коре бодрствующего человека: значение для фМРТ. Нейроизображение. (2014) 87:323–31. 10.1016/j.neuroimage.2013.10.044 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Zanatta P, Toffolo GM, Sartori E, Bet A, Baldanzi F, Agarwal N, et al.. Кардиостимулятор головного мозга человека: синхронизированная инфрамедленная нервно-сосудистая связь у пациентов, перенесших непульсирующее искусственное кровообращение. Нейроизображение. (2013) 72: 10–9. 10.1016/j.neuroimage.2013.01.033 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Gould IG, Tsai P, Kleinfeld D, Linninger A. Капиллярное русло оказывает наибольшее гемодинамическое сопротивление кортикальному кровоснабжению. J Cereb Blood Flow Metab. (2016) 37:52–68. 10.1177/0271678X16671146 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Di Russo J, Hannocks MJ, Luik AL, Song J, Zhang X, Yousif L, et al.. Сосудистые ламинины в физиологии и патология. Матрица биол. (2017) 57–8: 140–8. 10.1016/j.matbio.2016.06.008 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Юсиф Л.Ф., Ди Руссо Дж., Сорокин Л. Изоформы ламинина в эндотелиальных и периваскулярных базальных мембранах. Клеточные Клеи Мигр. (2013) 7:101–10. 10.4161/cam.22680 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Abbott NJ, Rönnbäck L, Hansson E. Взаимодействие астроцитов и эндотелия при гематоэнцефалическом барьере. Нат Рев Нейроски. (2006) 7:41–53. 10.1038/nrn1824 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Searson PC. Гематоэнцефалический барьер: инженерная перспектива. Нейроинж. (2013) 6:7. 10.3389/fneng.2013.00007 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Hannocks MJ, Pizzo ME, Huppert J, Deshpande T, Abbott NJ, Thorne RG, et al.. Молекулярная характеристика периваскулярного дренажа путей в мышином мозгу. J Cereb Blood Flow Metab. (2018) 38:669–86. 10.1177/0271678X17749689 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Bell RD, Sagare AP, Friedman AE, Bedi GS, Holtzman DM, Deane R, et al. β-пептид амилоида болезни Альцгеймера и аполипопротеины E и J в центральной нервной системе мышей. J Cereb Blood Flow Metab. (2007) 27:909–18. 10.1038/sj.jcbfm.9600419 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Taoka T, Fukusumi A, Miyasaka T, Kawai H, Nakane T, Kichikawa K, et al. Структура мозговые вены полушария головного мозга и связанные с ними нарушения. Рентгенография. (2017) 37: 281–97. 10.1148/rg.2017160061 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Schmidek H, Auer LM, Kapp JP. Венозная система головного мозга. Нейрохирургия. (1985) 17:663–78. 10.1227/00006123-198510000-00024 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Батсон О. Функция позвоночных вен и их роль в распространении метастазов. Clin Orthop Rel Res. (1995) 112:138–49. 10.1097/00000658-194007000-00016 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Pearce JMS. Краниоспинальная венозная система. Евр Нейрол. (2006) 56:136–8. 10.1159/000095706 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Килич Т., Акакин А. Анатомия вен и синусов головного мозга. Передние нейроны нейронов. (2008) 23:4–15. 10.1159/000111256 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. МакГрегор Шарп М., Крисвелл Т.П., Добсон Х., Финукейн С., Верма А., Караре Р.О. Решение старой догмы: это артериола или венула? Front Aging Neurosci. (2019) 11:289 10.3389/fnagi.2019.00289 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Földi M, Gellért A, Kozma M, Poberai M, Zoltán OT, Csanda E. Новые вклады в анатомические связи головного мозга и лимфатической системы. Акта Анат. (1966) 64:498–505. 10.1159/000142849 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Weller RO, Sharp MM, Christodoulides M, Carare RO, Møllgård K. Мозговые оболочки как барьеры и помощники для движения жидкости, клеток и патогенов, связанных с грызунами. и ЦНС человека. Акта Нейропатол. (2018) 135:363–85. 10.1007/s00401-018-1809-z [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Орешкович Д., Радош М., Кларица М. Новые концепции физиологии спинномозговой жидкости и развитие гидроцефалии. Педиатр Нейрохирург. (2016) 52:417–25. 10.1159/000452169 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Ahn JH, Cho H, Kim JH, Kim SH, Ham JS, Park I и др. Менингеальные лимфатические сосуды в основании черепа дренируют спинномозговую жидкость. Природа. (2019) 572:1–29. 10.1038/s41586-019-1419-5 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Abbott NJ. Доказательства объемного потока интерстициальной жидкости головного мозга: значение для физиологии и патологии. Нейрохим Инт. (2004) 45:545–52. 10.1016/j.neuint.2003.11.006 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Бринкер Т., Стопа Э., Моррисон Дж., Клинге П. Новый взгляд на циркуляцию спинномозговой жидкости. Жидкости Барьеры ЦНС. (2014) 11:10 10.1186/2045-8118-11-10 [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Сыкова Е., Николсон С. Диффузия во внеклеточном пространстве головного мозга. Physiol Rev. (2008) 88:1277–340. 10.1152/physrev.00027.2007 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Hablitz LM, Vinitsky HS, Sun Q, Stæger FF, Sigurdsson B, Mortensen KN, et al. коррелирует с высокой мощностью дельта ЭЭГ и низкой частотой сердечных сокращений у мышей под наркозом. Научная реклама (2019) 5:eaav5447. 10.1126/sciadv.aav5447 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Hauglund NL, Pavan C, Nedergaard M. Очистка спящего мозга – потенциальная восстановительная функция глимфатической системы. Curr Opin Physiol. (2020) 15:1–6. 10.1016/j. cophys.2019.10.020 [CrossRef] [Google Scholar]

45. Xie L, Kang H, Xu Q, Chen MJ, Liao Y, Thiyagarajan M, et al. Сон ускоряет выведение метаболитов из мозга взрослого человека. . Наука (80-). (2013) 342:373–7. 10.1126/science.1241224 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Cserr HF. Роль секреции и объемного потока интерстициальной жидкости головного мозга в регуляции объема головного мозга. Энн Н.Ю. Академия наук. (1988) 529:9–20. 10.1111/j.1749-6632.1988.tb51415.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Iliff JJ, Wang M, Liao Y, Plogg BA, Peng W, Gundersen GA, et al. Параваскулярный путь облегчает поток спинномозговой жидкости через паренхиму головного мозга и клиренс интерстициальных растворенных веществ, включая амилоид β. Sci Transl Med. (2012) 4:147ra111. 10.1126/scitranslmed.3003748 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Гладкий С.Б., Барранд М.А. Выведение веществ из паренхимы головного мозга: отток по периваскулярным путям и через гематоэнцефалический барьер. Жидкости Барьеры ЦНС. (2018) 15:1–73. 10.1186/s12987-018-0113-6 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Tarasoff-Conway JM, Carare RO, Osorio RS, Glodzik L, Butler T, Fieremans E, et al .. Системы очистки в головном мозге — значение болезни Альцгеймера. Нат Рев Нейрол. (2015) 11: 457–70. 10.1038/нрнейрол.2015.119[PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Iliff JJ, Wang M, Zeppenfeld DM, Venkataraman A, Plog BA, Liao Y, et al. Пульсация церебральных артерий приводит в движение параваскулярную спинномозговую жидкость и интерстициальную жидкость обмена в мышином мозгу. Дж. Нейроски. (2013) 33:18190–9. 10.1523/JNEUROSCI.1592-13.2013 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Benveniste H, Lee H, Volkow ND. Глимфатический путь: удаление отходов из ЦНС посредством транспорта спинномозговой жидкости. Неврологи. (2016) 23:454–65. 10.1177/1073858417691030 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Asgari M, De Zélicourt D, Kurtcuoglu V. Глимфатический транспорт растворенных веществ не требует объемного потока. Научный доклад (2016) 6:38635. 10.1038/srep38635 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Ray LA, Heys JJ. Движение жидкости и массоперенос в тканях головного мозга. Жидкости. (2019) 4: 133–96. 10.3390/fluids4040196 [CrossRef] [Google Scholar]

54. Martinac AD, Bilston LE. Компьютерное моделирование транспорта жидкости и растворенных веществ в головном мозге. Биомех Модель Механобиол. (2020) 19: 781–800. 10.1007/s10237-019-01253-y [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Faghih MM, Sharp MK. Возможен ли объемный кровоток в периваскулярных, параваскулярных и паравенозных каналах? Жидкости Барьеры ЦНС. (2018) 15:1–10. 10.1186/s12987-018-0103-8 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Jin BJ, Smith AJ, Verkman AS. Пространственная модель конвективного транспорта растворенных веществ во внеклеточном пространстве головного мозга не поддерживает «глимфатический» механизм. J Gen Physiol. (2016) 148:489–501. 10.1085/jgp.201611684 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Attems J, Jellinger K, Thal DR, Van Nostrand W. Обзор: спорадическая церебральная амилоидная ангиопатия. Приложение Нейропатол Нейробиол. (2011) 37:75–93. 10.1111/j.1365-2990.2010.01137.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Carare RO, Hawkes CA, Jeffrey M, Kalaria RN, Weller RO. Обзор: церебральная амилоидная ангиопатия, прионовая ангиопатия, CADASIL и спектр ангиопатий с нарушением элиминации белка (PEFA) при нейродегенеративных заболеваниях с акцентом на терапию. Приложение Нейропатол Нейробиол. (2013) 39: 593–611. 10.1111/nan.12042 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Keable A, Fenna K, Yuen HM, Johnston DA, Smyth NR, Smith C, et al.. Отложение β-амилоида в стенках человеческого лептоменингеальные артерии в связи с периваскулярными дренажными путями при церебральной амилоидной ангиопатии. Биохим Биофиз Акта. (2016) 1862: 1037–46. 10.1016/j.bbadis.2015.08.024 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

препятствие и прохождение частиц. Br J Exp патол. (1976) 57:179–88. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

61. Weller RO, Kida S, Zhang ET. Пути оттока жидкости из головного мозга – морфологические аспекты и иммунологическое значение у крыс и человека. Мозговой патол. (1992) 2: 277–84. 10.1111/j.1750-3639.1992.tb00704.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Diem AK, Tan M, Bressloff NW, Hawkes C, Morris AWJ, Weller RO, et al. Имитационная модель периартериального клиренса бета-амилоида из головного мозга. Front Aging Neurosci. (2016) 8:18. 10.3389/fnagi.2016.00018 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Sharp MK, Diem AK, Weller RO, Carare RO. Перистальтика с колеблющимся сопротивлением потоку: механизм периартериального клиренса бета-амилоида из головного мозга. Энн Биомед Инж. (2015) 44:1–13. 10.1007/s10439-015-1457-6 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Carare RO, Aldea R, Bulters D, Alzetani A, Birch AA, Richardson G, et al. Aβ из головного мозга. Нейрон. (2020) 105:400–1. 10.1016/j.neuron.2020.01.011 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. van Veluw SJ, Hou SS, Calvo-Rodriguez M, Arbel-Ornath M, Snyder AC, Frosch MP, et al. Вазомоция как движущая сила параваскулярного клиренса в бодрствующем мозге мыши. Нейрон. (2020) 105: 549–61.e5. 10.1016/j.neuron.2019.10.033 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Fultz NE, Bonmassar G, Setsompop K, Stickgold RA, Rosen BR, Polimeni JR, et al.. Связанные электрофизиологические, гемодинамические и цереброспинальные колебания во сне человека. Наука (80-). (2019) 366:628–31. 10.1126/science.aax5440 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Келли Г. Отчет о внешности, наблюдаемой при вскрытии двух из трех человек, предположительно погибших во время бури 3d, и чьи тела были обнаружены в окрестностях Лейта утром 4 ноября 1821 года: с некоторыми размышлениями. Trans Med Chir Soc Edinb. (1824) 1: 84–122. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

68. Мокри Б. Гипотеза Монрокелли: применение при истощении объема спинномозговой жидкости. Неврология. (2001) 56:1746–8. 10.1212/WNL.56.12.1746 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Уилсон М.Х. Монро-Келли 2.0: динамические сосудистые и венозные патофизиологические компоненты внутричерепного давления. J Cereb Blood Flow Metab. (2016) 36:1338–50. 10.1177/0271678X16648711 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Linninger AA, Tangen K, Hsu C-Y, Frim D. Механика спинномозговой жидкости и ее связь с цереброваскулярной динамикой. Annu Rev Fluid Mech. (2016) 48: 219–57. 10.1146/annurev-fluid-122414-034321 [CrossRef] [Google Scholar]

71. Greitz D, Wirestam R, Franck A, Nordell B, Thomsen C, Ståhlberg F. Пульсирующие движения мозга и связанная с ними гидродинамика изучены с помощью фазовой магнитно-резонансной томографии. Новый взгляд на доктрину Монрокелли. Нейрорадиология. (1992) 34:370–80. 10.1007/BF00596493 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

72. Lee SJ, King MA, Sun J, Xie HK, Subhash G, Sarntinoranont M. Измерение вязкоупругих свойств в нескольких анатомических областях острых срезов ткани головного мозга крысы. J Mech Behav Biomed Mater. (2014) 29: 213–24. 10.1016/j.jmbbm.2013.08.026 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Budday S, Nay R, De Rooij R, Steinmann P, Wyrobek T, Ovaert TC, et al. Механические свойства ткани серого и белого вещества головного мозга методом индентирования. J Mech Behav Biomed Mater. (2015) 46:318–30. 10.1016/j.jmbbm.2015.02.024 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

74. Kruse SA, Rose GH, Glaser KJ, Manduca A, Felmlee JP, Jack CR, et al.. Магнитно-резонансная эластография головного мозга. Нейроизображение. (2008) 39: 231–7. 10.1016/j.neuroimage.2007.08.030 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Hatt A, Cheng S, Tan K, Sinkus R, Bilston LE. МР-эластография может быть использована для измерения изменений жесткости головного мозга в результате изменения краниального венозного оттока во время компрессии яремной вены. AJNR Am J Нейрорадиол. (2015) 36:1971–7. 10.3174/ajnr.A4361 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Sweeney MD, Kisler K, Montagne A, Toga AW, Zlokovic BV. Роль сосудов головного мозга в нейродегенеративных заболеваниях. Нат Нейроски. (2018) 21:1318–31. 10.1038/с41593-018-0234-x [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Kalaria RN, Pax AB. Повышенное содержание коллагена в микрососудах головного мозга при болезни Альцгеймера. Мозг Res. (1995) 705:349–52. 10.1016/0006-8993(95)01250-8 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Vanherle L, Matuskova H, Don-Doncow N, Uhl FE, Meissner A. Улучшение цереброваскулярной функции для увеличения восстановления нейронов в нейродегенерация, связанная с сердечно-сосудистыми заболеваниями. Front Cell Dev Biol. (2020) 8:1–8. 10.3389/fcell.2020.00053 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Wolters FJ, Zonneveld HI, Hofman A, Van Der Lugt A, Koudstaal PJ, Vernooij MW, et al. Церебральная перфузия и риск деменции: популяционное исследование. Тираж. (2017) 136: 719–28. 10.1161/CIRCULATIONAHA.117.027448 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

80. Montagne A, Barnes SR, Sweeney MD, Halliday MR, Sagare AP, Zhao Z, et al. Нарушение гематоэнцефалического барьера у стареющего человека гиппокамп. Нейрон. (2015) 85:296–302. 10.1016/j.neuron.2014.12.032 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

81. Dumont M, Roy M, Jodoin PM, Morency FC, Houde JC, Xie Z и др.. Свободная вода в белом веществе отличает MCI и AD от контрольных субъектов. Front Aging Neurosci. (2019) 11:270. 10.3389/fnagi.2019.00270 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

82. Sharp MM, Saito S, Keable A, Gatherer M, Aldea R, Agarwal N, et al.. Демонстрация уменьшенной емкости для удаления жидкости из белого вещества головного мозга и гипоксии в зонах гиперинтенсивности белого вещества, связанной с возрастом и деменцией. Acta Neuropathol Commun. (2020) 1:1–14. 10.1186/с40478-020-01009-1 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

83. Weller RO, Wisniewski H, Shulman K, Terry RD. Экспериментальная гидроцефалия у молодых собак: гистологическое и ультраструктурное исследование повреждения ткани головного мозга. J Neuropathol Exp Neurol. (1971) 30:613–26. 10.1097/00005072-197110000-00006 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Moody DM, Brown WR, Challa VR, Anderson RL. Перивентрикулярный венозный коллагеноз: ассоциация с лейкоареозом. Радиология. (1995) 194:469–76. 10.1148/Рентгенология.194.2.7824728 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

85. Nan D, Cheng Y, Feng L, Zhao M, Ma D, Feng J. Потенциальный механизм венозной системы для лейкоареоза: от вскрытия до in vivo исследовательская работа. Нейродегенер Дис. (2020) 130021: 101–8. 10.1159/000505157 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

86. Banerjee G, Kim HJ, Fox Z, Jäger HR, Wilson D, Charidimou A, et al. МРТ-видимое расположение периваскулярного пространства связано с болезнью Альцгеймера независимо от амилоидной нагрузки. Мозг. (2017) 140:1107–16. 10.1093/brain/awx003 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

87. Hurford R, Charidimou A, Fox Z, Cipolotti L, Jager R, Werring DJ. МРТ-видимые периваскулярные пространства: связь с когнитивными функциями и поражением мелких сосудов МРТ-маркеры при ишемическом инсульте и ТИА. J Neurol Нейрохирург Психиатрия. (2014) 85:522–5. 10.1136/jnnp-2013-305815 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

88. Brown R, Benveniste H, Black SE, Charpak S, Dichgans M, Joutel A, et al.. Понимание Роль периваскулярного пространства при поражении мелких сосудов головного мозга. Кардиовасц Рез. (2018) 114:1462–73. 10.1093/cvr/cvy113 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

89. Francis F, Ballerini L, Wardlaw JM. Периваскулярные пространства и их связи с факторами риска, клиническими расстройствами и особенностями нейровизуализации: систематический обзор и метаанализ.

No related posts.